Kapilární zónová elektroforéza (CZE)

Podobné dokumenty
KAPILÁRNÍ ZÓNOVÁ ELEKTROFORÉZA

KAPILÁRNÍ ZÓNOVÁ ELEKTROFORÉZA: SIMULACE A EXPERIMENT

Stanovení paracetamolu, kofeinu a propyfenazonu v tabletách Valetol

Identifikace a stanovení chininu v toniku pomocí CE-MS

Automatická potenciometrická titrace Klinická a toxikologická analýza Chemie životního prostředí Geologické obory

1. Příloha 1 Návod úlohy pro Pokročilé praktikum z biochemie I

STANOVENÍ AZOBARVIV VE SMĚSI METODOU RP-HPLC SE SPEKTROFOTOMETRICKOU DETEKCÍ

Stanovení cholesterolu ve vaječném žloutku a mléce kapilární elektroforézou

SKUPINOVÁ ANALÝZA MOTOROVÝCH NAFT

REKTIFIKACE DVOUSLOŽKOVÉ SMĚSI, VÝPOČET ÚČINNOSTI

SDS polyakrylamidová gelová elektroforéza (SDS PAGE)

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU NEPOVOLENÝCH DOPLŇKOVÝCH LÁTEK METODOU LC-MS

Obr. 1. Struktura glukosaminu.

Analýza aniontových tenzidů v čisticích prostředcích kapilární elektroforézou

Obr. 1. Stuktura glukózy, fruktózy a sacharózy.

Určení koncentrace proteinu fluorescenční metodou v mikrotitračních destičkách

APLIKOVANÉ ELEKTROMIGRAČNÍ METODY

Programovatelná řídící jednotka REG10. návod k instalaci a použití 2.část Program RS03-02 regulátor pro řízení servopohonů

Chloridová iontově selektivní elektroda

Stanovení korozní rychlosti elektrochemickými polarizačními metodami

NEUTRALIZAČNÍ ODMĚRNÁ ANALÝZA (TITRACE)

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU LC-MS - FUMONISIN B 1 A B 2

CHROMATOGRAFIE ÚVOD Společný rys působením nemísících fází: jedna fáze je nepohyblivá (stacionární), druhá pohyblivá (mobilní).

Evropský sociální fond Praha & EU: Investujeme do vaší budoucnosti ELEKTROMIGRAČNÍ METODY

Spektrální fotometr VIS Kat. číslo

Přímá analýza reálných vzorků hmotnostní spektrometrií s využitím nanodesorpčního elektrospreje (nano-desi-ms)

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU SEMDURAMICINU METODOU HPLC

Měření koncentrace roztoku absorpčním spektrofotometrem

ÚSTAV CHEMIE A ANALÝZY POTRAVIN

Optimalizace podmínek měření a práce s AAS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU DEKOCHINÁTU METODOU HPLC

Derivační spektrofotometrie a rozklad absorpčního spektra

Odměrná analýza, volumetrie

PROTOKOL O PROVEDENÍ LABORATORNÍ PRÁCE

ÚLOHA č. 9 PLYNOVÁ ROZDĚLOVACÍ CHROMATOGRAFIE (GLC) Seznámení s metodou, stanovení methylalkoholu a ethylalkoholu v konzumním destilátu

Experiment P-10 OHMŮV ZÁKON. Sledování vztahu mezi napětím a proudem procházejícím obvodem s rezistorem známého odporu.

STANOVENÍ KOFEINU V NÁPOJÍCH METODOU HPLC

Stanovení kritické micelární koncentrace

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 NÁRODNÍ KOLO. Kategorie E. Zadání praktické části Úloha 2 (30 bodů)

Stanovení organofosforových pesticidů ve vodě a půdě micelární elektrokinetickou chromatografií

Stanovení celkové kyselosti nápojů potenciometrickou titrací

Pokročilé praktikum. Plynová chromatografie - Kvalitativní a kvantitativní analýza. Teoretická část

Kurz 1 Úvod k biochemickému praktiku

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv Vydání 1 STANOVENÍ OBSAHU KOKCIDIOSTATIK METODOU LC-MS

Pufry, pufrační kapacita. Oxidoredukce, elektrodové děje.

