BUNĚČNÁ STĚNA - struktura a role v rostlinné buňce



Podobné dokumenty
Krytosemenné rostliny pletiva, asimilační barviva (laboratorní práce)

VAKUOLY - voda v rostlinné buňce

Pletiva krycí, vodivá, zpevňovací a základní. 2/27

Název: ŘASY Autor: PaedDr. Ludmila Pipková

BIOLOGIE BA

Vitální barvení, rostlinná buňka, buněčné organely

Název: POZOROVÁNÍ PLASTIDŮ,VAKUOL, BUNĚČNÉ STĚNY Autor: Paed.Dr.Ludmila Pipková

Lapací zařízení vznikla přeměnou jednoho orgánu rostliny. Jde o orgánu).

STANOVENÍ VODNÍHO POTENCIÁLU REFRAKTOMETRICKY

Autor: Katka Téma: pletiva Ročník: 1.

Zvyšování kvality výuky technických oborů

ontogeneze listu zpočátku všechny buňky mají meristematický charakter, růst všemi směry (bazální, marginální a apikální meristémy listu)

TEORETICKÁ ČÁST test. V otázkách s volbou odpovědi je jen jedna odpověď správná.

Rostlinné orgány. Kořen (radix)

Název: VNITŘNÍ STAVBA KOŘENE

LABORATORNÍ PRÁCE Č.

Seznam obrázků z pracovních listů a námětů na laboratorní cvičení

Buňka cytologie. Buňka. Autor: Katka Téma: buňka stavba Ročník: 1.

ROSTLINNÉ ORGÁNY - LIST

Název projektového úkolu: Řekni mi jak Jak vzniká klíček? Třída: VI. Název společného projektu: Jak dlouho trvá, než?

LABORATORNÍ PRÁCE KLUB PAMPELIŠKA

Rozvoj vzdělávání žáků karvinských základních škol v oblasti cizích jazyků Registrační číslo projektu: CZ.1.07/1.1.07/

Vladimír Vinter

Sešit pro laboratorní práci z biologie

Úvod do biologie rostlin Pletiva Slide 1 ROSTLINNÉ TĚLO. Modelová rostlina suchozemská semenná neukončený růst specializované části

Zvyšování kvality výuky technických oborů

Základní pojmy a vztahy: Vlnová délka (λ): vzdálenost dvou nejbližších bodů vlnění kmitajících ve stejné fázi

Princip tvoření nákresů složitých struktur, orgánů:

Cvičení 4: CHEMICKÉ SLOŽENÍ BUŇKY, PROKARYOTA Jméno: PROKARYOTA PŘÍPRAVA TRVALÉHO PREPARÁTU SUCHOU CESTOU ROZTĚR BAKTERIÍ

Praktické cvičení č. 11.

Praktická cvičení z biologie na gymnáziu

List (fylom) Welwitschia mirabilis (Namibie)

příjmení a jméno: den a hodina cvičení: datum:

Moravské gymnázium Brno s.r.o. RNDr. Monika Jörková. Tematická oblast. Biologie 22 Pletiva. Ročník 1. Datum tvorby

Biologie I. Buňka II. Campbell, Reece: Biology 6 th edition Pearson Education, Inc, publishing as Benjamin Cummings

Rostlinná pletiva podle tvaru buněk a síly buněčné stěny Úvod - Doplňte chybějící místa v textu:

člověk vždy u rostliny objevil jako první její neduh současné zemědělství využívá něco málo přes 10% souše člověk využívá pouhá 4% vyšších semenných

Gymnázium Přírodní škola 26. únor Pracovní listy pro botanické praktikum. Vedoucí práce: Anežka Koutníková

Obsah vody v rostlinách

Sešit pro laboratorní práci z biologie

Vakuola. Dutina uvnitř protoplastu, která u dospělých buněk zaujímá 30 až 90 % jejich

od eukaryotické se liší svou výrazně jednodušší stavbou a velikostí Dosahuje velikosti 1-10 µm. Prokaryotní buňku mají bakterie a sinice skládá se z :

Klíč k vyhodnocení variace učebnice Chemie

Suspenze dělíme podle velikosti částic tuhé fáze suspendované v kapalině na suspenze

ROSTLINNÁ PLETIVA. Praktické cvičení z biologie C05. Zhotovila: Mgr. Kateřina Žáková G a SOŠPg Čáslav

DIGITÁLNÍ UČEBNÍ MATERIÁL

Biologická olympiáda, 47. ročník, školní rok , okresní kolo kategorie C. a)... b)..

