VIII. mezinárodní konference

Transkript

1 VIII. mezinárodní konference dubna 2016 PROGRAM KONFERENCE / SBORNÍK ABSTRAKT

2 Laboratorní přístroje pro bioimplantologii, LifeScience, mikrobiologické i biochemické laboratoře anaerobní a hypoxické boxy centrifugy - kompletní řada malé, multifunkční, velkokapacitní, vysokootáčkové, ultracentrifugy biohazard a laminární boxy dekontaminační systémy termostaty, CO2 inkubátory bezodtahové digestoře pipety a laboratorní plast gel - imaging analýza chladicí, mrazicí a kryo boxy sterilizátory, autoklávy, myčky mikrodestičkové readery systémy pro monitoring teploty koncentrátory vzorků, lyofilizátory purifikátory DNA/RNA - KingFisher příprava ultračisté vody zařízení pro chov laboratorních výstav Dodáním přístroje naše péče nekončí Akreditované metrologické služby poradenství autorizovaný servis akreditovaná zkušební laboratoř měření zařízení s řízenou čistotou vzduchu preventivní služby validace akreditovaná kalibrační laboratoř kalibrace měřidel teploty, jedno a více bodové měření teploty v zařízeních s regulací teploty

3 Společnost pro bioimplantologii ČLS JEP Fakulta chemická, Ústav chemie materiálů VUT v Brně Central European Institute of Technology (CEITEC) a Biomedicínské centrum Lékařské fakulty v Plzni pořádají VIII. mezinárodní konferenci BIOIMPLANTOLOGIE dubna 2016, Brno, hotel Myslivna PROGRAM KONFERENCE Partneři konference

4 PROGRAMOVÝ VÝBOR / HLAVNÍ TÉMATA / ORGANIZAČNÍ GARANT Programový výbor prof. RNDr. Josef Jančář, CSc. Fakulta chemická, Ústav chemie materiálů VUT v Brně MUDr. Barbara Kubešová Společnost pro bioimplantologii ČLS JEP MUDr. Petr Vališ, Ph.D. Ortopedická klinika LF MU a Fakultní nemocnice Brno doc. MUDr. Daniel Lysák, Ph.D. Hematologicko-onkologické oddělení Fakultní nemocnice Plzeň Hlavní témata konference Kmenové buňky Nové materiály pro bioimplantologii a tkáňové inženýrství Seeding buněk, jejich růst a transformace Klinická aplikace tkání a buněk Preklinická testování Legislativa a systém kvality Organizační garant SYMMA, spol. s r.o. Aleš Martinek Pompova 602/ Brno Mobil: a.martinek@symma.cz

5 PARTNEŘI A VYSTAVOVATELÉ Partneři a vystavovatelé Nanopharma, a.s., Nová 306, Pardubice TRIGON PLUS spol. s r.o., Čestlice 93, Říčany u Prahy Vystavovatelé BIOMEDICA ČS, s.r.o., Sokolovská 100/94, Praha 8 BIOHEM s.r.o., Zlatovská 2211, Trenčín, Slovakia Eppendorf Czech & Slovakia, s.r.o., Voděradská 2552/16, Říčany u Prahy EXBIO Praha, a.s., Nad Safinou II 341, Vestec VA-BIOS, s.r.o., Navrátilova 8a, Brno VIVACOM s.r.o., Králodvorská 16, Praha