Elektroforéza v přítomnosti SDS SDS PAGE

Úloha č.1: Stanovení molární tepelné kapacity plynu za konstantního tlaku

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU LC-MS - aflatoxin B1, B2, G1 a G2

fenanthrolinem Příprava

2. Stanovení 5-hydroxymethylfurfuralu v medu pomocí kapilární elektroforézy

Kapitola: Přírodní látky Téma: Vitamíny. Cíl: Porovnat průběh a rychlost rozpouštění pevných forem vitamínu C v kyselině chlorovodíkové

PRAKTIKUM II. Oddělení fyzikálních praktik při Kabinetu výuky obecné fyziky MFF UK. Název: Elektrická vodivost elektrolytů. stud. skup.

Průtokové metody (Kontinuální měření v proudu kapaliny)

1. Změřte Hallovo napětí v Ge v závislosti na proudu tekoucím vzorkem, magnetické indukci a teplotě. 2. Stanovte šířku zakázaného pásu W v Ge.

Senzor může být připojen ke všem měřícím rozhraním platformy einstein.

Aplikace elektromigračních technik

LEE: Stanovení viskozity glycerolu pomocí dvou metod v kosmetickém produktu

Gymnázium Vysoké Mýto nám. Vaňorného 163, Vysoké Mýto

STANOVENÍ SIŘIČITANŮ VE VÍNĚ

Analytické nástroje pro analýzu iontů v prostředí. Analytical tools for environmental metal ions determination

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU 5-VINYL - 2-THIOOXAZOLIDONU (GOITRINU) METODOU GC

Sešit pro laboratorní práci z chemie

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv Vydání 1 STANOVENÍ OBSAHU KOKCIDIOSTATIK METODOU LC-MS

Potenciometrické stanovení disociační konstanty

Přímá analýza reálných vzorků hmotnostní spektrometrií s využitím nanodesorpčního elektrospreje (nano-desi-ms)

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 NÁRODNÍ KOLO. Kategorie E. Zadání praktické části Úloha 1 (20 bodů)

L 54/116 CS Úřední věstník Evropské unie

Měření tíhového zrychlení matematickým a reverzním kyvadlem

Smartphone Gimball. Uživatelská příručka (Česky)

Separační metody v analytické chemii. Plynová chromatografie (GC) - princip

Studijní materiál HMF_1 1. Hydroxymethylfurfural a jeho stanovení v potravinách 2. Kapalinová chromatografie (HPLC, UPLC)

VARIPULSE 04/07 1/10 NÁVOD NA INSTALACI ŘÍDÍCÍ JEDNOTKA VARIPULSE

Chemické výpočty II. Vladimíra Kvasnicová

Úloha č. 1 Odměřování objemů, ředění roztoků Strana 1. Úkol 1. Ředění roztoků. Teoretický úvod - viz návod

Úvod k biochemickému. mu praktiku. Vladimíra Kvasnicová

4 STANOVENÍ KINEMATICKÉ A DYNAMICKÉ VISKOZITY OVOCNÉHO DŽUSU

U = E a - E k + IR Znamená to, že vložené napětí je vyrovnáváno

DOPLŇKOVÉ ÚLOHY MĚŘENÍ KREVNÍHO TLAKU NEPŘÍMOU METODOU

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MELAMINU A KYSELINY KYANUROVÉ METODOU LC-MS

1.2 Výkonová charakteristika, výpočet spotřeby paliva, zhodnocení účinnosti palivového článku

Neutralizace, měření senzorem ph Vernier Laboratorní práce

Využití faktorového plánování v oblasti chemických specialit

PRÁCE S ROZTOKY A JEJICH KONCENTRACE

Chelatometrie. Stanovení tvrdosti vody

CS Úřední věstník Evropské unie L 54/89

Úloha č. 8 POTENCIOMETRICKÁ TITRACE. Stanovení silných kyselin alkalimetrickou titrací s potenciometrickou indikací bodu ekvivalence

PHH-222. ph metr. 4. Procedura kalibrace ph. 4-1 Důvod kalibrace

Stanovení izoelektrického bodu kaseinu

5210n / 5310n Stručná příručka

Průvodce pro přenos dat

Stanovení biochemicky významných flavinů pomocí kapilární elektroforézy s fluorescenční detekcí

Záznamník teploty a vlhkosti AX-DT100. Návod k obsluze

Laboratorní úloha Diluční měření průtoku

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 KRAJSKÉ KOLO. Kategorie E ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (50 BODŮ)

Actioncam Gimball. Uživatelská příručka (Česky)

Cvičení ke kurzu Obecná ekotoxikologie. Úloha A - Stanovení ekotoxicity v testu klíčení rostlin

Pufry, pufrační kapacita. Oxidoredukce, elektrodové děje.

