VYUŽITÍ KULTIVAČNÍCH A BIOCHEMICKÝCH METOD A POLYMERÁZOVÉ ŘETĚZOVÉ REAKCE PRO STANOVENÍ CLOSTRIDIUM TYROBUTYRICUM

Podobné dokumenty
ACTA UNIVERSITATIS AGRICULTURAE ET SILVICULTURAE MENDELIANAE BRUNENSIS SBORNÍK MENDELOVY ZEMĚDĚLSKÉ A LESNICKÉ UNIVERZITY V BRNĚ

ACTA UNIVERSITATIS AGRICULTURAE ET SILVICULTURAE MENDELIANAE BRUNENSIS SBORNÍK MENDELOVY ZEMĚDĚLSKÉ A LESNICKÉ UNIVERZITY V BRNĚ

Laboratorní testování na přítomnost koliformních bakterií, psychrotrofních a termorezistentních mikroorganismů a sporotvorných anaerobních bakterií

PCR IN DETECTION OF FUNGAL CONTAMINATIONS IN POWDERED PEPPER

THE USE OF HIGH PRESSURE PROCESSING ON ELIMINATION OF MICROORGANISMS IN VEGETABLE AND FRUIT JUICES

Výskyt a typizace mléčných bakterií v baleném mase

SKRÍNING PROBIOTICKÝCH KULTUR URČENÝCH PRO VÝROBU FERMENTOVANÝCH POTRAVIN NA SCHOPNOST TVORBY BIOGENNÍCH AMINŮ

ČESKÁ TECHNICKÁ NORMA

P. Sládková, K. Šustová, R. Burdychová

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU PROBIOTICKÝCH BAKTERIÍ RODU ENTEROCOCCUS

ZDRAVOTNÍ NEZÁVADNOST POTRAVIN

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv

Moderní metody stanovení mikroorganismů

DETECTION OF FUNGAL CONTAMINATIONS IN POWDERED PEPPER USING MOLECULAR BIOLOGICAL METHODS

Funkční vzorek 5474/2017

MagPurix Blood DNA Extraction Kit 200

PŘÍČINY KONTAMINACE MLÉKA NĚKTERÝMI TECHNOLOGICKY VÝZNAMNÝMI MIKROORGANIZMY. Ing. R. Seydlová Milcom, as

DIAGNOSTICKÝ KIT PRO DETEKCI MINIMÁLNÍ REZIDUÁLNÍ CHOROBY U KOLOREKTÁLNÍHO KARCINOMU

DETECTION AND MONITORING OF PROBIOTIC MICROORGANISMS IN FERMENTED MILK PRODUCTS

MICROBIAL CONTAMINATION OF FRUIT TEAS

DIAGNOSTICKÝ KIT PRO DETEKCI MINIMÁLNÍ REZIDUÁLNÍ CHOROBY U KARCINOMU PANKREATU

APLIKACE METAGENOMIKY PRO HODNOCENÍ PRŮBĚHU SANAČNÍHO ZÁSAHU NA LOKALITÁCH KONTAMINOVANÝCH CHLOROVANÝMI ETHYLÉNY

Postup při stanovení nového ukazatele mikrobiologické kvality syrového kravského mléka (MPAS) pro výrobu nových mlékárenských výrobků

1. Metodika. Protokol č. F1-4 Metodika: Srovnávací analýza efektivity přípravy rekombinantního proteinu ve fermentoru

NÁVOD PRO STANOVENÍ ŽIVOTASCHOPNÝCH MIKROORGANISMŮ V BIOAEROSOLECH MONITORING VNITŘNÍHO PROSTŘEDÍ V MATEŘSKÝCH ŠKOLKÁCH 2016

ACTA UNIVERSITATIS AGRICULTURAE ET SILVICULTURAE MENDELIANAE BRUNENSIS SBORNÍK MENDELOVY ZEMĚDĚLSKÉ A LESNICKÉ UNIVERZITY V BRNĚ

N Laboratoř hydrobiologie a mikrobiologie

Zubní kaz v časném dětství a mikrobiální flóra. I. Sedláček, L. Žáčková, M. Kukletová, L. Klapušová, J. Kuklová, D. Nováková, P.

