Funkční vzorek ELISA test pro stanovení specifických prasečích IgA protilátek proti O-antigenům Salmonella enterica ssp. Enterica sérovar Typhimurium Autoři MVDr. Ján Matiašovic, Ph.D. Hana Kudláčková Mgr. Jan Gebauer MVDr. Alena Osvaldová Funkční vzorek byl vytvořen v rámci projektu Národní agentury zemědělského výzkumu (QJ1210115), Ministerstva zemědělství České republiky (MZe 0002716202) a projektu AdmireVet (CZ.1.05/2.1.00/01.0006, ED0006/01/01). 2013 ISBN 978-80-86895-37-6
Funkční vzorek ELISA test pro stanovení specifických prasečích IgA protilátek proti O-antigenům Salmonella enterica ssp. Enterica sérovar Typhimurium Autoři MVDr. Ján Matiašovic, Ph.D. Hana Kudláčková Mgr. Jan Gebauer MVDr. Alena Osvaldová Funkční vzorek byl vytvořen v rámci projektu Národní agentury zemědělského výzkumu (QJ1210115), Ministerstva zemědělství České republiky (MZe 0002716202) a projektu AdmireVet (CZ.1.05/2.1.00/01.0006, ED0006/01/01). 2013 2
OBSAH Úvod 4 I. Cíl metodiky 5 II. Vlastní popis metodiky 5 II.1. Metodika ELISA reakce 5 II.2. Validace ELISA reakce 6 III. Srovnání novosti postupů 10 IV. Popis uplatnění certifikované metodiky 10 V. Ekonomické aspekty 10 VI. Seznam použité související literatury 10 VII. Seznam publikací s využitím funkčního vzoru 11 Dedikace 11 3
Úvod Nejčastějšími původci salmonelových infekcí prasat v České republice i většiny zemí Evropské unie jsou netyfoidní sérovary Salmonella enterica, zejména pak sérovary Typhimurium a Derby, které se vyskytují v přibližně 65% případů kultivačního záchytu salmonel. Dalších 25% případů představují sérovary Enteritidis a Agona (EFSA 2008). Sérovary Typhimurium a Derby mají shodné O-antigeny lipopolysacharidového obalu (O1, O4, O5, O12), sérovary Enteritidis (O1, O9, O12) a Agona (O4, O12) se s nimi shodují ve dvou O-antigenech (Murray a kol., 1995). O-antigeny jsou imunogenní a u prasat se proti nim vytváří protilátková odpověď (Nielsen a kol., 1995). Použití lipopolysacharidu S. Typhimurium jako antigenu v ELISA soupravě tak umožňuje detekci protilátek proti všem čtyřem sérovarům salmonel. Kromě náhodných infekcí původem z kontaminovaného krmiva nebo prostředí (Boughton a kol., 2007) jsou zdrojem infekce prasat jedinci vylučující salmonely trusem. Častým zdrojem infekce pro selata jsou jejich latentně infikované matky. Po odstavu selata z infikovaných vrhů dál šíří infekci mezi dosud neinfikovaná selata (Proux a kol., 2001). K infekci prasat dochází nejčastěji orální cestou. Po průchodu žaludkem se salmonely množí ve střevu a pronikají zejména přes stěnu ilea do submukózy a lymfatických orgánů (Scherer et al., 2008). Slizniční imunita tak má významnou úlohu při obraně organismu před infekcí a její důležitou složkou jsou IgA protilátky přítomné v lumenu střeva (Matiasovic a kol. 2013). IgA protilátky se dostávají do kolostra ze séra, později do mléka také sekrecí B-lymfocytů usídlených v mléčné žláze (Porter a kol. 1970). Nízké hladiny IgA protilátek proti lipopolysacharidu S. Typhimurium v séru odpovídají nízkým hladinám IgA protilátek v kolostru, naproti tomu při absorbanci IgA v séru vyšší než 0,3 je následně v kolostru vysoká hladina IgA protilátek proti lipopolysacharidu S. Typhimurium (Graf 1). Měření hladiny IgA protilátek proti lipopolysacharidu S. Typhimurium v séru nebo kolostru prasnice tak umožňuje odhadnout chráněnost selat před infekcí S. Typhimurium. 4