Praktické cvičení č. 5.

2 PLETIVA 2.1 PLETIVA DĚLIVÁ (MERISTÉMY)

PRAKTICKÉ CVIČENÍ č. 1

Izolace genomové DNA ze savčích buněk, stanovení koncentrace DNA pomocí absorpční spektrofotometrie

Rostlinná pletiva. Milan Dundr

Gymnázium Olomouc Hejčín. Člověk a příroda versus Příroda a člověk Listnaté stromy olomouckého kraje (podtéma:stromy kolem nás)

Clivia miniata, Acorus calamus)

Z Buchanan et al. 2000

Fotosyntéza a dýchání rostlin (laboratorní práce)

LABORATORNÍ POMŮCKY. Pro přípravu mikroskopického preparátu a vlastní mikroskopování jsou nutné tyto laboratorní pomůcky: 1.

Název práce: Rostlinná buňka a látky v ní obsažené. Odstavce Vzdělávací cíl, Pomůcky a Inovace viz následující strana

Stonek. Stonek příčný řez nahosemenná rostlina borovice (Pinus)

Název: Pozorování ptačího vejce

- oddělení Rhyniofyta (+protracheophyta, zosterophyllophyta, trimerophyta)

ROSTLINNÁ BUŇKA A JEJÍ ČÁSTI

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

Laboratoř růstových regulátorů Miroslav Strnad. ové kultury. Olomouc. Univerzita Palackého & Ústav experimentální botaniky AV CR

BUNĚČNÁ STĚNA doplňkový text k přednáškám z Anatomii rostlin David Reňák

Vodních a mokřadních rostlin

= soubor buněk, které jsou podobné nebo úplně stejné svým tvarem a svojí funkcí

Anotace: Materiál je určen k výuce přírodopisu v 7. ročníku ZŠ. Seznamuje žáky se základy obecné botaniky. Materiál je plně funkční pouze s použitím

Transport v rostlinách. Kateřina Schwarzerová Olga Votrubová

BUNĚČ ORGANISMŮ KLÍČOVÁ SLOVA:

FYZIOLOGIE ROSTLIN. Přednášející: Doc. Ing. Václav Hejnák, Ph.D. Tel.:

Buňka. Buňka (cellula) základní stavební a funkční jednotka organismů, schopná samostatné existence. Cytologie nauka o buňkách

ČESKÁ ZEMĚDĚLSKÁ UNIVERZITA V PRAZE

Teoretický úvod: VODNÍ REŽIM ROSTLINY. Praktikum fyziologie rostlin

Buňka buňka je základní stavební a funkční jednotka živých organismů

Anotace: Materiál je určen k výuce přírodopisu v 6. ročníku ZŠ. Seznamuje žáky se základní stavbou rostlinné a živočišné buňky.

Inovace studia molekulární a buněčné biologie reg. č. CZ.1.07/2.2.00/

ROSTLINNÉ ORGÁNY JEHLICE JEHLIČNANŮ

Sada Látky kolem nás Kat. číslo

IZOLACE A IDENTIFIKACE PLÍSNÍ

ORGANICKÁ CHEMIE Laboratorní práce č. 2

Biologická olympiáda

NĚCO ² JE VE VZDUCHU A STROM TO POTŘEBUJE

Základy světelné mikroskopie

téma: Úvodní praktikum autor: Mgr. Michal Novák cíl praktika: Seznámit žáky s náplní praktika doba trvání: 2 místo: odborná učebna biologie

UNIVERZITA PALACKÉHO V OLOMOUCI

1 Popis vzorku. 2 Detekční limit vyšetření. 3 Časová náročnost. 4 Zpracování vzorku. 4.1 Množství vzorku. 4.2 Odběr vzorků

,,Škola nás baví CZ. 1.07/1.4.00/

2. a) Napiš pod obrázky rodový název živočicha, kterému ulita patří. b) Doplň, jestli její obyvatel žije na souši (S), nebo ve vodě (V).