OBOROVÁ SPECIFIKACE Březen 2010

α-globin StripAssay Kat. číslo testů 2-8 C

Kultivační metody stanovení mikroorganismů

Aplikace molekulárně biologických postupů v časné detekci sepse

THE CHOICE OF THE MOST SUITABLE TECHNIQUE FOR ISOLATION OF NUCLEIC ACIDS AT DEPARTMENT OF ANIMAL MORPHOLOGY, PHYSIOLOGY AND GENETICS

Diagnostika moru včelího plodu a epizootologická situace v ČR

MOLEKULÁRNĚ BIOLOGICKÉ METODY V ENVIRONMENTÁLNÍ MIKROBIOLOGII. Martina Nováková, VŠCHT Praha

Mykologická analýza potravin

Lactobacillus brevis kazit pivo

Kvantitativní stanovení bakterií mléčného kvašení (BMK) v potravinách

Dana Baudišová. Novinky v mikrobiologii vody 2016

Optimalizace metody PCR pro její využití na vzorky KONTAMINOVANÝCH PITNÝCH VOD

USING OF AUTOMATED DNA SEQUENCING FOR PORCINE CANDIDATE GENES POLYMORFISMS DETECTION

Funkční vzorek 5456/2017. Set ke stanovení minimálních inhibičních koncentrací antimikrobiálních. látek u Enterococcus spp.

ČESKÁ TECHNICKÁ NORMA

Diagnostika infekce Chlamydia trachomatis pomocí molekulárně genetické metody real time PCR nejen u pacientek z gynekologických zařízení

DIAGNOSTICKÝ KIT PRO DETEKCI MINIMÁLNÍ REZIUDÁLNÍ CHOROBY MRD EGFR

CHOVÁNÍ SPOTŘEBITELŮ NA TRHU VÍNA V ČR

ČSN EN ISO ČSN ISO 4832

Seminář izolačních technologií

Konečná zpráva hodnocení různých způsobů přípravy vzorků pro AMPLICOR HPV test firmy Roche

P. Verner, V. Chrást

Braf V600E StripAssay

Výskyt bakterií Pectinatus v prostředí pivovaru

Mykologická analýza potravin

Izolace RNA. doc. RNDr. Jan Vondráček, PhD..

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU KVASINEK RODU SACCHAROMYCES

NRAS StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

Pokračování kultivačních metod

Studentská vědecká konference Sekce: Technologie potravin I (přednášková) Ústav Konzervace potravin (324) Učebna B11, 9:00

ČSN EN ISO ČSN ISO ČSN EN ISO 6579, kromě bodu

Molekulární diagnostika

Využití rep-pcr v bakteriální taxonomii

Obecné zásady interpretace výsledků - mikrobiologie vody

Izolace nukleových kyselin

Určení místa kontaminace sporotvorných bakterií rodu Bacillus při jejich průniku technologií do finálních výrobků metodou ARDRA-PCR

EGFR XL StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

Státní zdravotní ústav Expertní skupina pro zkoušení způsobilosti POSKYTOVATEL ZKOUŠENÍ ZPŮSOBILOSTI AKREDITOVANÝ ČIA

ČESKÁ TECHNICKÁ NORMA

STAFYLOKOKOVÉ ENTEROTOXINY. Zdravotní nezávadnost potravin. Veronika Talianová, FPBT, kruh: 346 Angelina Anufrieva, FPBT, kruh: 336

VYUŽITÍ PRŮTOKOVÉ CYTOMETRIE PRO DETEKCI ÚČINNOSTI FILTRACE BAKTERIÍ V PROCESECH ČIŠTĚNÍ ODPADNÍCH VOD

Ukázky: CCM katalog Anaerostat + generátor anaerobní atmosféry Plastové kličky Termostat se třepačkou. Očkovánía kultivace

PRŮTOKOVÁ CYTOMETRIE - PERSPEKTIVNÍ ALTERNATIVA V ANALÝZE MIKROBIOLOGICKÝCH UKAZATELŮ KVALITY VOD

Braf 600/601 StripAssay

Enterotoxiny Staphylococcus aureus. Jana Kotschwarová Andrea Koťová

DNA TECHNIKY IDENTIFIKACE ŽIVOČIŠNÝCH DRUHŮ V KRMIVU A POTRAVINÁCH. Michaela Nesvadbová

Určeno pro obecné laboratorní užití. Není určeno pro použití v diagnostických postupech. POUZE PRO POUŽITÍ IN VITRO.