6 ODBORNÝ PROGRAM KONFERENCE 28. dubna hod Zahájení konference hod Přednáškový blok I. Předsednictvo: doc. Ing. Lucy Vojtová, Ph.D., Mgr. Eva Filová, Ph.D. Injektovatelný kostní cement modifikovaný biodegradabilním polymerem: od přípravy po ex-vivo testy Vojtová L. 1,2, Montufar E. B. 1, Michlovská L. 1, Brtníková J. 1, Chamradová I. 1, Fohlerová Z. 1, Konečná Z. 3, Zikmund T. 1, Kaiser J. 1, Jančář J. 1,2,3, Srnec R. 4, Fedorová P. 4, Pěnčík J. 5, Sedlinská M. 6, Nečas A. 4 CEITEC Středoevropský technologický institut, Vysoké učení technické v Brně 1 SCITEG, a.s., Brno 2 Ústav chemie materiálů, Fakulta chemická, Vysoké učení technické v Brně 3 Oddělení chirurgie a ortopedie, Klinika chorob psů a koček, Fakulta veterinárního lékařství, Veterinární a farmaceutická univerzita Brno 4 Ústav pozemního stavitelství, Fakulta stavební, Vysoké učení technické Brno 5 Oddělení reprodukce, Klinika chorob koní, Fakulta veterinárního lékařství, Veterinární a farmaceutická univerzita Brno 6 Příprava amfifilních nanovláken s přídavkem anorganických aditiv s potenciálním využitím v medicíně Švachová V., Vojtová L., Jančář J., Khunová V., Fohlerová Z., Pavliňák D. Vysoké učení technické v Brně Vplyv zložených kolagénnych pien s obsahom lyzátu trombocytov na rast fibroblastov a mezenchymálnych kmeňových buniek Filová E. 1, Prosecká E. 1, Plencner M. 1, Lukášová V. 1,2, Daňková J. 1,3, Sovková V. 1,3, Švachová V. 4, Babrnáková J. 4, Vojtová L. 5,6, Amler E. 1,3, Jančář J. 4,5,6, Kubešová B. 7 Ústav experimentální medicíny AV ČR, v.v.i. 1 Přírodovědecká fakulta UK, Praha 2 2. Lékařská fakulta UK Praha 3 Ústav chemie materiálů, Fakulta chemická, VUT v Brně 4 CEITEC VUT v Brně 5 SCITEG, a. s., Česká republika 6 VA-BIOS, s.r.o. Brno 7 Mesenchymální kmenové buňky jako podpora in vitro kultury dospělých prasečích kardiomyocytů Miklíková M., Čedíková M., Jarkovská D., Nalos L., Kuncová J., Švíglerová J., Vištejnová L., Lysák D., Štengl M. Biomedicínské centrum, Lékařská fakulta v Plzni Univerzity Karlovy v Praze Nové biopolymerní funkční hydrogely pro regeneraci měkkých tkání Poštulková H. 1, Nedomová E. 1, Vojtová L. 1,2, Jančář J. 1,2,3, Holland Ch. 4 CEITEC - Středoevropský technologický institut VUT v Brně 1 SCITEG, a. s., Česká republika 2 Ústav chemie materiálů, Fakulta chemická, VUT v Brně 3 University of Sheffield, Department of Materials Science and Engineering, Sheffield, UK 4

7 ODBORNÝ PROGRAM KONFERENCE 28. dubna 2016 Zobrazení 3D struktury srdeční tkáně pomocí nano-ct Žídek J. 1, Konečná Z. 1, Perestrelo A.R. 2, Forte G. 2, Švachová V. 1, Vojtová L. 1, Brtníková J. 1, Jančář J. 1, Perpétua Pinto-do-Ó 3, Kaiser J. 1, Zikmund T. 1 Středoevropský technologický institut, VUT, Brno 1 Mezinárodní centrum klinického výzkumu, Fakultní nemocnice u sv. Anny v Brně 2 Instituto de Engenharia Biomédica (INEB), Univerzita Porto, Portugalsko 3 Diskuze hod Coffee break hod Přednáškový blok II. Předsednictvo: Lucie Vištejnová, Ph.D., Ing. Irena Vacková, CSc. Mesenchymální kmenové buňky v regeneraci poškozených jater - současné poznatky a naše zkušenosti Vištejnová L. 1,3, Miklíková M. 1,3, Křečková J. 1,2, Kolinko Y. 1,3, Kubíková T. 1,3, Šlajerová M. 3, Tonar Z. 1,3, Karlíková M. 1, Hošek P. 1, Lysák D. 1, Králíčková M. 1,3, Třeška V. 2, Liška V. 1,2 Biomedicínské centrum, Lékařská fakulta v Plzni, Univerzita Karlova v Praze 1 Chirurgická klinika, Fakultní nemocnice v Plzni, Karlova Univerzita v Praze 2 Ústav histologie a embryologie, Lékařská fakulta v Plzni, Univerzita Karlova v Praze 3 Comparison of Human Mesenchymal Stromal Cells from Bone Marrow and Adipose Tissue and their Use in Pre-clinical Studies Kočí Z. 1,2,3, Kubinová Š. 1,2, Vacková I. 1, Turnovcová K. 1, Chudíčková M. 1,4, Holáň V. 1,4, Konrádová Š. 3, Vochomůrková E. 3, Školoudík L. 5,6, Filip S. 5,6, Bém R. 7, Dubský M. 7, Jirkovská A. 7, Syková E. 1,2 The Academy of Sciences of the Czech Republic, Institute of Experimental Medicine, Prague 1 2 nd Faculty of Medicine, Charles University, Prague 2 Bioinova, Ltd, Prague 3 Faculty of Science, Charles University, Prague 4 University Hospital in Hradec Králové 5 Faculty of Medicine in Hradec Králové 6 Diabetes Centre, Institute for Clinical and Experimental Medicine, Prague 7 Derivation of mesenchymal stem cells from human fresh and cryopreserved umbilical cord tissue Vacková I., Turnovcová K., Syková E. Ústav experimentální medicíny Diskuze hod Oběd

