37 C hynou!!). protože v kul tur-e rostou jejich procy klické formy, fyziologicky odpovídající

Podobné dokumenty
Protokol č. 7 Pozorování živých a mrtvých buněk kvasinek Vitální test

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU KVASINEK RODU SACCHAROMYCES

Příprava půd pro diskovou difuzní metodu EUCAST a pro vyšetření hodnot MIC bujonovou mikrodiluční metodou. Změny proti předchozí verzi (v. 4.

Přímé stanovení celkového počtu buněk kvasinek pomocí Bürkerovy komůrky Provedení vitálního testu

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU PROBIOTICKÝCH BAKTERIÍ RODU ENTEROCOCCUS

OBOROVÁ SPECIFIKACE Březen 2010

IZOLACE A IDENTIFIKACE PLÍSNÍ

Metody sterilní práce. Očkování a uchovávání mikroorganismů.

DIAGNOSTIKA INFEKČNÍCH CHOROB KULTIVACE V LABORATORNÍCH PODMÍNKÁCH

Cvičení ke kurzu Obecná ekotoxikologie. Úloha A - Stanovení ekotoxicity v testu klíčení rostlin

UNIVERZITA PALACKÉHO V OLOMOUCI PŘÍRODOVĚDECKÁ FAKULTA. Jitka Frébortová LABORATORNÍ CVIČENÍ Z MIKROBIOLOGIE

Kultivační metody stanovení mikroorganismů

Cvičení č. 2: Pasážování buněk. 1) Teoretický základ

MIKROBIOLOGIE. Grampozitivní kokovitá bakterie STAPHYLOCOCCUS AUREUS bakteriální kmen dle ATCC 1260 (CCM 888).

Tvorba trvalých mikroskopických preparátů

CVIČENÍ I. STANOVENÍ FENOTYPU REZISTENCE K VYBRANÝM ANTIBIOTIKŮM

POSTUPY PRÁCE. 1.1 Stanovení počtu erytrocytů

Makrofágy a parazitární infekce

Závěrečná zpráva. Zkoušení způsobilosti v lékařské mikrobiologii (Externí hodnocení kvality) PT#M/20-2/2018 (č. 1043)

Ukázky: CCM katalog Anaerostat + generátor anaerobní atmosféry Plastové kličky Termostat se třepačkou. Očkovánía kultivace

POČÍTÁNÍ BUNĚK. Část mřížky Bürkerovy komůrky. Výška prostoru, v němž jsou buňky nad mřížkou počítány, je 0,1 µm

Odběr a transport biologického materiálu do mikrobiologické laboratoře. Jana Juránková OKM FN Brno

BUNĚČNÁ STĚNA - struktura a role v rostlinné buňce

ANTIBIOTICKÉ DISKY Antibiotické disky pro testování citlivosti

LABORATOŘ OBORU MIKROBIOLOGIE ÚLOHA Č. 11 MIKROBIOLOGICKÝ ROZBOR POTRAVINÁŘSKÉHO VÝROBKU PLOTNOVOU METODOU MIKROBIOLOGICKÁ KONTROLA PROSTŘEDÍ

Řasový test ekotoxicity na mikrotitračních destičkách

Použití v laboratorních podmínkách

Průzkum a prevence prostředí

STANOVENÍ REZIDUÍ INHIBIČNÍCH LÁTEK V MLÉCE

MTI Cvičení č. 2 Pasážování buněk / Jana Horáková

CITLIVOST A REZISTENCE MIKROORGANISMŮ K ANTIBIOTIKŮM

5. Bioreaktory. Schematicky jsou jednotlivé typy bioreaktorů znázorněny na obr Nejpoužívanějšími bioreaktory jsou míchací tanky.

LIDSKÁ CYTOGENETIKA Laboratorní diagnostika

LRR/BUBCV CVIČENÍ Z BUNĚČNÉ BIOLOGIE 3. TESTY ŽIVOTASCHOPNOSTI A POČÍTÁNÍ BUNĚK

Závěrečná zpráva. Zkoušení způsobilosti v lékařské mikrobiologii (Externí hodnocení kvality) PT#M/20-2/2017 (č. 997)

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU KOBALTU METODOU ICP-MS

Závěrečná zpráva. Zkoušení způsobilosti v lékařské mikrobiologii (Externí hodnocení kvality) PT#M/20-2/2016 (č. 952)