ČESKÁ TECHNICKÁ NORMA

ČESKÁ TECHNICKÁ NORMA

ing. Vladimír Dráb Výzkumný ústav mlékárenský Praha, Sbírka mlékárenských mikroorganismů Laktoflora, CCDM, ČR

RNA Blue REAGENS PRO RYCHLOU PŘÍPRAVU ČISTÉ A NEDEGRADOVANÉ RNA (katalogové číslo R011, R012, R013)

MOŽNOSTI VYUŽITÍ ALTERNATIVNÍCH METOD PŘI ŘEŠENÍ VÝJIMEČNÝCH STAVŮ MIKROBIÁLNÍ KONTAMINACE

EVALUATION OF QUALITY FEED FOR ROE-DEER FROM MICROBIOLOGY PERSPECTIVE

Funkční vzorek 5454/2017. Set ke stanovení minimálních inhibičních koncentrací antimikrobiálních. látek u Pseudomonas spp.

ČESKÁ TECHNICKÁ NORMA

Pokročilé biofyzikální metody v experimentální biologii

Membránové procesy v mlékárenském průmyslu

DNA ANALÝZA NEPATOGENNÍCH KLOSTRIDIÍ IZOLOVANÝCH ZE SÝRŮ

Bakteriologická analýza potravin

DETEKCE MIKROORGANISMŮ Srovnání s jinými mikrobiologickými metodami Praktické aplikace. Ladislav Čurda Ústav technologie mléka a tuků VŠCHT Praha

Bakterie mléčného kvašení jako původci kažení masných výrobků. Co je to zkažená potravina? Faktory ovlivňující mikrobiální kažení

ÚLOHA C Klonování PCR produktu do plasmidu

N Laboratoř hydrobiologie a mikrobiologie

Acta hygienica, epidemiologica et microbiologica číslo 1/2002

Funkční vzorek 4595/2018. Set ke stanovení minimálních inhibičních koncentrací antimikrobiálních. látek u Streptococcus suis

Implementace laboratorní medicíny do systému vzdělávání na Univerzitě Palackého v Olomouci. reg. č.: CZ.1.07/2.2.00/

MYKOLOGICKÁ ANALÝZA POTRAVIN

Microbiology of food and animal feeding stuffs - General rules for microbiological examinations

Mikrobiální kontaminace sedimentů. Dana Baudišová

Funkční vzorek 5452/2017. Set ke stanovení minimálních inhibičních koncentrací antimikrobiálních. látek u gramnegativních bakterií II.

Dana Baudišová. Novinky v mikrobiologii vody 2014

Stanovení celkového počtu mikroorganismů

Transkript:

ACTA UNIVERSITATIS AGRICULTURAE ET SILVICULTURAE MENDELIANAE BRUNENSIS SBORNÍK MENDELOVY ZEMĚDĚLSKÉ A LESNICKÉ UNIVERZITY V BRNĚ Ročník LV 3 Číslo 5, 2007 VYUŽITÍ KULTIVAČNÍCH A BIOCHEMICKÝCH METOD A POLYMERÁZOVÉ ŘETĚZOVÉ REAKCE PRO STANOVENÍ CLOSTRIDIUM TYROBUTYRICUM R. Burdychová, P. Sládková Došlo: 9. července 2007 Abstract BURDYCHOVÁ, R., SLÁDKOVÁ, P.: Detection of Clostridium tyrobutyricum using cultivation and biochemical methods and polymerase chain reaction. Acta univ. agric. et silvic. Mendel. Brun., 2007, LV, No. 5, pp. 23 28 Anaerobic spore-forming bacteria of the genus Clostridium are commonly present in raw milk and some milk products. Their spores can survive pasteurization and can provoke so called late blowing defect in cheese caused by butyric acid fermentation. The only species of the genus Clostridium that is able to provoke late blowing is Clostridium tyrobutyricum. In this work, two cultivation methods for detection of butyric acid producing clostridia in raw and pasteurized milk and in cheese samples were compared. The results show that tube method is suitable for route identification (in concentration 10 2 CFU/ml or /g) of clostridia in milk and cheese. The standard cultivation technique is suitable for more sensitive identification (10 CFU/ml or /g). All presumptive colonies grown anaerobically on selective RCM agar with polymyxine B (500 μg/ml) were classified to be of species Clostridium tyrobutyricum using PCR only. The confirmation using API tests were different in 50 % cases. The results show, that described PCR method is suitable for rapid screening of the presence of Clostridium tyrobutyricum in milk and cheese. PCR from one colony is possible to use for the analysis. Clostridium tyrobutyricum, raw and pasteurized milk, cheese, species-specific PCR Bakterie máselného kvašení rodu Clostridium se podílejí na znehodnocení některých mléčných výrobků, především mléka a sýrů. Do mléka se bakterie máselného kvašení dostávají s nečistotami (převážně z výkalů) a zkrmováním nevhodných krmiv (špatně prokysaná kvašená krmiva a siláže, zkažená nebo znečistěná průmyslová a přirozená krmiva). Pasterace mléka před vlastní výrobou sýrů neinaktivuje spory sporotvorných mikroorganismů, které lze zničit pouze teplotami vyššími než 120 C. Při dlouhodobém zrání polotvrdých sýrů dochází k poklesu množství laktózy vlivem fermentační aktivity bakterií mléčného kvašení. Tvoří se kyselina mléčná a laktát vápenatý, zvyšuje se ph sýrů a tím vznikají vhodné podmínky pro vyklíčení spor sporotvorných mikroorganismů. Vyklíčení spor může trvat řádově i týdny, podle podmínek prostředí uvnitř zrajících sýrů (ph, aktivita vody, redoxní potenciál, obsah NaCl). Metabolickou aktivitou sporotvorných organismů vzniká kyselina máselná, vodík a oxid uhličitý; dochází k tvorbě větších i menších dutinek oddělených od sebe tenkou blanou a sýry získávají pálivou chuť po zvětralém másle. Tato vada se označuje jako pozdní duření sýrů (BERGLE a SIVELA, 1990). Pozdní duření sýrů je připisováno druhu Clostridium tyrobutyricum. Bakterie druhu C. tyrobutyricum byly poprvé izolovány a popsány VAN BEYNUMEM a PETTEM v roce 1935 a byly pojmenovány podle řeckého slova tyros (sýr). 23