Transkript:

Kapilární zónová elektroforéza (CZE) Úloha pro: - Pokročilé praktikum z analytické chemie (KATA) - Praktikum z přístrojové analýzy (CHŽP) - Moderní metody analytické chemie (Geol) Domácí příprava 1. Prostudujte si výpočet elektroosmotické mobility a efektivních elektroforetických mobilit z elektroferogramu. 2. Prostudujte si vliv ph na efektivní elektroforetickou mobilitu v CZE a výpočet iontových mobilit. 3. Prostudujte si vztahy, které používáme k výpočtu počtu teoretických pater, výškového ekvivalentu teoretického patra a rozlišení v chromatografii. 4. Prostudujte si přiloženou "Teorii k metodě stadardního přídavku". 5. Přineste si s sebou počítačku. Stručný úvod do teorie kapilární elektroforézy na: www.natur.cuni.cz/~pcoufal/cze.html Materiál: Zásobní roztoky: 2-nitrofenol, 3-nitrofenol, tyramin, kyselina benzoová, thiomočovina - všechny o koncentraci 1 mg/ml v destilované vodě Borátový pufr, 20 mmol/l, ph 9,1 Roztok neznámého vzorku k analýze v 5 ml odměrné baňce 4 ml vialky Pipety Verze 090226 Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza 1

Experimentální úkoly 1. Všechna měření se provádějí 3 x. 2. Naplňte dvě 4 ml vialky pracovním pufrem (min 1 ml, optimum jsou 3 ml), vložte je opatrně do cel CE přístroje, za pomoci přetlaku v dávkovací cele naplňte kapiláru pufrem, pokud byla prázdná, a usťte VN, aby došlo ke stabilizaci pracovních podmínek v separační kapiláře. Stabilizaci zálkadní linie detektoru sledujte na monitoru PC. Pracovní VN nastvte na takovou hodnotu, aby proud separační kapilárou nebyl vyšší než 100 μa. Hodnotu VN si zaznamenejte. 3. Připravte si pracovní roztok standardů, tak že do odměrné baňky o objemu 5 ml napipetujete 1 ml pracovního pufru, vypočtené objemy zásobních roztoků jednotlivých standardů a doplníte destilovanou vodou po rysku. Výsledné koncentrace standardů mají být: 2-nitrofenol: 125 μg/ml 3-nitrofenol: 25 μg/ml kyselina benzoová: 25 μg/ml thiomočovina: 125 μg/ml tyramin: 50 μg/ml 4. Odpipetujte 3 ml pracovního roztoku standardů do 4 ml vialky, nadávkujte ho a zaznamenejte jeho elektroferogram. Měření zopakujte celkem 3x. 5. Přiřaďte jednotlivé píky příslušným sloučeninám obsaženým ve vzorku, když víte, že vzorek obsahuje následující sloučeniny, které migrují v tomto pořadí: 1. tyramin, 2. thiomočovina, 3. 3- nitrofenol, 4. kyselina benzoová a 5. 2-nitrofenol. Vytiskněte jeden vzorový elektroferogram pracovního roztoku a přiložte ho k protokolu. 6. Metodou standardního přídavku stanovte 3-nitrofenol v neznámém vzorku. Vzorek může obsahovat nejvýše 5 výše uvedených látek. Každé měření zopakujte celkem 3x. 7. Vytiskněte si jeden elektroferogram vzorku a jeden vzorku s přídavkem a přiložte je k protokolu. 8. Výsledná data doplňte do výsledkových listů a vypočtěte požadované údaje. Verze 090226 Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza 2