Laboratorní testování na přítomnost koliformních bakterií, psychrotrofních a termorezistentních mikroorganismů a sporotvorných anaerobních bakterií

1) Pojem biotechnologický proces a jeho fázování 2) Suroviny pro fermentaci 3) Procesy sterilizace 4) Bioreaktory a fermentory 5) Procesy kultivace,

OBECNÁ MIKROBIOLOGIE MIKROBIOLOGICKÁ LABORATOŘ. Petra Lysková [1]

Kultivace bakterií na

5.06 Teichmanovy krystaly (důkaz krve). Projekt Trojlístek

Bezpečnost práce v laboratoři. Ivana Vítková OKM, FN Brno

Speciální odběrové soupravy krácená verze pro tisk. Odběrové soupravy pro odběr žilní krve

Úloha č. 1 Odměřování objemů, ředění roztoků Strana 1. Úkol 1. Ředění roztoků. Teoretický úvod - viz návod

Hodnocení pekařského droždí

Odběr a transport biologického materiálu do mikrobiologické laboratoře. Jana Juránková OKM FN Brno

1) Teoretická část: DEZINFEKCE A STERlLIZACE

Ověřená technologie 4782/2017

Ověřená technologie 4903/2018

Vyšetřování vody před 100 lety a dnes. RNDr. Jaroslav Šašek Státní zdravotní ústav

ROZDĚLENÍ ANTIMIKROBIÁLNÍCH LÁTEK, VYŠETŘOVÁNÍ CITLIVOSTI. M.Hanslianová Antibiotické středisko OKM FN Brno

Ověřená technologie 4797/2017

DYNAMIKA BAKTERIÁLNÍHO RŮSTU

Téma: Testy životaschopnosti a Počítání buněk

Bezpečnostní list , revize Telefoní číslo Číslo faxu

N Laboratoř hydrobiologie a mikrobiologie

TEORETICKÝ ÚVOD. Počítání buněk

Využití antibakteriálních testů v textilním průmyslu Mgr. Irena Šlamborová, Ph.D.

Kras XL StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

Moderní metody stanovení mikroorganismů

Kroužkovci žížala obecná (laboratorní práce)

Ceník Plastik pro tkáňové kultury Thermo Scientific Nunc 2015

PROTOKOL č.2 Metody sterilní práce Očkování a uchovávání mikroorganismů

Stanovení mikroskopického obrazu ve vodě

CZ.1.07/1.5.00/

LABORATORNÍ DIAGNOSTIKA PARAZITŮ PETRA KUBÁČKOVÁ OKM

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU VÁPNÍKU MANGANOMETRICKY

MIKROBIOLOGICKÁ LABORATOŘ NEMOCNICE ŠUMPERK

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MĚDI, ŽELEZA, MANGANU A ZINKU METODOU FAAS

1 Popis vzorku. 2 Detekční limit vyšetření. 3 Časová náročnost. 4 Zpracování vzorku. 4.1 Množství vzorku. 4.2 Odběr vzorků

Odběry vzorků u pacientů s podezřením na infekci krevního řečiště

Tkáňové kultury rostlin. Mikropropagace

Název: Pozorování ptačího vejce

Cíle: Obecné zásady při odběru vzorků pro bakteriologické vyšetření

LABORATORNÍ POMŮCKY. Pro přípravu mikroskopického preparátu a vlastní mikroskopování jsou nutné tyto laboratorní pomůcky: 1.

IZOLACE DNA (KIT DNeasy Plant Mini)

EKOTOXIKOLOGICKÉ TESTY

Reakce kyselin a zásad

Seminář 6: Diagnostika

Určení koncentrace proteinu fluorescenční metodou v mikrotitračních destičkách

V lednici (2 8 C) Do 24 hod dní BK - 50 dnů. Uricult Při pokojové teplotě Do hod dní. Při pokojové teplotě

Mikrobiologie vody. Gymnázium, Rýmařov, příspěvková organizace. Odborná práce biologického kroužku

α-globin StripAssay Kat. číslo testů 2-8 C

Dana Baudišová. Novinky v mikrobiologii vody 2016

Cvičení 4: CHEMICKÉ SLOŽENÍ BUŇKY, PROKARYOTA Jméno: PROKARYOTA PŘÍPRAVA TRVALÉHO PREPARÁTU SUCHOU CESTOU ROZTĚR BAKTERIÍ

