Základy laboratorní techniky



Podobné dokumenty
SDS polyakrylamidová gelová elektroforéza (SDS PAGE)

Polymorfismus délky restrikčních fragmentů (RFLP)

Gelová elektroforéza - úvod, demonstrační sada pro učitele Kat. číslo

Polymorfismus délky restrikčních fragmentů

Obsah Protein Gel Electrophoresis Kitu a jeho skladování

TECHNICKÁ SPECIFIKACE Vybavení genetické laboratoře pro projekt EXTEMIT-K část B

SDS-PAGE elektroforéza

ELEKTROFORETICKÁ SEPARACE NUKLEOVÝCH KYSELIN

MOLEKULÁRNÍ BIOLOGIE I PŘÍPRAVA TKÁNĚ K IZOLACI DNA

RUŠENÁ KRYSTALIZACE A SUBLIMACE

MOLEKULÁRNÍ BIOLOGIE I PŘÍPRAVA TKÁNĚ K IZOLACI DNA

Sure-MeDIP I. with magnetic beads and MNase.

NEUTRALIZAČNÍ ODMĚRNÁ ANALÝZA (TITRACE)

Braf V600E StripAssay

Název: Nenewtonovská kapalina

Úloha č. 1 Odměřování objemů, ředění roztoků Strana 1. Úkol 1. Ředění roztoků. Teoretický úvod - viz návod

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 NÁRODNÍ KOLO. Kategorie E. Zadání praktické části Úloha 1 (20 bodů)

Vážení, odměřování objemů

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU KOBALTU METODOU ICP-MS

ODDĚLOVÁNÍ SLOŽEK SMĚSÍ, PŘÍPRAVA ROZTOKU URČITÉHO SLOŽENÍ

CVD-T StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

α-globin StripAssay Kat. číslo testů 2-8 C

Jazykové gymnázium Pavla Tigrida, Ostrava-Poruba Název projektu: Podpora rozvoje praktické výchovy ve fyzice a chemii

PROTOKOL WESTERN BLOT

N Laboratoř hydrobiologie a mikrobiologie

1. Příloha 1 Návod úlohy pro Pokročilé praktikum z biochemie I

Experiment C-16 DESTILACE 2

Laboratorní cvičení 5

ELEKTROFORETICKÉ METODY

Sešit pro laboratorní práci z chemie

Evropský sociální fond Praha & EU: Investujeme do vaší budoucnosti ELEKTROMIGRAČNÍ METODY

Elektroforéza v přítomnosti SDS SDS PAGE

Příloha č. 3 Zadávací dokumentace. 1. část veřejné zakázky: Projekt: Nové biotechnologické produkty ÚEB AVČR, reg.č.: CZ.1.05/3.1.00/13.

Hmotnostní detekce biologicky významných sloučenin pro biotechnologie část 3 - Provedení štěpení proteinů a následné analýzy,

MagPurix Viral/Pathogen Nucleic Acids Extraction Kit B

53. ročník 2016/2017

Experiment C-15 DESTILACE 1

EGFR XL StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

ORGANICKÁ CHEMIE Laboratorní práce č. 4 Téma: Karbonylové sloučeniny, karboxylové kyseliny

Základní škola Třemošnice, okres Chrudim, Pardubický kraj

Pufry, pufrační kapacita. Oxidoredukce, elektrodové děje.

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 NÁRODNÍ KOLO. Kategorie E. Zadání praktické části Úloha 2 (30 bodů)

NRAS StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

REAKCE V ANORGANICKÉ CHEMII

cdna synthesis kit First-Strand cdna Synthesis System Verze 1.2

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 ŠKOLNÍ KOLO. Kategorie C ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (40 BODŮ)

Suspenze dělíme podle velikosti částic tuhé fáze suspendované v kapalině na suspenze

PO STOPÁCH BAKTERIÍ V/KOLEM NÁS

Sešit pro laboratorní práci z chemie

MagPurix Forensic DNA Extraction Kit

Laboratorní cvičení z kinetiky chemických reakcí

TESTOVÁNÍ GMO Praktikum fyziologie rostlin

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 KRAJSKÉ KOLO. Kategorie E ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (50 BODŮ)

ORGANICKÁ CHEMIE Laboratorní práce č. 3

LP č.1: FILTRACE A KRYSTALIZACE

Návod k laboratornímu cvičení. Bílkoviny

13/sv. 8 (85/503/EHS) Tato směrnice je určena členským státům.