ROSTLINNÁ PLETIVA KRYCÍ

Název školy: Gymnázium Jana Nerudy, škola hl. města Prahy. Předmět, mezipředmětové vztahy: biologie+ chemie, matematika, informační technika

Tento projekt je spolufinancován Evropským sociálním fondem a Státním rozpočtem ČR InoBio CZ.1.07/2.2.00/

AUTOTROFNÍ A HETEROTROFNÍ VÝŽIVA ROSTLIN, VODNÍ REŽIM ROSTLIN, RŮST A POHYB ROSTLIN

NA VLASTNÍ OČI. Manuál mikroskopických pokusů

Název: Hmoto, jsi živá? II

Věda v prostoru. Voda v pohybu. Buněční detektivové. Svědkové dávné minulosti Země

Podklady pro cvičení: USEŇ A PERGAMEN. Určení živočišného původu kolagenového materiálu. Úkol č. 1

Transkript:

BUNĚČNÁ STĚNA - struktura a role v rostlinné buňce Buněčná stěna O buněčné stěně: Buněčná stěna je nedílnou součástí každé rostlinné buňky a je jednou z charakteristických struktur odlišujících buňku rostlinnou od živočišné. Buněčná stěna udává tvar rostlinné buňky, který úzce souvisí s její funkcí v pletivu. Složení buněčné stěny se liší v závislosti na druhu rostliny i pletiva, nejčastějšími komponenty, které jsou ve stěně vždy přítomné jsou celulóza, hemicelulózy, pektiny (vše polysacharidy) a proteiny (strukturní i enzymy). Na základě vývoje a složení (jak chemického tak struktury) rozeznáváme následující tři základní vrstvy buněčné stěny: Střední lamela amorfní vnější vrstva složená hlavě z pektinů, nachází se na rozhraní sousedních buněk mezi jejich primárními stěnami (viz dále). Primární buněčná stěna složená hlavně z celulózy. Nachází se u všech rostlinných buněk, je schopna růstu. Sekundární buněčná stěna tvoří se na vnitřní straně primární stěny (rozuměj blíž k plazmatické membráně), najdeme ji u buněk, jejichž růst byl ukončen. Sekundární stěna tvoří hlavně mechanickou oporu případně bariéru pro průnik látek. Sekundární buněčná stěna se ukládá ve vrstvách lamelách (Str. 7). Sekundární stěna je tvořena rovněž celulózovými mikrofibrilami a dalšími polysacharidy, bývá impregnována ligninem, suberinem, kutinem či vosky. I přesto, že sousední buňky v rostlinném pletivu jsou zdánlivě odděleny buněčnou stěnou, jejich protoplasty jsou vzájemně propojeny a komunikují plazmodesmaty (jednotné číslo plazmodezma). Plazmodesmata jsou cytoplazmatické provazce obsahující kanál endoplazmatického retikula, které procházejí ztenčeninami v buněčných stěnách sousedních buněk. Plazmodesmata se většinou shlukují do políček. Samotná plazmodesmata jsou pod hranicí rozlišení světelného mikroskopu (přibližně 50 nm). Na příčných řezech jehlicemi ale můžeme pod světelným mikroskopem pozorovat ztenčeniny buněčné stěny. Praktická část cvičení, pojednávající o buněčné stěně, je rozdělena do dvou částí. V první části jménem PROTOPLASTY je buněčná stěna demonstrována jako struktura, která udává rostlinné buňce pevnost a tvar. Druhá část jménem PRIMÁRNÍ A SEKUNDÁRNÍ BUNĚČNÁ STĚNA se věnuje struktuře primární a sekundární buněčné stěny a rozdílům v uspořádání buněčné stěny u různých buněk rostlinných pletiv. 1