NÁVOD PRO STANOVENÍ ŽIVOTASCHOPNÝCH MIKROORGANISMŮ V BIOAEROSOLECH MONITORING VNITŘNÍHO PROSTŘEDÍ V MATEŘSKÝCH ŠKOLKÁCH 2016

Vitální barvení, rostlinná buňka, buněčné organely

Cvičení 5: VYŠETŘENÍ KRVE Jméno: PŘÍPRAVA TRVALÉHO PREPARÁTU SUCHOU CESTOU - KREVNÍ NÁTĚR

5. BEZPEČNOSTNÍ OPATŘENÍ PŘI POUŽITÍ A MANIPULACI

Luminiscenční bakterie Kat. číslo

S filtračními papíry a membránou je nutno manipulovat pinzetou s tupým koncem.

Speciální nabídka. 15 years of solutions for life science SLEVA 15% NA LABORATORNÍ PLASTY. při objednávce nad Kč. Slavte s námi!

Funkční vzorek 5474/2017

Mikrobiální degradace 1-oktyl 2-pyrrolidonu v povrchových vodách. Zlata Novotná

Protilátky proti Helicobacter pylori (IgG) Návod na použití ELISA testu

Příloha č.5 Seznam PCR vyšetření

KONTROLA HYGIENY VÝROBNÍHO PROCESU

Základní mikrobiologický rozbor vody (povrchové nebo pitné) Cíl cvičení doplňte prosím individuálně dle svého vzorku:

Médium LymphoGrow. Informace o produktu

Transkript:

IZOLACE KLONU BIČ:ÍKOYCU Z ČELEDI TRYPANOSOMATIDAE NA AGAROYÝCHPLOTNÁCI-I Některé trypanosomy obratlovcú a většinu kinetoplastid z bezobratlých (Crithidia, Blastocrithidia. Lcptomona::; aj.) lze pěstov<1-t na plotnách krevního agaru. Protože jsou to organismy aerobní. 111.:ní jejich rlj!:>l inhibován vzdušným kyslíkem. Rostou na povrchu agaru v podobč kolonií viditcln)' ch pouhým okem a lze s nimi pracovat běžnou bakteriologickou technikou. J?ro pa::;úzovúní kultur je v~ak vhodnější použít dvojfázová nebo tekutá média ve zkumavkách (pohodlnčjší manipulace, menší riziko kontaminace). Kultivační média musí obsahovat hemin, ktcr)' je pro tyto bičíkovce nezbytným růstovým faktorem. V komplexních médiích je zpravidla zdrojem heminu krev. Pozor: kultury kinetoplastid včetně druhů izolovaných z l:lovčka a teplokravných obratlovců je třeba pěstovat při teplotě 20-28 C (při 37 C hynou!!). protože v kul tur-e rostou jejich procy klické formy, fyziologicky odpovídající stádiím z bczohrall)'ch pl\.:našečl'l. Kultury na agarov)'ch plotnách v Petriho miskách se osvědčily pro izolaci klonů a pro různé testy z<dllžcn~ na lwdnocení kvantitativních výsevů (plating efficicncy). Ulwl: Izolovat klony Crithiůia sp. výsevem na agarové plotny Kultura: Crithidia sp. REF-1 (Diamond) Médium: SN13-9 agar (Diamond, Herman 1954) NaCl............... 0.6 g Neopcptonc (Dili.:n)...... 2.0 g agar..................... 2.0 g I-hO dcstil.......................... 100 ml Autoklávoval ph I :20 oc 20 min.. poschlazení na 45-50 C přidat 25 ml sterilní defibrinované krve (králičí nl ho I idsk0 ). dob k promíchat, rozplnit do sterilních Petriho misek a nechat utuhnout. Skladnvat v ledničce v dobře uzavřených sáčcích z PVC.