Graf 1: Vztah hladiny IgA proti lipopolysacharidu S. Typhimurium v séru a kolostru I. Cíl metodiky Cílem metodiky bylo zavést a validovat ELISA test, který bude umožňovat detekci specifických IgA protilátek proti S. Typhimurium v prasečím séru, plazmě, kolostru, mléku a obsahu střev. Taková ELISA metoda není v současné době komerčně dostupná. II. Vlastní popis metodiky II.1. Metodika ELISA reakce Specifický antigen použitý v testu je komerčně dostupný lipopolysacharid S. Typhimurium (Sigma-Aldrich, kat. č. L6511). 5
Jamky mikrotitrační desky (Maxisorp, Nunc, Dánsko) jsou potaženy antigenem ředěným v příslušném pracovním ředění v karbonát-bikarbonátovém pufru (0.05 M, ph 9.6) v objemu 100 μl na jamku (inkubace 16 hodin, 4ºC). Následně jsou desky třikrát promyty PBS s obsahem 0,05% tweenu (PBS-T, ph 7,2). Vyšetřované vzorky prasečího séra nebo plazmy jsou ředěny 100x, vzorky kolostra a mléka 1000x a vzorky střevního obsahu 2x v PBS-T s přídavkem 0,5 % kaseinového hydrolyzátu a v objemu 100 μl jsou aplikovány do jamek mikrotitrační desky. Po inkubaci (1h, 37 C, vlhká komůrka) je deska třikrát promyta roztokem PBS-T a do jamek je přidáno 100 μl konjugátu značeného křenovou peroxidázou (Goat anti-pig IgA conjugate, Bethyl Laboratories, Montgomery, USA) v příslušném pracovním ředění. Po inkubaci (60 min, 37 C, vlhká komůrka) je deska opět třikrát promyta a do jamek je přidáno 100 μl roztoku substrátu s chromogenem TMB Complete (Test-line, Brno, Česká republika). Enzymatická reakce je zastavena po 10 minutách 50 μl 2M kyseliny sírové. Výsledná absorbance je odečítána při 450 nm pomocí multikanálového spektrofotometru Synergy H1 (Biotek, USA). Vyšetřované vzorky a standardní pozitivní a negativní kontrolní séra jsou testovány vždy v duplikátech. Pracovní ředění antigenu a konjugátu je ověřováno boxovou titrací se standardními vzorky sér vždy pro každou novou šarži antigenu a nebo konjugátu. Hranice pozitivity vyšetřovaných vzorků byla určena průměrem hodnot naměřených absorbancí kontrolních sér neinfikovaných zvířat a trojnásobkem směrodatné odchylky tohoto průměru. II.2. Validace ELISA reakce a) Homogenita potažení mikrotitrační desky: Test byl proveden na jedné 96 jamkové desce dané výrobní šarže s jedním vzorkem séra. Byl proveden standardní ELISA test dle pracovního postupu uvedeného výše. Výsledek testu je vyjádřen pomocí průměrné hodnoty absorbancí vyšetřovaného vzorku séra a variačního koeficientu (CV). Vzhledem k okrajovému efektu nejsou do výpočtu hodnoty absorbancí krajních jamek desky (šedá barva). Výsledky testu jsou uvedeny v tabulce 1. 6
Tabulka 1: Výsledky testu homogenity potažení mikrotitrační desky průměrná hodnota absorbance: 1,018 směrodatná odchylka výběrová: 0,089 variační koeficient (%): 8,755 b) Opakovatelnost (intra-assay variability): Tento test byl proveden v jedné výrobní šarži mikrotitračních desek se dvěma negativními (N1 a N2) a dvěma pozitivními (P1 a P2) vzorky séra v šestnácti replikacích od každého vzorku dle standardního pracovního postupu uvedeného výše. Pro každý vzorek byla vypočítána průměrná hodnota absorbance, směrodatná odchylka výběrová a variační koeficient (Tabulka 2). Výsledkem testu je variační koeficient pro celý rozsah měření. Tabulka 2: Výsledky testu opakovatelnosti (intra-assay variability): číslo měření N 1 N 2 P 1 P 2 1 0,121 0,188 1,063 1,924 2 0,100 0,198 1,123 1,723 3 0,144 0,232 1,091 1,899 4 0,095 0,232 1,078 1,806 7