Experimentální podmínky Upozornění: pracujete s vysokým napětím (VN), které je životu nebezpečné! Proto pracujte opatrně, pozorně a pečlivě. Přístroj je vybaven bezpečnostními obvody, takže VN je zapnuto pouze v případě, kdy jsou úplně uzavřena oboje dvířka VN-komory. V případě otevření VN-komory během analýzy dojde rovněž k okamžitému vypnutí VN. Separační kapilára průměr: 75 μm délka vstup-detektor : uvedeno u přístroje celková délka : uvedeno u přístroje Dávkování hydrodynamické - 10 cm výškové převýšení po dobu 5-10 s Separační napětí 15 až 30 kv - nastavte tak, aby proud nepřesahoval 100 μa (vstupní elektroda je anoda, výstupní katoda) Separační pufr 20 mm tetraboritan sodný (ph = 9,1) Detekce fotometrická (UV absorpční při 220 nm) Značkovač EOF thiomočovina Separované látky : 2-nitrofenol (pk a = 7,17) 3-nitrofenol (pk a = 8,28) kyselina benzoová (pk a = 4,19) tyramin = 4-(2-aminoetyl)fenol (pk a (OH) = 10,4, pk a (NH 2 ) = 9,3) Verze 090226 Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza 3

Vyhodnocovací úkoly 1. Z elektroferogramů vypočítejte elektroosmotickou mobilitu (m eof ) elektroosmotického toku a efektivní elektroforetické mobility m eff všech složek za daných experimentálních podmínek. 2. Z elektroferogramů vypočítejte elektroforetické (iontové) mobility 2-nitrofenolátového (m 2 ), 3-nitrofenolátového (m 3 ) a benzoátového (m b ) aniontu za daných experimentálních podmínek. 3. Z jednoho vybraného elektroferogramu vypočítejte počet teoretických pater (n) a výškový ekvivalent teoretického patra (H) pro danou kapiláru pro všechny analyty a dále rozlišení (R 1,2 ) mezi píky kyseliny benzoové a 2-nitrofenolu. 4. Vypočítejte koncentraci 3-nitrofenolu v neznámém vzorku z ploch píků 3-nitrofenolu a kyseliny benzoové jako interního standardu změřených před standardním přídavkem a po standardním přídavku (jednobodová metoda standardního přídavku). 5. Vypočítejte objem kapiláry, délku dávkované zóny a objem neznámého vzorku nadávkovaného do kapiláry a množství 3-nitrofenolu v pmol a ng, které bylo nadávkováno. Kolikrát lze teoreticky nadávkovat z použitého objemu vzorku? Vypočítejte jakým hydrostatickým tlakem v Pa jste dávkovali vzorky do kapiláry. 6. Všechny číselné hodnoty výsledků zapište do výsledkových listů, které jsou na konci tohoto návodu. Výsledky uváděné mimo tyto výsledkové listy nebudou brány na zřetel. Verze 090226 Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza 4

Ovládání a práce s CE Ovládání přístroje a sběr experimentálních dat probíhá v prostředí softwaru LabView (ver.8) firmy National Instruments. 1. Spusťte ovládací software ikonou CZE.vi umístěnou na ploše. Po jeho otevření aktivujte ovládání kliknutím na tlačítko s bílou šipkou (run) vlevo nahoře (případně na horní liště: OPERATE RUN). 2. Do vstupní a výstupní vialky připravte čistý separační pufr a zavřete posuvná dvířka i horní poklop přístroje (v opačném případě je blokováno vložení vysokého napětí na elektrody). 3. Kliknutím na tlačítko Start/Stop usťte registraci signálu detektoru na monitoru a kliknutím na tlačítko HV (high voltage) vložte na separační kapiláru napětí a uravte jeho hodnotu tak, aby proud procházející kapilárou byl maximálně 100 μa. Vyčkejte, dokud se neustálí signál detektoru. Poté napětí tlačítkem HV vypněte vysoké napětí. 4. Do ráměčku Path zadejte adresu souboru, který má být vytvořen pro ukládání dat a klikněte na tlačítko Save. Pro každou jednotlivou analýzu je potřeba vytvořit nový soubor. Pokud tak neučiníte, přepíší data z poslední provedené analýzy ta z předchozí. 5. Nahraďte vstupní vialku s pufrem (vlevo) vialkou se vzorkem, tak že nejdříve ustíte levý držák vialek asi o 1 cm dolů (aby hydrodynamickým prouděním nevnikal do kapiláry vzduch), vyjmete vialku se separačním pufrem a nahradíte ji vialkou s dávkovaným vzorkem. Proveďte nadávkování vzorku vyzdvižením držáku vialky o 10 až 15 cm na dobu 10-20 s. Dávkujte vždy minimální možné množství vzorku. Po hydrostatickém nadávkování vyměňte vilaku se vzorkem za vilaku se separačním pufrem stejným způsobem. Celu s vialkou vraťte do původní výšky a zkontrolujte zda jsou hladiny pufru v obou celách ve stejné výšce. Pokud ne, upravte výšku levé cely, s celou na straně detektoru se nesmí hýbat. Zavřete VN komoru. 6. Kliknutím na tlačítko HV vložte napětí na separační kapiláru. Ihned poté klikněte na tlačítko Start/Stop, čímž ustíte zobrazování elektroferogramu na monitoru a vynulování detektoru. Současně tím ustíte ukládání dat do zadaného souboru, což je indikováno rozsvícením kontrolky vedle tlačítka Save. 7. Po skončení analýzy vypněte tlačítkem Start/Stop záznam elektroferogramu a tlačítkem HV vysoké napětí. Verze 090226 Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza 5