24 R. Burdychová, P. Sládková Většina metod zabývajících se detekcí přítomnosti bakterií máselného kvašení v mléce a mléčných výrobcích je proto zaměřena na identifikaci a kvantifikaci druhu C. tyrobutyricum. Identifikace bakteriálního rodu Clostridium kultivačními mikrobiologickými metodami není obtížná a vychází ze skutečnosti, že tento rod tvoří endospory, je obligátně anaerobní a Gram pozitivní. Pro stanovení klostridií se používá řada kultivačních médií. Hojně používaným je obohacené médium (reinforced clostridial medium, RCM), které je určeno pro stanovení celkového počtu sporotvorných klostridií v pasterovaných vzorcích potravin. Stanovení druhů klostridií máselného kvašení v rámci rodu je klasickými mikrobiologickými metodami obtížné a kombinuje se s metodami biochemickými. Časté je použití API testů (Biomerieux, Francie), které se opírají o fenotypové vlastnosti mikroorganismů. Vzhledem k tomu, že různé terénní kmeny C. tyrobutyricum mohou mít poněkud odlišné fenotypové vlastnosti než kmeny sbírkové, pro které jsou tyto testy obvykle definovány, bývá laboratorní diagnostika s aplikací těchto metod často nejednoznačná. Z důvodu nepřesnosti v diagnostice druhu C. tyrobutyricum pomocí API testů a jejich poměrně vysoké finanční náročnosti byly vypracovány metody, vycházející z analýzy genomové DNA, které vynikají vysokou přesností a citlivostí (HERMAN a kol., 1995). Cílem této práce bylo porovnat dvě kultivační metody pro detekci bakteriálního druhu C. tyrobutyricum v reálných vzorcích syrového a pasterovaného mléka a v polotvrdých sýrech. Dalším úkolem bylo konfirmovat přítomnost C. tyrobutyricum pomocí API testů a pomocí druhově specifické PCR a obě tyto metody porovnat. MATERIÁL A METODY Bakteriální kmeny a jejich růstové podmínky Bakteriální kmen Clostridium tyrobutyricum 112 byl získán od Ing. Drába (Výzkumný ústav mlékárenský MILCOM, a. s., pobočka Tábor). Buňky byly kultivovány na RCM agaru s neutrální červení (MIL- COM, a.s.) při 37 C pět dní za anaerobních podmínek. Kmen byl použit jako pozitivní kontrola pro zkumavkovou, kultivační a biochemickou identifikaci a pro PCR. Izolace mikroorganismů z mléka a sýrů Vzorky mléka (nepasterované a pasterované) a sýrů (polotvrdé sýry s viditelnou vadou pozdního duření) byly odebrány dle ČSN ISO 707 pro odběr vzorků mléka a mléčných výrobků. Vzorky byly zpracovány dle ČSN ISO 8261. Pro inaktivaci nesporulující mikroflóry byly vzorky zahřáty ve vodní lázni při 85 C 15 min. 1 ml příslušného ředění byl pipetován na Petriho misky a zalit půdou RCM s neutrální červení (MILCOM, ČR) a polymyxinem B (500 mg/l roztoku). Misky byly kultivovány při 37 C pět dní v anaerobních podmínkách. Při zkumavkové metodě byl napipetován 1 ml příslušného ředění vzorku po inaktivaci do sterilní zkumavky a do zkumavky bylo přidáno 9 ml RCM média. Obsah zkumavky byl šetrně promíchán a po mírném zchladnutí zalit sterilním parafinovým voskem z důvodu zajištění anaerobního prostředí. Zkumavky byly inkubovány v termostatu při 37 C po dobu jednoho až pěti dní. Izolace DNA a PCR Lyze buněk sbírkové kultury, izolace DNA, její purifikace a způsob stanovení koncentrace a čistoty byly provedeny dle SAMBROOKA a kol. (2001) a AUSUBELA a kol. (1994). Pro amplifikaci specifické DNA sekvence C. tyrobutyricum byla použita hnízdová PCR a dvě dvojice specifických oligonukleotidových primerů (Ct1F/Ct1R a Ct2F/Ct2R; HERMA a kol., 1995). Specifické primery byly navrženy pro amplifikaci 16S-23S rrna mezerníku DNA C. tyrobutyricum (číslo v genové bance L08062; HERMAN a kol., 1995). PCR reakce byla provedena v termocykleru PTC 130 (MJ Research, Waltham, MA, USA) v celkovém objemu 25 μl a obsahovala 10 ng purifikované DNA v prvním PCR cyklu a 5 μl PCR produktu v druhém cyklu, 10 pmol každého primeru, 1U HotStar Taq DNA polymerázy a příslušné množství HotStar Taq Master Mixu (Qiagen, Hilden, Německo). Templátové DNA byly nejprve denaturovány inkubací při 95 C 15 min. DNA byla amplifikována ve 30 cyklech (denaturace při 95 C/45 s, hybridizace primerů při 55 C/45 s a syntéza komplementárního DNA řetězce při 72 C/75 s). V posledním amplifikačním cyklu byla teplota 72 C prodloužena na 10 min. Jako pozitivní kontrola PCR byla použita DNA izolovaná z buněk kontrolního kmene Clostridium tyrobutyricum 112. Jako negativní kontrola PCR byly použity komponenty PCR bez DNA. Při identifikaci vykultivovaných kolonií z analyzovaných vzorků mléka a sýrů byla do PCR reakce jako DNA templát použita bakteriální kolonie narostlá na RCM agaru s polymyxinem B. PCR produkty o velikosti 173 bp byly detekovány pomocí agarosové gelové elektroforézy na přístroji Easy, model B1 (Owl Scientific, USA) a vizualizovány na UV transluminátoru (EB- 20E Ultralum, USA) po nabarvení ethidium bromidem (0,5 μg/ml).