8 ODBORNÝ PROGRAM KONFERENCE 28. dubna hod Přednáškový blok III. Předsednictvo: MUDr. Petr Vališ, Ph.D., MUDr. Marcela Linhartová, Ph.D. Chronická nestabilita lokte a její řešení pomocí kadaverózního štěpu m. tib. posterior Vališ P., Hořák J., Rouchal M., Otaševič T., Novák J. Ortopedická klinika LF MU a Fakultní nemocnice Brno Význam spongioplastiky při osteosyntéze periprotetických suprakondylických zlomenin kolenního kloubu Ženčica P., Motyčka J., Vališ P., Heger J. Ortopedická klinika LF MU a Fakultní nemocnice Brno Replantace kryoprezervované příštítné tkáně kazuistiky Linhartová M., Kubešová B., Štrajtová L., Pacasová R., Řehořová J. Fakultní nemocnice Brno Larvoterapie Čech R. Chirurgické oddělení Nemocnice Jihlava, p.o. Diskuze hod Coffee break hod Přednáškový blok IV. Předsednictvo: doc. MUDr. Daniel Lysák, Ph.D. Mgr. Monika Holubová, Ph.D. Léčivý přípravek moderní terapie - ze dna až na vrchol Holubová M. 1, Vlas T. 2, Jindra P. 3, Vrbová J. 1, Benešová M. 1, Lysák D. 1 Hematologicko-onkologické oddělení, Fakultní nemocnice Plzeň 1 Ústav imunologie a alergologie, Fakultní nemocnice Plzeň 2 Český národní registr dárců kostní dřeně, Plzeň 3 Mesenchymální kmenové buňky v léčbě steroidně refrakterní reakce štěpu proti hostiteli po alogenní transplantaci krvetvorných kmenových buněk Lysák D., Holubová M., Karas M., Hrabětová M., Steinerová K., Jungová A., Jindra P. Hematologicko- onkologické oddělení, Fakultní nemocnice Plzeň Rekonstrukce defektu spánkové kosti s využitím mezenchymálních kmenových buněk Školoudík L., Chrobok V., Kalfeřt D., Kočí Z., Syková E., Popelář J., Laco J., Dědková J., Filip S. Klinika otorinolaryngologie a chirurgie hlavy a krku Fakultní nemocnice Hradec Králové Unikátní nanovlákenné scaffoldy pro buněčný výzkum Vysloužilová L. Nanopharma, a.s.

9 ODBORNÝ PROGRAM KONFERENCE 28. dubna 2016 Co lze očekávat od kontroly SÚKL? Koblihová I., Tomková E. Státní ústav pro kontrolu léčiv Diskuze hod Schůze Společnosti pro bioimplantologii ČLS JEP hod Společenský večer POZNÁMKY