Pozámka: pokud během analýzy výrazně klesne proud, může být v kapiláře bublina bránící průchodu proudu a elektroosmotickému toku elektrolytu - je nutno analýzu přerušit, bublinu z kapiláry vypudit, znovu stabilizovat pracovní podmínky a zopakovat nadávkování vzorku a jeho následnou analýzu Popis elementů softwaru Graf Slouží k zobrazování dat přijímaných z detektoru. U pravého dolního okraje grafu jsou tlačítka, jimiž lze graf posunovat, zvětšovat, zmenšovat atd. Pozor: po uštění analýzy je na ose x záznamu čas uveden v sekundách od referenčního data stanoveného výrobcem softwaru, takže vypadá zcela nesmyslně, ovšem v ukádaném souboru je časová osa vpořádku. Signal, V Zobrazuje aktuální signál detektoru. Time, s Zobrazuje čas uplynulý od začátku záznamu elektroferogramu. Sampling, ms Umožňuje nastavit frekvenci sběru dat z detektoru. Path Slouží k zadání adresy souboru pro ukládání dat. Je nutno zadat název neexistujícího souboru, který bude před ukládáním automaticky vytvořen. Po zadání názvu existujícího souboru bude tento přepsán. Save Svítí-li tlačítko, je připraven záznam dat do zadaného souboru. Záznam začíná/končí kliknutím na tlačítko Start/Stop. Start/Stop Stisknutím tlačítka se ustí/ukončí registrace signálu detektoru do grafu. Je-li aktivní tlačítko Save, ustí/ukončí se tlačítkem Start/Stop rovněž zápis dat do určeného souboru. HV Aktivováním tohoto tlačítka se uzavře bezpečnostní okruh a, je-li uzavřen pracovní prostor přístroje, je na elektrody vloženo vysoké napětí. Pokud nedojde ke vložení vysokého napětí na elektrody, zkontrolujte zda jsou oboje dvířka řádně uzavřena! Verze 090226 Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza 6

Autozero Kliknutím na tlačítko se vynuluje detektor. Tento povel se provádí automaticky vždy při stisku tlačítka Start/Stop. Teorie k metodě standardního přídavku V HPLC, GC a CZE se běžně používá několik kvantitativních vyhodnocovacích metod: metoda vnitřní normalizace, metoda absolutní kalibrace, metoda vnitřního standardu a metoda standardního přídavku. Tato poslední kvantitativní vyhodnocovací metoda, tj. metoda standardního přídavku, umožňuje odstranit rušivý vliv matrice při kvantitativní analýze. Při této metodě změříme nejprve analytickou odezvu (tj. plochu píku) stanovované látky v původním vzorku, který je určen k analýze (první experiment). Ve druhém kroku přidáme k původnímu vzorku standardní přídavek vlastní stanovované látky o znamém množství a opět změříme analytickou odezvu (tj. plochu píku) stanovované látky v takto získaném vzorku se standardním přídavkem (druhý experiment). Ze získaných ploch píků stanovované látky v původním vzorku a ve vzorku se standardním přídavkem o známém množství stanovované látky jsme potom schopni vypočítat koncentraci (popř. množství) stanovované látky v původním vzorku. Koncentrace stanovované látky v původním vzorku : c x [mol/dm 3 ] Objem původního vzorku : V [μl] Plocha píku stanovované látky v původním vzorku : A 1 [Vs] Objem standardního přídavku : V [μl] Koncentrace stanovované látky ve standardním přídavku : c [mol/dm 3 ] Plocha píku stanovované látky ve vzorku se standardním přídavkem : A 2 [Vs] Neznámou veličinou je c x a výchozími známými veličinami jsou V, A 1, V, c a A 2. Původní vzorek obsahuje látkové množství stanovované látky n 1 = c x V [μmol] a standardní přídavek obsahuje látkové množství stanovované látky n = c V [μmol]. Vzorek se standardním přídavkem obsahuje tedy celkové látkové množství stanovované látky n 1 + n, jeho celkový objem je V + V a tudíž koncentrace stanovované látky v tomto vzorku je rovna Verze 090226 Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza 7