Název: Deriváty uhlovodíků karbonylové sloučeniny

Ústřední komise Chemické olympiády. 53. ročník 2016/2017. KRAJSKÉ KOLO kategorie C. ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (40 BODŮ) časová náročnost: 120 minut

chemie chemické reakce Cíle Podrobnější rozbor cílů Zařazení do výuky Časová náročnost Zadání úlohy Návaznost experimentů Mezipředmětové vztahy

LP č. 4 STANOVENÍ ph. Autor: Mgr. Stanislava Bubíková. Datum (období) tvorby: Ročník: osmý

DNA TECHNIKY IDENTIFIKACE ŽIVOČIŠNÝCH DRUHŮ V KRMIVU A POTRAVINÁCH. Michaela Nesvadbová

Kádinka Skleněná Odměrný Odměrná Byreta pipeta válec baňka

KARBOXYLOVÉ KYSELINY

P + D PRVKY Laboratorní práce

Tkáňový homogenizátor MagNA Lyser od společnosti Roche

Sešit pro laboratorní práci z chemie

Vybraná vyšetření u pacientů s diabetes mellitus

CHORUS COPROCOLLECT. Výrobce: DIESSE Diagnostica Senese Via delle Rose Monteriggioni (Siena) Itálie

Identifikace mikroorganismů pomocí sekvence jejich genu pro 16S rrna

Millikanův přístroj. Návod k obsluze

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 KRAJSKÉ KOLO. Kategorie A ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (40 BODŮ) Časová náročnost 120 minut

Vybrané úlohy z toxikologie

PRÁCE S ROZTOKY A JEJICH KONCENTRACE

100 přírodovědných pokusů. Laboratorní pomůcky. Mgr. Tomáš Kudrna

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv

Chemický kroužek pro žáky ZŠ. Téma č.1:

Inovace bakalářského studijního oboru Aplikovaná chemie CZ.1.07/2.2.00/

53. ročník 2016/2017

Jazykové gymnázium Pavla Tigrida, Ostrava-Poruba Název projektu: Podpora rozvoje praktické výchovy ve fyzice a chemii

JODOMETRICKÉ STANOVENÍ ROZPUŠTĚNÉHO KYSLÍKU

ORGANICKÁ CHEMIE Laboratorní práce č. 9

Vztah pro výpočet počtu otáček za minutu pro známou hodnotu RCF: n =

Cvičení ke kurzu Obecná ekotoxikologie. Úloha A - Stanovení ekotoxicity v testu klíčení rostlin

Elektroforéza Sekvenování

Sada Látky kolem nás Kat. číslo

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 ŠKOLNÍ KOLO. Kategorie A ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (40 BODŮ)

3) Kvalitativní chemická analýza

chemie Chemické směsi Akademie věd ČR hledá mladé vědce

Název školy: Gymnázium Jana Nerudy, škola hl. města Prahy

List protokolu QIAsymphony SP

Jazykové gymnázium Pavla Tigrida, Ostrava-Poruba Název projektu: Podpora rozvoje praktické výchovy ve fyzice a chemii

CRP. Axis - Shield. SINGLE TESTS CRP kvantitativní stanovení pomocí přístroje NycoCard Reader II

UHLOVODÍKY A HALOGENDERIVÁTY

Pufry, pufrační kapacita. Oxidoredukce, elektrodové děje.

3.02 Dělení směsí, aneb i separace může být legrace (filtrace). Projekt Trojlístek

CA15-3 IRMA Souprava CA15-3 IRMA umožňuje přímé in-vitro kvantitativní stanovení s tumorem asociovaného antigenu CA15-3 v lidském séru

1. VÝROBA OBALOVÉ FOLIE Z BRAMBOR

Návod k laboratornímu cvičení. Efektní pokusy

REAKCE V ORGANICKÉ CHEMII A BIOCHEMII

Transkript:

Předmět: Biologie ŠVP: prokaryotní organismy, genetika Doporučený věk žáků: 16 18 let Doba trvání: 2 x 45 min. Specifické cíle: naučit studenty pracovat s laboratorními pomůckami a přístroji Seznam pomůcek: automatické mikropipety různých objemů, Eppendorfky, PCR mikrozkumavky, centrifuga, elektroforéza, příslušenství na elektroforézu, agaróza, pufr, potravinová barviva, glycerol nebo nasycený roztok cukru Stručná anotace V tomto laboratorním cvičení jde především o to, naučit studenty pracovat s pomůckami a přístroji, které jsou běžnou součástí každé mikrobiologické nebo genetické laboratoře. Na základě nacvičených postupů pak budou provádět praktická cvičení s bakteriemi a vzorky DNA. 1

Přípravy pro učitele Motivace Naučit studenty základní metody a způsoby práce používané v mikrobiologické či genetické laboratoři. Teorie 1. Měření objemů pomocí mikropipet Mikropipety jsou přístroje určené k pipetování malého objemu roztoků. Na spodním konci mají odnímatelnou špičku a na horním konci dvoupolohový ovladač (určený k nasávání a vypouštění roztoků) a držák usnadňující manipulaci. Jsou založeny na podobném principu jako injekční stříkačka pro velmi malé objemy. Pro snadnější manipulaci je objem nastavován pomocí mikrometrického šroubu a celá stříkačka je uzavřena do plastového pouzdra o velikosti vhodné k ruční manipulaci (obr. č. 1, obr. č. 2). Obr. č. 1 Obr. č. 2 Zdroj: Gymnázium Nad Alejí, 2

2. Centrifugace Odstřeďování (centrifugace) je jednoduchá základní laboratorní metoda sloužící zejména k oddělování pevných částic z roztoku. Přirozená sedimentace pevných částic způsobená gravitací je urychlena použitím centrifugy, ve které se zkumavky pohybují v tzv. rotoru po kruhové dráze (obr. č. 3). Působí tak na ně odstředivá síla, která je tím větší, čím větší rychlostí a po delší dráze se zkumavky pohybují. Tato síla tedy závisí na poloměru rotoru a na rychlosti, se kterou se rotor otáčí. Odstředivá síla se vyjadřuje v jednotkách g, které vyjadřují, kolikrát se při odstřeďování znásobí hmotnost částic. Vzhledem k velkým silám, které nastávají, je třeba, aby rotor centrifugy byl vždy vyvážen!! obr. č. 3 Zdroj: Gymnázium Nad Alejí, 3. Elektroforéza nukleových kyselin Úseky DNA, produkty PCR reakce nebo štěpy DNA lze dělit pomocí elektroforézy. Provádí se zpravidla v gelu, a to buď agarózovém, nebo polyakrylamidovém. V obou případech se molekuly, které v zásaditém prostředí nesou záporný náboj, pohybují v elektrickém poli od katody k anodě. Gely tvoří poměrně hustou síť, kterou větší molekuly procházejí pomaleji než menší molekuly mluví se proto o technice molekulového síta. Elektroforetická aparatura je zařízení na dělení DNA fragmentů, které se skládá ze zdroje napětí, elektroforetické vany, nosítek na gel a hřebene (obr. č. 4). 3

obr. č. 4 Zdroj: Gymnázium Nad Alejí, Elektroforetická vana je nádoba s vyvýšeným středem pro uložení gelu a dvěma komorami pro elektroforetický pufr po stranách. V nejvzdálenějším místě každé komory je vždy podélně uložená elektroda v podobě tenkého platinového drátku. Ten je propojen s vnějšími konektory, kterými lze elektrody propojit se zdrojem napětí (obr. č. 5). Obr. č. 5 Zdroj: Gymnázium Nad Alejí, Elektroforéza v agarózovém gelu Agaróza je polysacharid tvořený D-galaktózou a anhydro-l-galaktózou, který produkují některé mořské řasy a pod názvem agar se používá k výrobě gelů v potravinářství, mikrobiologii, imunologii či biochemii. Pro elektroforézu nukleových kyselin se používají gely obsahující 0,5 až 4 % agarózy. Čím je obsah polysacharidu vyšší, tím je lepší rozlišovací schopnost gelu, ale tím je také průběh elektroforézy pomalejší. 4