10 ODBORNÝ PROGRAM KONFERENCE 29. dubna hod Přednáškový blok V. Předsednictvo: MUDr. Miroslav Kuklík, CSc., Ing. Věra Jenčová, CSc. Příprava orientovaných scaffoldů pro tkáňové inženýrství metodou drawing Strnadová K. 1, Lukášek J. 2, Krabicová I. 2, Stanislav L. 3, Řezanka M. 2, Jenčová V. 1, Stibor I. 2, Lukáš D. 1 Katedra netkaných textilií a nanovlákenných materialů, Technická univerzita v Liberci 1 Ústav pro nanomateriály, pokročilé technologie a inovace, Technická univerzita v Liberci 2 Katedra aplikované kybernetiky, Technická univerzita v Liberci 3 Material tissue properties in the relation to the implantology: posttranslational changes and mutagenesis Kuklík M. 1,2,3 Dpt.of Molecular endokrinology, Inst. of Endocrinology, Prague 1 Dpt. of Clinical Genetics - ambulance, Prague 2 Institute of Medical Genetics and Biology, 3rd Medical faculty, Charles University 3 Priepustnosť humánnej acelulárnej dermálnej náhrady pre topickú antimikrobiálnu liečbu Hajská M., Nemcová L., Slobodníková L., Dragúňová J., Koller J. Klinika popálenín a rekonštrukčnej chirurgie LF UK Bratislava Degradační chování polyesterových nanovlákenných materiálů určených pro výrobu maloprůměrových cévních náhrad Jenčová V., Horáková J., Mikeš P., Durasová Z., Strnadová K., Pavlíková T., Vejsadová L. Technická Univerzita v Liberci Diskuze hod Coffee break hod Přednáškový blok VI. Předsednictvo: MUDr. Barbara Kubešová, Ing. Pavel Fikar Non-invasive and label-free on-chip analysis of cellular processes using dielectrophoretic cytometry Fikar P., Georgiev V., Lissorgues G., Lysák D., Holubová M., Georgiev D. Západočeská univerzita v Plzni Úloha rádiologického technika v tíme pre aplikáciu kmeňových buniek / KMB / Gyurkovics P., Šalátková A. Nemocničná a.s.,rádiologické oddelenie, Slovensko Paramagnetic nanoparticles in stem cell therapy Šalingová B., Synek P., Zajíčková L., Nichtová Z., Koutná I. Masarykova univerzita, Fakulta informatiky, CBIA 10

11 ODBORNÝ PROGRAM KONFERENCE 29. dubna 2016 Diskuze hod Závěr konference hod Oběd POZNÁMKY 11

12 POSTEROVÁ SEKCE 1. Využití mikro-ct při hodnocení struktury biomateriálů a jejich interakcí s tkáněmi Bartoš M. 1, Vrbová R. 1, Levorová J. 1, Suchý T. 2, Foltán. R. 1 Stomatologická klinika 1. LF UK a VFN, Praha 1 Oddělení kompozitních a uhlíkových materiálů, ÚSMH AV ČR, Praha 2 2. Mezenchymální kmenové buňky z tukové tkáně nebo kostní dřeně? Osteogenní diferenciace a tvorba extracelulární matrix. Daňková J., Szöke K., Brinchmann J. Ústav experimentální medicíny AV ČR,.v.v.i. 3. Hemokompatibilita nanovlákenných materiálů Horáková J., Mikeš P., Pavlíková T., Kaláb M., Lonský V., Suchý T., Heczková B., Jakůbková Š., Jiroušová J., Procházková R. Technická univerzita v Liberci 4. Nové hydrogely na bázi rostlinné pryskyřice pro regeneraci měkkých tkání Nedomová E., Vojtová L. CEITEC - Středoevropský technologický institut 5. Vytvoření systému řízeného dodávání léčiv pomocí liposomů adherovaných na nanovlákna vytvořených metodou centrifugačního zvlákňování Rampichová M. 1, Buzgo M. 1, Míčková A. 1,2, Vocetková K. 1,2, Sovková V. 2, Lukášová V. 2, Rustichelli F. 2, Amler E. 1,2 Univerzitní centrum energeticky efektivních budov, ČVUT v Praze 1 Oddělení tkáňového inženýrství, Ústav experimentální medicíny AV ČR, Praha 2 6. Mitochondria organelle transfer: a new method of bioimplantology Sládková J. 1, Capek M. 2, Hansikova H. 1, Martinek J. 3, Zeman J. 1 Department of Pediatrics and Adolescent Medicine 1 and Institute of Histology and Embryology 3, 1st Faculty of Medicine, Charles University and General University Hospital, Department of Biomathematics, Institute of Physiology, the Czech Academy of Sciences, Prague, Czech Republic 2 7. Porous hydrogel as 3D cell scaffold mimic the anatomy of bone marrow extracellular matrix Studená R. 1,3, Horák D. 2, Baloun J. 1, Plichta Z. 2, Pospíšilová Š. 1,3 Medical Genomics, CEITEC MU, Brno 1 Polymer Particles, Institute of Macromolecular Chemistry AS CR, v.v.i. 2 CMBGT IHOK, FN Brno 3 8. Utilization of autologous mesenchymal stem cells in posterolateral spinal fusion in degenerative spine disease: Preliminary results from clinical study Syka M. 1,2, Vaněček V. 1,2, Kryl J. 3, Konrádová Š. 1,2, Růžičková K. 1,2, Štulík J. 3, Syková E. 1 Institute of Experimental Medicine AS CR, Prague 1 Bioinova, s.r.o, Prague 2 Department of Spinal Surgery, Charles University, 2 nd Faculty of Medicine and University Hospital Motol, Prague 3 12