c 2 n1 + n = V + V c = x V + c V + V V [μmol/μl nebo mol/dm 3 ]. Při analýze je do přístroje v prvním experimentu dávkována část původního vzorku o objemu V d [μl] (tzv. dávkovaný objem) a stejný objem vzorku se standardním přídavkem je do přístroje dávkován ve druhém experimentu. Látkové množství stanovované látky dávkované do přístroje v prvním experimentu je tedy n d,1 = c x V d [μmol] a látkové množství stanovované látky dávkované do přístroje ve druhém experimentu je rovno n n + n c V + c V [μmol]. V + V V + V 1 x d,2 = c2 Vd = Vd = Vd Analytická odezva přístroje (tj. plocha píku) pozorovaná v prvním experimentu je přímo úměrná látkovému množství stanovované látky dávkovanému do přístroje v prvním experimentu A 1 = RF nd,1 = RF c x Vd, kde RF je tzv. faktor odezvy (reonse faktor) příslušného detektoru pro stanovovanou látku a říká, jak velkou analytickou odezvu (v našem případě plochu píku) poskytuje jednotkové látkové množství příslušné stanovované látky. Analytická odezva přístroje (plocha píku) pozorovaná ve druhém experimentu je také přímo úměrná látkovému množství stanovované látky dávkovaného do přístroje ve druhém experimentu a konstantou úměrnosti je stejný faktor odezvy, neboť se jedná o stejnou látku (tj. stanovovanou látku) A n + n c V + c V. V + V V + V 1 x 2 = RF nd,2 = RF c2 Vd = RF Vd = RF Vd Dáme-li obě změřené plochy píků stanovované látky do poměru, vykrátí se nám parametry, které nabývají v obou dvou experimentech týchž hodnot (tj. RF a V d ) A A 2 1 = c RF x V + c V + V RF c x V V d V d c x V + c = c x V ( V + V ). Osamostatněním koncentrace c x z předcházející rovnice získáme vztah pro výpočet koncentrace stanovované látky v původním vzorku z výchozích známých veličin metody standardního přídavku Verze 090226 Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza 8

c x = c 1. A 2 A V ( V1 + V ) A1 V1 Pokud vyjádříme koncentraci stanovované látky ve standardním přídavku (tj. c ) v jiných jednotkách (např. v mg/ml), lze použít stejný vztah pro výpočet koncentrace stanovované látky v původním vzorku (tj. c x ), avšak tato koncentrace vyjde ve stejných jednotkách, v jakých byla vyjádřena koncentrace stanovované látky ve standardním přídavku (tedy např. v mg/ml). Dodatek a. Na rozdíl od GC a HPLC, kde detekce analytů probíhá za separační částí systému, tj. za separační kolonou, v CZE probíhá detekce, zde ektrofotometrická, přímo na separační kapiláře. Důsledkem toho je, že zatímco u GC a HPLC se všechny analyty pohybují detektorem stejnou rychlostí, u CZE se analyty během detekce pohybují rozdílnými rychlostmi odpovídajícími jejich zdánlivé pohyblivosti za daných experimentálních podmínek. Tudíž dvě stejná látková množství dvou analytů se stejným odezvovým faktorem ale s rozdílnou pohyblivostí poskytnou v detektoru dvě rozdílné plochy. Analyt pohybující se pomaleji poskytne větší plochu, neboť stráví v efektivním prostoru detektoru více času. Z tohoto důvodu se při kvantitativním vyhodnocování ploch v CZE nepracuje přímo s naměřenými plochami A, ale s A plochami korigovanými migračními časy analytů A c (z angl. corrected). Platí: Ac = t b. Jelikož je použitá metoda manuálního dávkování zatížena relativně velkou chybou, využívá se při vyhodnocování ploch jeden z přítomných analytů jako pomocná referentní látka. Místo absolutní plochy stanovovaného analytu, A, se do výpočtů bere relativní hodnota plochy jeho píku, A r,což je hodnota A vydělená plochou píku pomocné látky, A p. A r A =. Dávkujeme-li tedy proměnlivé množství vzorku, měly by relativní plochy píků analytu zůstávat A p konstantní, na rozdíl od absolutních ploch píků. Jako pomocnou látku je třeba zvolit takovou, jejíž migrace či retence a plocha píku jsou blízké hodnotám analytu. a.+b. Verze 090226 Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza 9 migr