5 0,136 0,257 1,080 1,758 6 0,088 0,289 1,053 1,900 7 0,085 0,298 0,979 1,737 8 0,117 0,265 1,018 1,860 9 0,129 0,205 1,143 1,953 10 0,092 0,248 1,110 1,835 11 0,122 0,216 1,166 1,841 12 0,117 0,255 1,027 1,904 13 0,112 0,293 1,180 2,063 14 0,081 0,240 1,042 1,801 15 0,110 0,222 0,993 1,763 16 0,124 0,217 1,087 1,821 průměrná hodnota absorbance: 0,109 0,241 1,077 1,849 směrodatná odchylka výběrová: 0,016 0,033 0,056 0,086 variační koeficient (%): 14,867 13,554 5,244 4,679 směrodatná odchylka výběrová pro celý rozsah: 0,055 variační koeficient pro celý rozsah (%): 10,649 c) Opakovatelnost (inter-assay variability): Zkouška byla provedena na deskách pocházejících z jedné výrobní šarže. Testování bylo provedeno jako deset samostatných analýz. Byly testovány dva negativní (N1 a N2) a dva pozitivní (P1 a P2) vzorky sér, každý vzorek v kvadruplikátu dle standardního pracovního postupu uvedeného výše. Pro každý vzorek byla vypočítána průměrná hodnota absorbance ze všech testů, dále směrodatná odchylka výběrová a variační koeficient pro celý rozsah měření (Tabulka 3). Tabulka 3: Výsledky testu opakovatelnosti (inter-assay variability) číslo měření N 1 N 2 P 1 P 2 1 0,139 0,245 1,154 1,980 2 0,097 0,244 1,105 2,127 3 0,120 0,321 1,067 2,011 4 0,113 0,337 1,075 1,923 5 0,143 0,313 0,951 1,638 8
6 0,133 0,275 0,990 1,606 7 0,089 0,277 0,938 1,651 8 0,122 0,325 0,971 1,835 9 0,135 0,295 0,961 1,654 10 0,120 0,235 0,888 1,687 11 0,129 0,221 0,950 1,632 12 0,114 0,221 0,923 1,664 13 0,126 0,308 0,902 1,635 14 0,088 0,261 0,886 1,684 15 0,088 0,234 0,961 1,714 16 0,092 0,221 0,976 1,798 17 0,098 0,286 0,929 1,613 18 0,092 0,245 0,882 1,676 19 0,081 0,245 0,948 1,876 20 0,085 0,226 0,960 1,814 21 0,099 0,333 0,875 1,886 22 0,083 0,230 0,998 1,803 23 0,089 0,236 0,880 1,700 24 0,107 0,258 0,907 1,776 25 0,130 0,265 0,987 1,892 26 0,114 0,228 0,912 1,821 27 0,137 0,236 0,934 1,823 28 0,121 0,220 0,978 1,785 29 0,118 0,320 0,990 1,746 30 0,109 0,280 0,995 1,917 31 0,144 0,312 0,886 1,712 32 0,122 0,326 1,145 1,879 33 0,082 0,232 1,048 1,891 34 0,080 0,226 1,045 1,902 35 0,083 0,235 0,989 1,880 36 0,112 0,311 1,059 1,944 37 0,116 0,257 1,080 1,924 38 0,083 0,289 1,053 1,723 39 0,124 0,298 0,979 1,899 40 0,094 0,265 1,018 1,806 N 1 N 2 P 1 P 2 průměrná hodnota absorbance: 0,109 0,267 0,979 1,798 směrodatná odchylka výběrová: 0,020 0,037 0,072 0,123 9
variační koeficient (%): 18,045 13,973 7,380 6,848 směrodatná odchylka výběrová pro celý rozsah: 0,074 variační koeficient pro celý rozsah (%): 12,472 III. Srovnání novosti postupů ELISA metoda pro stanovení specifických IgA protilátek prasat proti O-antigenům netyphoidních sérovarů salmonel prasat není komerčně dostupná. IV. Uplatnění funkčního vzoru ELISA metoda pro stanovení specifických IgA protilátek proti O-antigenům S. Typhimurium je používána v laboratoři autorů k výzkumným účelům. Potenciál dalšího využití metody je v komerčním stanovení odhadu protektivity kolostrální imunity proti S. Typhimurium předávané prasnicemi selatům. V. Ekonomické aspekty Metoda je na pracovišti autorů zavedena a používána. Komerční využití závisí na zavedení vakcinace prasnic proti netyphoidním sérovarům Salmonella enterica. VI. Seznam použité a související literatury 1. The EFSA Journal, 2008, 135: 1-111. 