Volba koncentrace agarózového gelu pro elektroforézu DNA Obsah agarózy v gelu Délka fragmentů DNA 0,5 % 1 30 kpb 0,7 % 0,8 12 kpb 1,0 % 0,5 10 kpb 1,2 % 0,4 7 kpb 1,5 % 0,2 3 kpb 2,0 % 50 bp 2 kpb 3 4 % 10 bp 1 kpb Tab. č. 1 Příprava gelu je poměrně jednoduchá. Spočívá v rozpuštění a následném roztavení agarózy v pufru a nalití do elektroforetických nosítek s umístěným hřebenem pro nanášení vzorků. Ten je po utuhnutí gelu vyjmut a do jamek jsou naneseny vzorky (obr. č. 6). Gel je umístěn v elektroforetické vaně a zcela ponořen v pufru. Do jamek se vždy nanáší vzorek s tzv. nanášecím pufrem. Ten obsahuje glycerol, aby vzorek sedl ke dnu jamky a barvu, která působí jako marker, tzn. putuje stejně rychle jako nejmenší fragmenty DNA. Tak je možno včas rozpoznat konec elektroforézy. Společně se vzorky je do gelu nanášen i velikostní standard, který je tvořen směsí fragmentů DNA o přesně definovaných délkách. Obr. č. 6 Zdroj: Gymnázium Nad Alejí, 5

Pomůcky a vybavení Automatické mikropipety s objemem 2-20 mikrolitrů, 20-200 mikrolitrů, 200-1000 mikrolitrů, špičky na příslušnou velikost mikropipet, PCR mikrozkumavky, Eppendorfky o objemu 2mililitry, centrifuga, elektroforéza, agaróza, pufr, voda obarvená potravinovým barvivem, glycerol nebo nasycený roztok cukru Bezpečnost Centrifuga i elektroforéza musí být obsluhována pod přímým dozorem vyučujícího! Především při neopatrné manipulaci s elektroforézou by mohlo dojít ke zranění elektrickým proudem. Při vaření agarózového gelu je nutné používat plášť, rukavice a ochranné brýle. 6

Pracovní list pro studenty V mikrobiologické či genetické laboratoři se pracuje většinou s nepatrným množstvím vzorků. Proto jsou nezbytnou součástí laboratoře automatické mikropipety o různých objemech, které zaručí, že laborant nabere přesně požadované množství daného vzorku či dalších chemikálií, které se ke vzorku přidávají. Centrifugace pak slouží zejména k oddělování pevných částic z roztoku. Upravené vzorky (DNA, proteinu) se oddělují pomocí elektroforézy na agarózové nebo polyakrylamidovém gelu. Gely tvoří hustou síť, kterou větší molekuly procházejí pomaleji než menší molekuly, tím dochází k jejich oddělení. V následujících úkolech si osvojíme práci s těmito pomůckami, které jsou dnes nezbytnou součástí každé laboratoře. Pomůcky Automatické mikropipety s objemem 2-20 mikrolitrů, 20-200 mikrolitrů, 200-1000 mikrolitrů, špičky na příslušnou velikost mikropipet, PCR mikrozkumavky, Eppendorfky o objemu 2mililitry, centrifuga, elektroforéza, agaróza, pufr, voda obarvená potravinovým barvivem, glycerol nebo nasycený roztok cukru Úkol 1 Osvojení si práce s automatickou mikropipetou. Postup/návod 1. Do pěti kádinek s vodou rozpustíme přiměřené množství potravinového barviva různých barev a smícháme s roztokem glycerolu nebo nasyceného roztoku cukru. 2. Na mikropipetu nasadíme odnímatelnou špičku. 3. Mikropipetu uchopíme tak, abychom si o ukazováček podepřeli držák a palcem jsme mohli pracovat s dvoupolohovým ovladačem. 7