Kombinací postupů uvedených v poznámkách a. a b. dostáváme výsledný vzorec pro výpočet koncentrace analytu metodou standardního přídavku v CZE: c = c x ( A t ) 1 1 ( Ap 1 tp1) V ( A2 t2) ( ) ( ) ( A1 t1) V+V A 1 p2 tp2 Ap 1 tp1 V ( ) 1 kde t 1 a t p1 jsou migrační časy analytu a pomocné látky v původním vzorku, zatímco t 2 a t p2 jsou migrační časy analytu a pomocné látky ve vzorku s přídavkem. A 1 a A 2 jsou plochy stanovované látky ve vzorku a ve vzorku s přídavkem, A p1 a A p2 jsou plochy pomocné látky v původním vzorku a ve vzorku s přídavkem. Verze 090226 Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza 10

Vzorce pro výpočty Elektroosmotický tok l l t d μ EOF = (cm 2 /Vs) U teof l t celková délka kapiláry v cm, l d délka kapiláry k detektoru v cm, U separační napětí ve V, t EOF migrační čas markeru EOF v s Efektivní (elektroforetická) mobilita 1 1 lt ld μ ef = tm t (cm 2 /Vs) EOF U l t celková délka kapiláry v cm, l d délka kapiláry k detektoru v cm, U separační napětí ve V, t m migrační čas analytu v s, t EOF migrační čas markeru EOF v s Iontová mobilita a) Slabá kyselina b) Slabá zásada μ = μ 10 A BH ef, HA ef, B ( pka ph ) ( 1+ ) μ + = μ 10 ( ph pk ) ( 1+ a ) Verze 090226 Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza 11

VÝSLEDKOVÉ LISTY Kapilární zónová elektroforéza (CZE) Příjmení, jméno: Úloha vypracována dne: Turnus číslo: Datum odevzdání protokolu: Studijní obor: V pořádku dne: Přepracovat a doplnit (+ datum): Pracovní podmínky Použité napětí:... kv Výška použitá pro dávkování:... cm Celková délka kapiláry:... cm Čas dávkování:... s Efektivní délka kapiláry:... cm Průměr kapiláry:... mm Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza - Výsledkový list 1

VÝSLEDKOVÉ LISTY Kapilární zónová elektroforéza (CZE) Příjmení, jméno: Tabulka 1: Měření 1 Veličina Jednotky Látka Tyramin Thiomočovina 3-Nitroffenol Kyselina benzoová 2-Nitrofenol Migrační čas s Zdánlivá pohyblivost EOF - - - - cm 2 /Vs Efektivní pohyblivost 0 Iontová pohyblivost 0 Šířka píku v ½ výšky s Počet teoretických pater - Výškový ekvivalent teoretického patra (HETP) mm Rozlišení - - Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza - Výsledkový list 2

VÝSLEDKOVÉ LISTY Kapilární zónová elektroforéza (CZE) Příjmení, jméno: Tabulka 2: Měření 2 Veličina Jednotky Látka Tyramin Thiomočovina 3-Nitroffenol Kyselina benzoová 2-Nitrofenol Migrační čas s Zdánlivá pohyblivost EOF - - - - cm 2 /Vs Efektivní pohyblivost 0 Iontová pohyblivost 0 Šířka píku v ½ výšky s Počet teoretických pater - Výškový ekvivalent teoretického patra (HETP) mm Rozlišení - - Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza - Výsledkový list 3

VÝSLEDKOVÉ LISTY Kapilární zónová elektroforéza (CZE) Příjmení, jméno: Tabulka 3: Měření 3 Veličina Jednotky Látka Tyramin Thiomočovina 3-Nitroffenol Kyselina benzoová 2-Nitrofenol Migrační čas s Zdánlivá pohyblivost EOF - - - - cm 2 /Vs Efektivní pohyblivost 0 Iontová pohyblivost 0 Šířka píku v ½ výšky s Počet teoretických pater - Výškový ekvivalent teoretického patra (HETP) mm Rozlišení - - Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza - Výsledkový list 4