PROTOPLASTY Úvod: Co jsou protoplasty? Protoplasty jsou buňky (rostlin, hub nebo bakterií), které byly zbaveny buněčné stěny. Odstranit buněčnou stěnu lze mechanicky, nebo štěpením pomocí enzymů. Příkladem enzymů štěpících složky buněčné stěny jsou celulázy, štěpící celulózu v rostlinných buněčných stěnách, nebo pektinázy, které degradují pektinovou složku buněčných stěn. Buňky zbavené buněčné stěny zaujímají kulovitý tvar a jsou obaleny pouze membránou. Protože jsou velmi citlivé vůči prostředí, zvláště jeho osmotickým vlastnostem, je třeba protoplastování i následnou kultivaci protoplastů provádět v prostředí s vysokou osmotickou aktivitou, jako např. v roztoku cukru. V čisté vodě by došlo k popraskání protoplastů vlivem plazmoptýzy. Příčný řez listem buňky mezofylu s chloroplasty a buňky pokožky. Uvolněné protoplasty mezofylových buněk. Protoplasty jsou dále využívány pro mnoho účelů. Například, dva protoplasty lze přinutit k fůzi, přičemž vzniká hybridní buňka s vlastnostmi obou buněk rodičovských. Protoplasty lze také transformovat vybranými geny například pomocí elektroporace nebo pomocí infekce geneticky modifikovanou bakterií Agrobacterium tumefaciens. Kultivací na vhodném kultivačním médiu lze z jednoho protoplastu opět regenerovat celistvou rostlinu. Protoplasty lze izolovat z celé řady pletiv, z listů, stonků, kořenů, květů, a dokonce i z pylu. Metoda izolace a kultivační média se liší podle druhu rostliny a pletiva, ze kterého mají být protoplasty izolovány. K čemu je využíváme na našem praktiku? Rostlinné buňky mají různé tvary, přičemž tvar rostlinné buňky je udržován pomocí buněčné stěny. Po odstranění buněčné stěny zaujímá rostlinný protoplast kulovitý tvar, a teprve po regeneraci nové buněčné stěny může buňka opět získat nejrůznější tvary. Důležitost buněčné stěny v udržování tvaru buněk bude demonstrována na buňkách mezofylu listu salátu. Studenti budou mít možnost porovnat tvar buněk mezofylu před protoplastováním a po něm. 2

Technické informace: Potřeby: Trvalý preparát příčný řez listem salátu Čerstvý list salátu Enzymový koktejl, 1ml (2% driseláza* v 0,7 M mannitolu). 21% sacharóza, 1ml eppendorfka plastová Petriho miska žiletka pinzeta pipeta košíček z tkaniny s 10 µm otvory buničitá vata krycí a podložní mikroskopická skla * Driseláza je enzymová směs izolovaná z hub. Obsahuje polysacharidové exo- a endohydrolázy, jako například celulázu, pektinázu, beta-xylanázu atp. 3