4. Nasátí provedeme takto: ovladač stlačíme do polohy 1 (špička je ve vzduchu), ponoříme do roztoku a pomalu pustíme. Po vyjmutí z roztoku špičku otřeme, abychom odstranili kapky, které ulpěly na vnější straně špičky. 5. Potom mikropipetu ponoříme do roztoku, kam chceme pipetovanou látku přidat. Vypustíme roztok stlačením ovladače do polohy 1 (několikrát stlačíme do polohy 1 a pomalu pustíme, přičemž špička je stále ponořená. Tím se důkladně promyje špička). Vypuštění dokončíme stlačením do polohy 2 a vyjmutím špičky z roztoku (stále v poloze 2 ). 6. Pokud opakovaně pipetujeme tentýž roztok, ponecháme na pipetě po celou dobu práce tutéž špičku. V přestávkách mezi pipetováním mikropipetu věšíme na speciální stojan nebo pokládáme vodorovně. Špička se nesmí ničeho dotýkat (nebezpečí znečištění špičky, pracovních roztoků, stolu, oblečení, ). Pokud pipetujeme roztok jiný, odhazujeme použitou špičku do odpadu a nasazujeme špičku novou. Úkol 2 Měření objemů pomocí automatických mikropipet. Postup/návod 1. Napipetujte 1000 mikrolitrů roztoku (s červeným potravinovým barvivem) do 1,5 ml Eppendorfky a označte výšku hladiny fixem. 2. Do 5 připravených PCR mikrozkumavek příslušnými pipetami napipetujte zadané objemy: a) 5 mikrolitrů b) 10 mikrolitrů c) 125 mikrolitrů d) 200 mikrolitrů e) 660 mikrolitrů 3. Nepipetované objemy z pěti PCR mikrozkumavek obdobným způsobem vraťte do původní Eppendorfky. 4. Sloučené objemy tekutin by měly opět sahat k rysce. 8

Úkol 3 Oddělování jednotlivých složek směsi. Postup/návod 1. Napipetujte 1000 mikrolitrů barevné směsi do třech Eppendorfek a promícháním obsahu mikropipetou vytvořte homogenní směs. 2. Následně oddělte jednotlivé složky směsi. Použijte centrifugu. 3. Tuhá i tekutá složka směsi se od sebe oddělí, ne dně Eppendorfky se usadí prášek pelleta. Úkol 4: Příprava agarózového gelu na elektroforézu DNA. Postup/návod Příprava 1% agarózového gelu 1 g agarózového prášku na každých 100 ml pufru TAE (Tris-Acetát-EDTA) v koncentraci 1x. Na přípravu nikdy nepoužívejte vodu! Na 1 gel je potřeba cca 40-50 ml 1% agarózy. 1. Do 250 ml Erlenmeyerovy baňky nasypte požadované množství agarózového prášku a přidejte adekvátní objem pufru TAE 1x (konečný objem v 250 ml baňce by neměl přesáhnout 100 ml). 2. Popisovačem naznačte výšku hladiny pufru v baňce. Roztok zahřívejte v mikrovlnné troubě po dobu cca 3 min. Každých 30 s zahřívání přerušte a krouživými pohyby zamíchejte obsah baňky. Pozor na utajený var! 3. Opakujte, dokud není agaróza zcela rozpuštěná. Ztracený objem vzorku doplňte pufrem TAE 1x (až po vyznačenou rysku). 4. Před nalitím roztok 1% agarózy zchlaďte na 55-60 C (vytemperovaná vodní lázeň, tekoucí voda). 5. Vždy používejte ochranné rukavice, brýle a laboratorní plášť! 9

Nalévání agarózového gelu 1. Připravte si nosítka na gel. Uzavřete oba konce nosítek pomocí lepící pásky a ujistěte se, že páska dobře přiléhá k okrajům. Nosítka umístěte na vodorovnou plochu. 2. Do nosítek umístěte příslušný elektroforetický hřeben. Je nutné, aby každý gel obsahoval alespoň 7 jamek. Podle potřeby můžete použít dva hřebeny (jeden bude na kraji nosítek, druhý uprostřed). 3. Připravte si potřebné množství 1% agarózy (viz výše) a před nalitím ji ochlaďte na 55-60 C. 4. Do nosítek nalijte 1% agarózu (zuby hřebene musí být ponořené) a až do utuhnutí gelu s nosítky nepohybujte, ani je nepřemisťujte! 5. Gel nechte tuhnout při pokojové teplotě cca 10-20 min (stane se neprůhledným). 6. Z utuhlého gelu vyjměte hřeben a odstraňte lepicí pásky. Ztuhlý gel umístěný v neprodyšném obalu lze před použitím uchovávat při pokojové teplotě (1 den) nebo v lednici (maximálně 1 týden). 10

Domácí úkol 1. Nakresli a popiš obrázek elektroforetické soupravy. 2. Na jakém principu je elektroforéza založená? 3. Jaké faktory ovlivňují rychlost elektroforézy? 4. Jak se nazývá kladná elektroda? 5. Kde po vizualizaci nacházíme nejdelší fragmenty DNA? 11