VÝSLEDKOVÉ LISTY Kapilární zónová elektroforéza (CZE) Příjmení, jméno: Tabulka 4: Rychlost elektroosmotického toku Elektroosmotický tok (cm 2 /Vs) Medián SD L 1 L 2 RSD % Tabulka 5: Efektivní elektroforetické pohyblivosti analytů Látka Efektivní elektroforetická pohyblivost (cm 2 /Vs) RSD% 1 2 3 Medián SD L 1 L 2 T yramin 3-nitrofenol Kyselina benzoová 2-nitrofenol Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza - Výsledkový list 5

VÝSLEDKOVÉ LISTY Kapilární zónová elektroforéza (CZE) Příjmení, jméno: Tabulka 6: Iontové elektroforetické pohyblivosti analytů Látka Iontová elektroforetická pohyblivost (cm 2 /Vs) RSD% 1 2 3 Medián SD L 1 L 2 3-nitrofenolát 2-nitrofenolát Benzoát Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza - Výsledkový list 6

VÝSLEDKOVÉ LISTY Kapilární zónová elektroforéza (CZE) Příjmení, jméno: Tabulka 7: Parametry dávkování vzorku Objem kapiláry (nl) Dávkovací tlak (Pa) Objemová průtoková rychlost (nl/min) Dávkovaný objem vzorku (nl) Nadávkované množství 3-nitrofenolu pmol ng Délka dávkované zóny v kapiláře (mm) Celkový počet možných analýz ( ) 4 π R p1 p2 dv Průtok nestlačitelné kapaliny trubicí lze očítat dle Poisseuillovy rovnice: vv = = [ml/s], kde v v je objemová průtoková dt 8η l rychlost v ml/s, R je poloměr trubice v cm, p 1 a p 2 jsou tlaky klapaliny na vtupu a výstupu trubice v Pa, l je délka trubice v cm a η je viskozita kapaliny v Pa.s (pro vodu, re. zředěné vodné roztoky, je její hodnota rovna 1,002.10-3 Pa.s pro 20 C nebo 0,8904.10-3 Pa.s pro 24 C) Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza - Výsledkový list 7

VÝSLEDKOVÉ LISTY Kapilární zónová elektroforéza (CZE) Příjmení, jméno: Tabulka 8: Stanovení 3-nitrofenolu metodou standardního přídavku Měření 1 Jméno datového souboru Migrační čas (s) Plocha peaku (a.u.) 3-nitrofenol k. benzoová 3-nitrofenol k. benzoová Vzorek Vzorek s přídavkem 2 3 4 5 6 Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza - Výsledkový list 8

VÝSLEDKOVÉ LISTY Kapilární zónová elektroforéza (CZE) Příjmení, jméno: Tabulka 9: Stanovení 3-nitrofenolu metodou standardního přídavku Měření 1 Jméno datového souboru Korigovaná plocha peaku Poměr korigovaných ploch peaků 3-nitrofenol/k. benzoová 3-nitrofenol k. benzoová Hodnota Aritm.průměr SD Vzorek Vzorek s přídavkem 2 3 4 5 6 Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza - Výsledkový list 9

VÝSLEDKOVÉ LISTY Kapilární zónová elektroforéza (CZE) Příjmení, jméno: Tabulka 10: Standardní přídavek 3-nitrofenolu Měření 1 Objem přídavku (ml) Přídavek standardu Koncentracepřidávaného standardu (μg/ml) Objem vzorku (ml) Vzorek (bez standardu) Vypočtená koncentrace 3-nitrofenolu (μg/ml) 2 3 Tabulka 11: Statistika vypočtené koncentrace 3-nitrofenolu ve vzorku Vypočtená koncentrace 3-nitrofenolu (μg/ml) 1 2 3 Medián SD L 1 L 2 RSD % Výsledek: (... ±...) μg/ml (...%, n =...) [Formát: ( medián ± SD ) exponent μg/ml ( RSD %, n = počet měření)] Přiložte jeden vytištěný elektroferogram pro standard, jeden pro vzorek a jeden pro vzorek s přídavkem. V elektroferogramech označte peaky. Pokročilé praktikum - Kapilární zónová elektroforéza - Výsledkový list 10