Experiment 1: příprava protoplastů Začněte s tímto experimentem, protože příprava protoplastů zahrnuje 40-minutovou inkubaci, během které můžete provádět další experimenty. 1. Nařežte na plastové misce kousek listu salátu (cca 1cm 2 ) na přibližně 1-2 mm čtverečky. 2. Přeneste nařezaný list ihned do eppendorfky s 1ml enzymového koktejlu. 3. Inkubujte při mírném třepání v teplotě 28 C 40 minut. 4. Po 40 minutách odpipetujte opatrně roztok z eppendorfky (nenabírejte do pipety celistvé kousky pletiva) a přeneste tekutinu do košíčku s 10 µm otvory v tkanině. 5. OPATRNĚ a POMALU odsajte část média z košíčku tak, aby v něm stále zbývalo trochu tekutiny. Otvory ve dně košíčku jsou příliš malé na to, aby dnem protoplasty prošly, proto zůstávají protoplasty v tekutině v košíčku. 6. Připipetujte do košíčku opatrně 1 ml 21% sacharózy a opět většinu tekutiny opatrně odsajte. 7. Zbytek tekutiny s protoplasty z košíčku naberte do pipety (cca 200 µl) a přeneste do čisté eppendorfky. 8. Pozorujte protoplasty po mikroskopem. Protoplasty jsou velice křehké, proto krycí sklo vždy podložte dalšími dvěma krycími skly. Vznikne tak komůrka, ve které protoplasty nejsou rozmačkány krycím sklem, a kde můžete protoplasty dobře pozorovat pod mikroskopem (viz nákres). Nákres: zhotovení preparátu pro pozorování protoplastů pod mikroskopem. 4

Experiment 2: pozorování tvarů buněk listu salátu 1. Pozorujte pod mikroskopem trvalý preparát příčného řezu listem salátu. Nakreslete typ a tvar buněk, které vidíte. 2. Pomocí pinzety stáhněte kousek pokožky čerstvého listu salátu. Umístěte ihned do kapky destilované vody na podložním sklíčku a přikryjte krycím sklem. Pozorujte pod mikroskopem a nakreslete typ a tvar buněk, které vidíte. Experiment pro zájemce: co se stane s protoplasty, pokud je místo v osmoticky vyrovnaném médiu budete kultivovat ve vodě? 1. Kápněte na podložní sklo roztok s protoplasty a přikryjte krycím sklem, které je podloženo dalšími dvěma krycími skly. 2. Pipetou pomalu z jedné strany preparátu přikapávejte vodu, a na druhé straně odsávejte médium kouskem buničité vaty. Tímto způsobem dojde k výměně média na preparátu za vodu. 3. Najděte v mikroskopu protoplasty a sledujte plazmoptýzu (praskání) protoplastu vlivem nadměrného příjmu vody. 5

Úkol: 1. Připravte protoplasty z čerstvého listu salátu. 2. Pozorujte pod mikroskopem buňky mezofylu z příčného řezu listem salátu, buňky pokožky listu salátu, a protoplasty. Popište rozdíly ve tvaru buněk. Popište rozdíly ve tvaru mezofylových buněk před a po protoplastováním. Vysvětlete. 3. (Jen pokud bylo prováděno) Vysvětlete, co se stalo s protoplasty, pokud bylo kultivační médium vyměněno za čistou vodu. 6

Příklady pozorování a vysvětlivky: Příčný řez listem salátu, Lactuca sativa (DIC) Svrchní epidermis Palisádový parenchym Houbovitý parenchym Spodní epidermis Mezibuněčné prostory Příčný řez listem salátu, Lactuca sativa (fluorescence) Svrchní epidermis kutikula Palisádový parenchym Zakončení vodivých pletiv Houbovitý parenchym Spodní epidermis kutikula 7

Příčný řez listem salátu, Lactuca sativa (fluorescence) pokožkové buňky buňky mezofylu kutikula Průduchová štěrbina Svěrací buňka průduchu Silná autofluorescence vodivých pletiv listu Autofluorescence chloroplastů Silná autofluorescence kutikuly a svěracích buněk průduchů Slabší fluorescence buněčných stěn mezofylu List salátu pokožka čerstvého listu salátu -tvar pokožkových buněk a průduchů, autofluorescence plastidů Základní buňky pokožky mají laločnatý tvar Průduch Buňky pokožky listu salátu v procházejícím světle Autofluorescence plastidů mezofylových buněk (buňky pokožky plastidy neobsahují) Autofluorescence plastidů průduchových buněk Tytéž buňky ve fluorescenčním světle 8