Využití kultivačních a biochemických metod a polymerázové řetězové reakce 25 VÝSLEDKY Odebráno bylo celkem deset vzorků směsného syrového mléka (č. 1 10, viz Tab. I) od různých producentů, deset vzorků téhož mléka po pasteraci (č. 11 20, viz Tab. I) a dva vzorky polotvrdých sýrů s viditelnou vadou pozdního duření (č. 21 a 22, viz Tab. I). Zkumavková metoda byla v této práci využita k orientačnímu stanovení přítomnosti anaerobních klostridií. Tato metoda je nejnověji doporučena k rychlému stanovení druhů Clostridium sp. produkujících kyseliny a plyn v mléku (NĚMEČKOVÁ a kol., 2006). Již po 24 hodinách kultivace byly zaznamenány pozitivní reakce, konečné výsledky byly odečteny po 48 hodinách. Vlivem tvořící se kyseliny máselné, octové a mléčné docházelo ke změně barvy média z červenofialové na žlutohnědou. Tvorbou vodíku a oxidu uhličitého byla parafinová zátka vyražena směrem vzhůru a agar ve zkumavce byl na několika místech potrhán. Pozitivní reakci poskytly dva vzorky nepasterovaného mléka (č. 1 a 6, Tab. I), jeden vzorek pasterovaného mléka (č. 11, Tab. I) a oba vzorky sýra (č. 21 a 22, Tab. I). Tři vzorky poskytly falešně negativní reakci (č. 5, 15 a 16, Tab. I). I: Srovnání výsledků stanovení anaerobních klostridií a druhu C. tyrobutyricum zkumavkovou metodou, kultivační metodou na pevném agaru, biochemickou identifi kací a identifi kací pomocí PCR Vzorek nepasterované mléko pasterované mléko sýry Číslo vzorku kultivace ve zkumavkách (48 hod kultivace) Kultivační metody kultivace na plotnách (KTJ/ml mléka, KTJ/g sýra), 5 dní kultivace API test Konfirmace PCR 1 + (2,40 ± 0,02) 10 2 C. butyricum C. tyrobutyricum 2 3 4 5 a) (5,20 ± 0,07) 10 1 C. tyrobutyricum C. tyrobutyricum 6 + (6,40 ± 0,07) 10 1 C. sporogenes C. tyrobutyricum 7 8 9 10 11 + (5,80 ± 0,11) 10 1 C. butyricum C. tyrobutyricum 12 13 14 15 a) (1,80 ± 0,11) 10 1 C. tyrobutyricum C. tyrobutyricum 16 a) (2,20 ± 0,11) 10 1 C. sporogenes C. tyrobutyricum 17 18 19 20 21 + (1,00 ± 0,11) 10 2 C. tyrobutyricum C. tyrobutyricum 22 + (5,50 ± 0,23) 10 2 C. tyrobutyricum C. tyrobutyricum + růst bakteriální kultury a bakteriálních kolonií pozitivní růst bakteriální kultury a bakteriálních kolonií negativní a) falešně negativní výsledek