2. Murray, P.R., Baron, E.J., Pfaller, M.A., Tenover, F.C., Yolken, R.H. Manual of Clinical Microbiology. Washington, DC: ASM Press. 1995. 3. Nielsen, B., Baggesen, D., Bager, F., Haugegaard, J., Lind, P. The serological response to Salmonella serovars typhimurium and infantis in experimentally infected pigs. The time course followed with an indirect anti-lps ELISA and bacteriological examinations. Veterinary Microbiology, 1995, 47: 205-18. 10
4. Boughton, C., Egan, J., Kelly, G., Markey, B., Leonard, N. Rapid infection of pigs following exposure to environments contaminated with different levels of Salmonella typhimurium. Foodborne Pathogen and Disease, 2007, 4: 33-40. 5. Proux, K., Cariolet, R., Fravalo, P., Houdayer, C., Keranflech, A., Madec, F. Contamination of pigs by nose-to-nose contact or airborne transmission of Salmonella Typhimurium. Veterinary Research, 2001, 32: 591-600. 6. Scherer, K., Szabó, I., Rösler, U., Appel, B., Hensel, A., Nöckler, K. Time course of infection with Salmonella typhimurium and its influence on fecal shedding, distribution in inner organs, and antibody response in fattening pigs. Journal of Food Protection 2008, 71: 699 705. 7. Matiasovic, J., Kudlackova, H., Babickova, K., Stepanova, H., Volf, J., Rychlik, I., Babak, V., Faldyna, M. Impact of maternally-derived antibodies against Salmonella enterica serovar Typhimurium on the bacterial load in suckling piglets. Veterinary Journal, 2013, 196: 114-115. 8. Porter, P., Noakes, D.E., Allen, W.D. Secretory IgA and antibodies to Escherichia coli in porcine colostrum and milk and their significance in the alimentary tract of the young pig. Immunology. 1970, 18:245-257. VII. Seznam publikací s využitím funkčního vzoru 1. Matiasovic, J., Kudlackova, H., Babickova, K., Stepanova, H., Volf, J., Rychlik, I., Babak, V., Faldyna, M. Impact of maternally-derived antibodies against Salmonella enterica serovar Typhimurium on the bacterial load in suckling piglets. Veterinary Journal, 2013, 196: 114-115. Dedikace Funkční vzorek ELISA test pro stanovení specifických prasečích IgA protilátek proti O-antigenům Salmonella enterica ssp. Enterica sérovar Typhimurium byl vytvořen v rámci projektu Národní agentury zemědělského výzkumu (QJ1210115), Ministerstva zemědělství České republiky (MZe 0002716202) a projektu AdmireVet (CZ.1.05/2.1.00/01.0006, ED0006/01/01). 11
Vydal: Výzkumný ústav veterinárního lékařství, v.v.i. Hudcova 70, 621 00 Brno Název: ELISA test pro stanovení specifických prasečích IgA protilátek proti O- antigenům Salmonella enterica ssp. Enterica sérovar Typhimurium Autoři: MVDr. Ján Matiašovic, Ph.D. Hana Kudláčková Mgr. Jan Gebauer MVDr. Alena Osvaldová Funkční vzorek ELISA test pro stanovení specifických prasečích IgA protilátek proti O- antigenům Salmonella enterica ssp. Enterica sérovar Typhimurium byl vytvořen v rámci projektu Národní agentury zemědělského výzkumu (QJ1210115), Ministerstva zemědělství České republiky (MZe 0002716202) a projektu AdmireVet (CZ.1.05/2.1.00/01.0006, ED0006/01/01). 12