Protoplasty izolované z listu salátu Protoplasty: po odstranění buněčné stěny zaujímají buňky kulatý tvar. Protože nemají pevnou buněčnou stěnu, která by je chránila před osmotickými silami, je nutné protoplasty kultivovat v hypertonickém roztoku. V hypotonickém roztoku (např. vodě) by popraskaly. Sféroplasty: buněčná stěna nebyla u těchto buněk dostatečně odstraněna. Následkem toho se buňky sice uvolnily z mezofylového pletiva, buněčná stěna však stále určuje tvar buněk. jádro chloroplasty 9

PRIMÁRNÍ A SEKUNDÁRNÍ BUNĚČNÁ STĚNA Úvod: O vnitřní struktuře jehlice smrku a borovice: Povrch jehlice kryje jednovrstevná pokožka. Pokožkové buňky mají sekundární buněčnou stěnu - výrazná je hlavně u borovice. Na povrchu pokožkových buněk je kutikula vrstva kutinu a vosků, která má ochrannou funkci (viz obrázek v sekci Doplňující informace ). Na některých příčných řezech jehlicemi lze pozorovat průduchy stomata. Jsou tvořeny dvěma svěracími buňkami a pod nimi v mezofylu se nachází rozlehlý mezibuněčný prostor, tzv. podprůduchová dutina. Pod pokožkou se nachází vrstva hypodermis slouží jako mechanická opora jehlice. Hypodermis je výrazná hlavně u smrku, kde lze pozorovat vrstevnatost sekundární buněčné stěny (viz obrázek v sekci Příklady pozorování a vysvětlivky ). V některých oblastech hypodermis smrku jsou znatelné ztenčeniny buněčné stěny nad políčky plazmodesmat. Většinu objemu jehlice vyplňuje fotosyntetické pletivo tvořené tenkostěnnými laločnatými buňkami mezofyl. Mezofylové buňky mají pouze stěnu primární (Detail mezofylové buňky, v sekci Příklady pozorování a vysvětlivky ). Pro jehlice jsou charakteristické pryskyřičné kanálky u smrku bývají vidět na příčném řezu 1-2, u borovice 6-10 po obvodu mezofylu. U buněk ohraničujících pryskyřičný kanál borovice lze dobře pozorovat vrstevnatost sekundární buněčné stěny. V některých buňkách ohraničujíchích pryskyřičný kanál borovice jsou znatelné ztenčeniny buněčné stěny nad políčky plazmodesmat. Středem jehlice prochází střední válec ohraničený endodermis. Ve středním válci se nachází u smrku jeden, u borovice dva cévní svazky. Cévní svazky se skládají z xylémové a floémové části, slouží pro transport vody, minerálních látek (xylém) a asimilátů (floém). O autofluorescenci rostlinných pletiv Některé látky přirozeně obsažené v rostlinných pletivech jsou po ozáření schopny fluorescence tj. emise záření o delší vlnové délce než byla vlnová délka excitačního záření. Jednou z takových látek je pigment chlorofyl obsažený v chloroplastech zelených pletiv rostlin. Po ozáření modrým nebo UV zářením vydává chlorofyl fluorescenci v červené oblasti elekromagnetického spektra. Lignin a další fenolické látky vázané v buněčné stěně jsou také schopny autofluorescence po ozáření UV zářením produkují fluorescenci v modrozelené oblasti spektra. Díky těmto vlastnostem rostlinných pletiv je možné některé struktury pozorovat pod fluorescenčním mikroskopem bez dodatečného barvení řezů (obrázkové plato Doplňující informace ). Co budete zkoumat v tomto praktiku: Na příčných řezech jehlicemi smrku nebo borovice budete pozorovat rozdíly v tloušťce primární a sekundární buněčné stěny v různých pletivech jehlice. V buňkách hypodermis si všimněte vrstevnatého ukládání lamel sekundární buněčné stěny a ztenčenin nad políčky plazmodesmat, které propojují sousední buňky. Struktura jehlice smrku a borovice je v některých detailech odlišná a i specifika sekundární buněčné stěny lze lépe pozorovat v jiných specializovaných buňkách u jednotlivých druhů, viz tabulka. 10