26 R. Burdychová, P. Sládková Stanovení počtů C. tyrobutyricum ve vzorcích mléka a sýrů bylo provedeno plotnovou kultivační metodou. Klostridia byly detekovány ve třech vzorcích nepasterovaného mléka (č. 1, 5, 6, Tab. I) a třech vzorcích pasterovaného mléka (č. 11, 15, 16, Tab. I) a v obou vzorcích sýra (č. 21 a 22, Tab. I) růstem specifických, velkých čočkovitých žlutých kolonií. Čichem bylo možné zaznamenat zápach po kyselině máselné, což ukazovalo na růst C. tyrobutyricum. Tvorba vodíku byla patrná potrháním agaru. Tab. I uvádí počty mikroorganismů KTJ/ml mléka nebo KTJ/g sýra v jednotlivých vzorcích, výsledky jsou statisticky zpracovány na hladině významnosti α = 0,05. Uvedené výsledky potvrzují, že je zkumavková metoda vhodná k rychlému orientačnímu stanovení klostridií v mléku (v koncentraci 10 2 /ml), k citlivějšímu průkazu (10 1 / ml) přítomnosti klostridií v analyzovaném vzorku je vhodnější časově náročnější kultivační metoda. Zařazení do druhu C. tyrobutyricum byl prováděno pomocí API testu API 50 CHB (BioMérieux, Francie) a pomocí druhově specifické PCR. Při identifikaci pomocí biochemických API testů byl identifikován druh C. tyrobutyricum ve 4 vzorcích (Tab. I, vzorek č. 5, 15, 21 a 22), zatímco ve 4 vzorcích byl identifikován jiný druh (C. butyricum, C. sporogenes; Tab. I, vzorek č. 1, 6, 11 a 16). Použitím druhově specifické PCR z 1 bakteriální kolonie byl bakteriální druh C. tyrobutyricum jednoznačně identifikován ve všech vzorcích. Detekce specifických PCR produktů o délce 173 bp získaných amplifikací z DNA bakteriálních kolonií narostlých ze vzorků nepasterovaného a pasterovaného mléka je uvedena na Obr. 1. DISKUSE Před vlastní výrobou sýrů je vhodné vzhledem k jejich kvalitě stanovit počet sporotvorných mikroorganismů C. tyrobutyricum v mléce, protože tyto bakterie jsou ve formě spor schopny přežívat pasterační teplotu a způsobovat vadu pozdního duření při zrání sýrů. Množství spor, které pozdní duření způsobuje, se pohybuje v širokém rozmezí; bylo popsáno, že minimální množství je již pět spor na litr mléka (HERMAN a kol., 1995). Počet spor, které způsobuje pozdní duření sýrů, je závislé také na velikosti a tvaru sýra. Jsou známy i případy, kdy kontaminace jednou endosporou C. tyrobutyricum způsobila vadu pozdního duření u sýru Gouda (CHENG a INGHAM, 1999). HERMAN a kol. (1995) optimalizovali metodu stanovení počtu spor C. tyrobutyricum v mléku určeném pro výrobu polotvrdých sýrů. Tato metoda je velmi rychlá, výsledky stanovení mohou být známy do 24 hod a autoři ji doporučují pro skríning mléka před vlastní výrobou sýrů. 1 2 3 4 M bp 1500 1000 500 173 100 1: Agarosová gelová elektroforéza PCR produktů (173 bp) amplifi kovaných z bakteriálních kolonií narostlých ze vzorků nepasterovaného a pasterovaného mléka. Běh č. 1 a 2: kolonie narostlá ze vzorku nepasterovaného (Tab. I, vzorek č. 1) a pasterovaného mléka (Tab. I, vzorek č. 11), běh č. 3: pozitivní PCR kontrola (C. tyrobutyricum 112, 10 ng DNA), běh č. 4: negativní PCR kontrola, M: 100 bp ladder (New England Biolabs, Anglie) KLIJN a kol. (1995) ve své studii uvádějí, že i přes poměrně vysoký počet spor C. tyrobutyricum v mléku nedocházelo u vyrobeného sýra k vadě pozdního duření. Spory zřejmě měly sníženou schopnost germinace. Bylo také popsáno, že spory různých terénních kmenů C. tyrobutyricum nemusí vynikat schopností tvořit ve významných koncentracích kyselinu máselnou a vodík (KLIJN a kol., 1995). Zvážením uvedených skutečností byly v této práci použity kultivační metody detekce vegetativního stadia C. tyrobutyricum v mléku a v sýrech. Stanovením počtu vegetativních buněk C. tyrobutyricum se zabývaly i jiné práce (STADHOUDERS a kol., 1985; NIEUWENHOF a kol., 1994). Pro konfirmaci přítomnosti C. tyrobutyricum autoři používali bioche-