13 POSTEROVÁ SEKCE 9. Autologous bone marrow mesenchymal stem cells in the treatment of amyotrophic lateral sclerosis: Preliminary results from clinical study Syka M. 1,2, Homola A. 3,4, Konrádová Š. 1,2, Růžičková K. 1,2, Rychmach P. 2, Voříšek I. 1, Forostyak S. 1,4, Jendelová P. 1,4, Bojar M. 3, Syková E. 1,4 Institute of Experimental Medicine AS CR, Prague 1 Bioinova, s.r.o, Prague 2 Department of Neurology, Charles University, 2 nd Faculty of Medicine and University Hospital Motol, Prague 3 Department of Neuroscience, Charles University, 2 nd Faculty of Medicine and University Hospital Motol, Prague Nanovrstvy na bázi uhlíku pro funkční plochy implantátů z titanových slitin Vlčák P., Horažďovský T. ČVUT v Praze, Fakulta strojní 11. Možnosti využitia mezenchymálnych kmeňových buniek z tukového tkaniva v liečbe popáleninových jaziev Záhorec P., Dragúňová J., Koller J., Orság M., Bukovčan P. Klinika popálenín a rekonštrukčnej chirurgie LF UK Bratislava 12. Příprava 2D a 3D in vitro modelů dermálních fibroblastů pro studium chronické rány Zavaďáková A., Vištejnová L., Moravec J., Klein P. Biomedicínské centrum LF v Plzni UK 13. The sentinel assay for monitoring of neural precursor cells differentiation Žižková M., Suchá R., Rákocyová M., Doležalová D., Červenka J., Kovářová H. Ústav živočišné fyziologie a genetiky, AV ČR, v.v.i. 14. Human thymic cell cultures on nanofibrous scaffolds Vysloužilová L., Vodseďálková K., Berezkinová L., Vejsadová L. Nanopharma, a.s. 13

14 VŠEOBECNÉ INFORMACE Místo konání Hotel Myslivna, Nad Pisárkami 276/1, Brno. Registrační poplatky do 15. dubna 201 na místě Lékaři člen společnosti pro bioimplantologii Kč 1 650,- Kč 1 850,- nečlen Kč 1 850,- Kč 2 050,- NLZP člen společnosti pro bioimplantologii Kč 1 450,- Kč 1 650,- nečlen Kč 1 650,- Kč 1 850,- /V registračním poplatku je zahrnuto vstupné na konferenci, občerstvení v průběhu akce, vstupenka na společenský večer, sborník abstrakt, konferenční materiály a DPH./ Akreditace Konference je ohodnocena kredity České lékařské komory, Komory vysokoškolsky vzdělaných odborných pracovníků ve zdravotnictví a Profesní a odborové unie zdravotnických pracovníků ČR dle platných předpisů. Certifikáty vydávají registrující osoby po ukončení konference u registračního pultu. Registrace účastníků 28. dubna hod 29. dubna hod Registrující osoby Vám rádi sdělí Vaše event. dotazy. Konferenční materiály Program konference vč. sborníku abstrakt, konferenční set a jmenovka. Oběd Menu 28. dubna 2016, cena Kč 100,- Menu 29. dubna 2016, cena Kč 100,- Hovězí polévka s játrovou rýží Zeleninová polévka 120 g Smažený kuřecí řízek 120 g Přírodní vepřový závitek Štouchané brambory s cibulkou Dušená rýže Nealkoholický nápoj nebo malé pivo Nealkoholický nápoj nebo malé pivo Zájemce o bezmasé jídlo žádáme, aby svůj požadavek sdělili registrujícím osobám. Společenský večer Společenský večer formou rautu se koná dne 28. dubna 2016 v hotelu Myslivna. Cena vstupenky na společenský večer je zahrnuta v registračním poplatku. Informace pro přednášející Audiovizuální technika Dataprojektor PC Bezdrátová myš vč. laserpointu Náhledový monitor Techniku je možné si vyzkoušet před zahájením konference nebo v průběhu přestávek. Prezentace Prezentace, které od Vás převezme technická obsluha v přednáškovém sále, prosíme dodat na USB Flash disku. Posterová sekce Bude umístěna v prostorách doprovodné výstavy a foyer. Poster formát A0. 14