Sledovaná struktura Lokalizace u smrku Lokalizace u borovice Primární buněčná stěna Mezofyl Mezofyl Vrstevnatost sekundární buněčné stěny hypodermis buňky ohraničující pryskyřičný kanál Ztenčeniny buněčné stěny nad políčky plazmodesmat hypodermis pokožkové buňky, buňky ohraničující pryskyřičný kanál 11

Potřeby: Bezová duše Žiletka Podložní a krycí sklo Voda Kapátko Štětec Preparační jehla Hodinové sklo nebo malá petriho miska Jehlice smrku nebo borovice Technické informace: 12

Experiment: 1. Na hodinové sklo nebo malou petriho misku nakapejte vodu. Sem budete odkládat řezy, nesmí vyschnout jehlice obsahují cca 50% vody, ztráty vody mohou narušit strukturu buněk! 2. Špalík bezové duše (cca 1,5 cm dlouhý) rozřízněte podélně napůl a preparační jehlou udělejte uprostřed vzniklé řezné plochy podélnou drážku. Bezová duše slouží jako opora při přípravě ručních řezů. 3. Do drážky v bezové duši vložte jehlici tak, aby přibližně její 1/3 přečnívala. Uzavřete jehlici mezi dvě půlky špalíku bezové duše. 4. Bezovou duši s jehlicí uchopte mezi palec a ukazovák. Při řezání veďte řez jedním tahem, nikoliv pilováním, abyste co nejméně narušili vnitřní strukturu jehlice. Snažte se připravit co nejtenčí řezy jehlicí. 5. Hotové řezy ihned odkládejte do vody. Připravte si aspoň 5 řezů, ne všechny se perfektně podaří. 6. Hotové řezy umístěte do kapky vody na podložním skle a přikryjte krycím sklem. 7. Pozorujte v mikroskopu primární a sekundární buněčnou stěnu, ztenčeniny v buněčné stěně nad políčky s plazmodesmaty a vrstevnatost sekundární buněčné stěny. 13

Úkol: 1. Vytvořte preparát z jehlice smrku nebo borovice. 2. Zakreslete buňky pokožky, hypodermis a mezofylu, případně buňky ohraničující pryskyřičný kanál. 3. Popište, kde se jedná o primární a sekundární buněčnou stěnu, vysvětlete podle čeho tak soudíte. 4. Jaký tvar by měl protoplast připravený z mezofylové buňky smrku a borovice? 14

Příklady pozorování a vysvětlivky: Anatomická stavba jehlice, celkový pohled na příčný řez Smrk ztepilý (Picea abies) Borovice lesní (Pinus sylvestris pokožka hypodermis pryskyřičný kanál mezofyl střední válec Anatomická stavba jehlice, detail krycích pletiv a mezofylu pokožka hypodermis mezofyl 15

Příklady pozorování a vysvětlivky: Detail sekundární buněčné stěny v hypodermis smrku a buněk ohraničujících pryskyřičný kanál borovice, mezofylová buňka borovice ztenčenina buněčné stěny Příklady nákresů Buňky hypodermis smrku s vrstvením sekundární buněčné stěny a ztenčeninami nad políčky s plazmodesmaty. Tenkostěnná mezofylová buňka borovice. 16

Doplňující informace: A A) Pokožkové buňky smrku se ztlustlými sekundárními buněčnými stěnami a kutikulou na vnější straně této stěny- vrstva je označena šipkou. Lipidické složky kutikuly jsou obarveny růžově lipofilním barvivem Sudan. Průduchy v pokožce B) borovice, C) smrku. Žluté šipky ukazují na svěrací buňky. * Podprůduchová dutina Autofluorescence rostlinných pletiv vyvolaná UV zářením: červeně chlorofyl v mezofylu, modře lignin a fenolické látky vázané v buněčných stěnách. D) Příčný řez jehlicí smrku E) detail středního válce jehlice s vodivými pletivy, Xy xylém, Flo floém, En - endodermis B C * * D E En Flo Xy 17