Využití kultivačních a biochemických metod a polymerázové řetězové reakce 27 mické testy. Z literatury je známo, že jsou výsledky testů, které vycházejí z fenotypových vlastností bakterií často nejednoznačné a vedou k mylným interpretacím, protože se vlastnosti terénních kmenů mohou značně lišit od vlastností kmenů sbírkových, pomocí nichž jsou biochemické testy definovány (FAC- KLAM a COLLINS, 1989). C. tyrobutyricum je navíc poměrně náročné odlišit běžnými kultivačními a biochemickými metodami od jiných druhů rodu Clostridium, které se v mléku a sýrech také často objevují, ale vadu pozdního duření sýrů nezpůsobují. MOCQUOT (1979) nebo GUERICKE (1993) předpokládali, že se na nežádoucím pozdním duření sýrů podílejí i druhy C. beijerinckii, C. butyricum a C. sporogenes. Tento předpoklad byl vyvrácen zavedením molekulárně-biologických detekčních metod v laboratorní diagnostice mikroorganismů. V práci KLIJNA a kol. (1995), ve které byly analyzovány sýry s vadou pozdního duření, byla detekována pouze DNA Clostridium tyrobutyricum. Pro PCR detekci buněk přímo v analyzovaném vzorku je nutné vycházet z předpokladu, že v 1 (5) μl vzorku pro PCR musí být alespoň 1 cílová bakterie (tj. 10 3 /ml). Vzhledem k tomu, že pro vznik vady pozdního duření stačí mnohem menší množství buněk, byl volen postup využívající nejprve kultivace a poté PCR identifikace. S využitím zkumavkové metody a PCR bylo možno velmi rychle (do 48 hod) analyzovat ty vzorky, které obsahovaly větší množství cílových buněk (10 2 /ml). V této práci prokazujeme, že druh C. tyrobutyricum byl pomocí PCR detekován ve všech pozitivních vzorcích nepasterovaného a pasterovaného mléka, stejně jako ve vzorcích sýrů, i když byly výsledky průkazu tohoto druhu použitím biochemických testů v 50 % případů odlišné (Tab. I). Využití druhově specifické PCR při detekci bakterií C. tyrobutyricum významně usnadňuje jejich správnou identifikaci. Popsaná metoda využívá kultivace klostidií na diferenciačním médiu a následnou PCR, která umožňuje poměrně rychle identifikovat přítomnost C. tyrobutyricum v mléku a sýrech. Umožní tak snížit možnost vzniku vady pozdního duření sýrů, případně vzniku vad šelestu či nadouvání tavených sýrů. I když je doba potřebná pro správnou identifikaci C. tyrobutyricum vzhledem k době potřebné pro zpracování mléka na sýry poměrně dlouhá (2 5 dní), po odhalení jeho nežádoucí přítomnosti lze sýry vyrobené z kontaminovaného mléka vyřadit a nečekat tak na projev nežádoucí vady pozdního duření. SOUHRN V syrovém mléku mohou být přítomny anaerobní sporotvorné bakterie rodu Clostridium. Spory těchto mikroorganismů mohou přežívat pasteraci a být příčinou tzv. pozdního duření sýrů. Za původce této vady sýrů byl v nejnovějších studiích označen jediný bakteriální druh, Clostridium tyrobutyricum. V této práci byly srovnány dvě kultivační metody detekce klostridií máselného kvašení v reálných vzorcích syrového a pasterovaného mléka a v polotvrdých sýrech. Výsledky ukázaly, že je zkumavková metoda vhodná k rychlému orientačnímu stanovení klostridií v mléku a sýrech (v koncentraci 10 2 KTJ/ ml nebo /g), k citlivějšímu průkazu (10 1 KTJ/ml nebo /g) přítomnosti klostridií v analyzovaném vzorku je vhodnější časově náročnější kultivační metoda. Pomocí druhově specifické PCR byly všechny presumptivní kolonie narostlé anaerobně na selektivním RCM agaru s polymyxinem B (500 μg/ml) identifikovány jako druh C. tyrobutyricum. Konfirmace pomocí API testů byla v 50 % případů odlišná. Výsledky prokázaly, že je PCR metoda vhodná pro rychlý průkaz přítomnosti C. tyrobutyricum v mléku a sýrech. Lze využít i PCR z jedné bakteriální kolonie. Clostridium tyrobutyricum, syrové a pasterované mléko, sýr, druhově specifická PCR LITERATURA AUSUBEL, F. M., BRENT, R., KINGSTON, R. E., MOORE, D. D., SEIDMAN, J. G., SMITH, J. A., STRUHL, K.: Current protocols in molecular biology. New York: Greene Publishing Associates and Wiley-Interscience. 1994, 350 p. ISBN 0-47150- 338-X. BERGLE, J. L. a SIVELA, S.: Detection and enumeration of clostridial spores related to cheese quality I classical and new methods. Bulletin of the IDF. 1990, 251: 17 23. FACKLAM, R. R., COLLINS, M. D.: Identification of Enterococcus species isolated from human infections by a conventional test schneme. J. Clin. Microbiol. 1989, 27: 3340 3343.