IZOLACE KLONU METODOU MEZNÍHO ŘEDĚNÍ (limiting dilution) Metoda mezního ředění na mikrotitračních destičkách je operativní a spolehlivá technika vhodná pro izolaci klonů prvoků i buněk tkáilových kultur. Silně zředěné inokulum v tekutém kultivačním médiu se rozplní do jamek mikrotitrační destičky (96 jamek o objemu 250 ul). Buňky rozptýlené v médiu se tak dostanou jen do několika jamek (optimálně 2-5), zatímco většina jamek bude naplněna čistým médiem. Je přitom velmi pravděpodobné, že naočkované jamky budou obsahovat jen jedinou builku. Po vhodné inkubaci vyočkujeme klonové kultury z pozitivních jamek do média ve zkumavkách a pro zajištění klonové čistoty opakujeme izolační proceduru ( 1-2x). Optimální ředění in o kula pro izolaci klonu se může lišit u různých druhů prvoků i u různých kmenů téhož druhu. Ředění je proto třeba upravit podle "klonotvorné efektivnosti" (CFE, clone forming efficiency) dané populace. Pro stanovení CFE ředíme inokulum tak, aby bylo možno předpokládat, že všechny jamky budou naočkovány jednou buňkou (cca 100 buněk na destičku). počet pozitivních jamek CFE X 100 početnaočkovanýchjamek Úkol: Izolovat klony Trichomonas vaginalis metodou mezního ředění. Kultura: Axenická, Trichomonas vaginalis kmen TV Tl nebo TV 10-02 Médium: Diamond TYM ph 6.2 + 10% koňského séra +antibiotika: penicilin 1000 I.U./ml streptomycin 500 ug/ml Další potřeby: Sterilní mikrotitrační destičky typu T Uamky s rovným dnem) Sterilní víčka na destičky Osmikanálová pipeta Anaerostat s vyvíječem plynů a indikátorem

Pracovní postup 1. Kulturu trichomonád v logaritmické fázi růstu spočítat v Biirkerově komůrce, upravit koncentraci sterilním médiem TYM ph 6.2 s antibiotiky na 5x 10 4 buněk/ml a dále ředit ve zkumavkách desítkovou řadou až do konečné koncentrace 5 buněk/ml. 2. Sterilní pipetou přenést 1 ml posledního ředění (tj. 5 buněk) do falkonky s 24 ml média TYM a dobře promíchat. 3. Pomocí osmikanálové pipety naplnit touto ředěnou suspensí sterilní mikrotitrační destičku (typ T, 250 )ll na jamku, tzn. pipetovat 2 x 125 )ll na jamku). 4. Poklopit destičku víčkem, označit a uložit do anaerobní nádoby s vyvíječem anaerobní atmosféry. Kultivovat 3 dny při 3't>C. 5. Po pomnožení izolované kultury opakovat izolaci klonu (1-2x) pro zajištění klonové čistoty.

~edit kuliuru (Ji!J 5 buněk 1 '"' a 250 fl~o v.i d. ja"'..ac. ~ míchat --.. ' 1 l. 3 lt.. S' ' f., 'I 10 '\1 11. Aooooooooooo!00000000000 cooooooooooo Dooooooooooo E O O O 0 O. O O 0 0 O O ~ o o o o o o o o o 00 Gooooooo oooo HOOOOOOOOOOO Anaerobní inkubace. 31 c_ 3 dru.f + i'olovat klon'i z. po2it.ivnich jamc.k

Izolace klonů zřcd'ovací metodou Kultura: Tetrahymena pyriformis Var. I, Mating type IV- axenická Médium: Peptonová voda: 2% Proteose pepton, Difco v destilované vodě +antibiotika: penicilin 1000 U/ml : amikacin 250 U/ml Úkol: Izolovat klony T. pyriformis zřeď ovací metodou a vypěstovat klonové kultury. 1) Půlená krycí sklíčka narovnat ve 2 řadách na podložní sklo tak, aby okraje sklíček mírně přesahovaly. Uložit do Petriho misky a sterilizovat horkým vzduchem. 2) Do 4 sterilních zkumavek napipetovat po 1 ml média. 3) Do prvé zkumavky sterilně přidat 0,1 ml kultury T. pyriformis, promíchat a přenést 0,1 ml do další zkumavky. Tímto způsobem pokračovat v sériovém ředění kultury až do poslední zkumavky. 4) Sterilní pastérkou nakapat vzorky jednotlivých ředění na podložní sklo. Zkontrolovat mikroskopicky a zvolit nejvhodnější ředění (cca 1 organismus v kapce). 5) Asepticky nakapat optimálně ředěnou kulturu na na krycí sklíčka v Petriho misce, vždy 1 malou kapku na 1 sklíčko. ' 6) Zkontrolovat pod mikroskopem. Sklíčko s kapkou, v níž je pouze jediný organismus,. přenést sterilní pinzetou do média. 7) Inkubovat při teplotě místnosti, pozorovat a zaprotokolovat růst klonu. '1, '

kul1urlf. Míkrosko pická J<ontrora {) o o o o iwlae-e. klohu