28 R. Burdychová, P. Sládková GUERICKE, S.: Laktatvergarende Clostridien bei der Kaseherstellung. Deutsche Milchwirtschaft. 1993, 44: 735 739. HERMAN, L. M. F., DE BLOCK, J. H., WAES, G. M.: A direct PCR Detection Method for Clostridium tyrobutyricum Spores in up to 100 Milliliters of Raw Milk. Appl. Environ. Microbiol. 1995, 12: 4141 4146. CHENG, S. Y., INGHAM, S. C.: Influence of milk centrifugation, brining and ripening conditions in preventing gas formation by Clostridium spp. in Gouda Cheese. Int. J. Food Microbiol. 2006, 54, 3: 15 24. KLIJN, N., NIEUWENHOF, F. F. J., HOOLWERF, J. D., VAN DER WAALS, C. B., WEERKAM, P. A. H.: Identification of Clostridium tyrobutyricum as the Causative Agent of Late Blowing in Cheese by Species-Specific PCR Amplification. Appl. Environ. Microbiol. 1995, 61: 2919 2924. MOCQUOT, G.: Reviews of the progress of Dairy Science: Swiss-type cheese. J. Dairy Res.. 1979, 46: 133 160. NĚMEČKOVÁ, I., PECHAČOVÁ, M., ROUBAL, P.: Semikvantitativní stanovení Clostridium sp. zkumavkovou metodou. Mlékařské listy. 2006, 95: 16 17. NIEUWENHOF, F. N., KLIJN, N., WEERKAMP, A. H.: Detectic en identificatie van clostridia in kaas met hehulp van DNA-probes. Voedingsmiddelentechnologie. 1994: 16/17: 11 15. SAMBROOK, J. MACCALLUM, P., RUSSELL, D.: Molecular cloning: a laboratory manual. 3rd. ed. New York: Cold Spring Harbor Lab. Press, 2001, 2344 pp. ISBN 0-87969-577-3. STADHOUDERS J., HUP, G., NIEWENHOF, F. F. J.: Silage and cheese quality. NIZO Mededeling. 1985, M19A: 1 40. VAN BEYNUM, J., PETTE, J. W.: Zentralblatt für Bakteriologie, Parasitenkunde, Infektionskrankheiten und Hygiene. 1935. Abteilung II. 93: 198 212. Adresa Ing. Radka Burdychová, Ph.D., Ing. Pavla Sládková, Ústav technologie potravin, Mendelova zemědělská a lesnická univerzita v Brně, Zemědělská 1, 613 00 Brno, Česká republika