15 SBORNÍK ABSTRAKT BIOIMPLANTOLOGIE dubna 2016 Abstrakta neprošla jazykovou úpravou. 15

16 Barbara Kubešová (ed): VIII. mezinárodní konference Bioimplantologie 2016 Vydavatel: MSD, spol. s r.o., Brno ISBN

17 SBORNÍK ABSTRAKT Obsah: Injektovatelný kostní cement modifikovaný biodegradabilním polymerem: od přípravy po ex-vivo testy...19 Příprava amfifilních nanovláken s přídavkem anorganických aditiv s potenciálním využitím v medicíně...20 Vplyv zložených kolagénnych pien s obsahom lyzátu trombocytov na rast fibroblastov a mezenchymálnych kmeňových buniek...21 Mesenchymální kmenové buňky jako podpora in vitro kultury dospělých prasečích kardiomyocytů...22 Nové biopolymerní funkční hydrogely pro regeneraci měkkých tkání...23 Zobrazení 3D struktury srdeční tkáně pomocí nano-ct...24 Mesenchymální kmenové buňky v regeneraci poškozených jater - současné poznatky a naše zkušenosti...25 Comparison of Human Mesenchymal Stromal Cells from Bone Marrow and Adipose Tissue and their Use in Pre-clinical Studies...26 Derivation of mesenchymal stem cells from human fresh and cryopreserved umbilical cord tissue...27 Chronická nestabilita lokte a její řešení pomocí kadaverózního štěpu m. tib. posterior...28 Význam spongioplastiky při osteosyntéze periprotetických suprakondylických zlomenin kolenního kloubu...29 Replantace kryoprezervované příštítné tkáně- kazuistiky...30 Larvoterapie...31 Léčivý přípravek moderní terapie - ze dna až na vrchol...32 Mesenchymální kmenové buňky v léčbě steroidně refrakterní reakce štěpu proti hostiteli po alogenní transplantaci krvetvorných kmenových buněk...33 Rekonstrukce defektu spánkové kosti s využitím mezenchymálních kmenových buněk...34 Unikátní nanovlákenné scaffoldy pro buněčný výzkum...36 Co lze očekávat od kontroly SÚKL?...37 Příprava orientovaných scaffoldů pro tkáňové inženýrství metodou drawing...38 Material tissue properties in the relation to the implantology: posttranslational changes and mutagenesis...39 Priepustnosť humánnej acelulárnej dermálnej náhrady pre topickú antimikrobiálnu liečbu

18 SBORNÍK ABSTRAKT Degradační chování polyesterových nanovlákenných materiálů určených pro výrobu maloprůměrových cévních náhrad...42 Non-invasive and label-free on-chip analysis of cellular processes using dielectrophoretic cytometry...43 Paramagnetic nanoparticles in stem cell therapy...44 POSTEROVÁ SEKCE Využití mikro-ct při hodnocení struktury biomateriálů a jejich interakcí s tkáněmi...45 Mezenchymální kmenové buňky z tukové tkáně nebo kostní dřeně?...46 Osteogenní diferenciace a tvorba extracelulární matrix...46 Hemokompatibilita nanovlákenných materiálů...47 Nové hydrogely na bázi rostlinné pryskyřice pro regeneraci měkkých tkání...48 Vytvoření systému řízeného dodávání léčiv pomocí liposomů adherovaných na nanovlákna vytvořených metodou centrifugačního zvlákňování...49 Mitochondria oganelle transfer: new method of bioimplantology...50 Porous hydrogels as 3D cell scaffolds mimic the anatomy of bone marrow extracellular matrix...51 Utilization of autologous mesenchymal stem cells in posterolateral spinal fusion in degenerative spine disease: Preliminary results from clinical study...52 Autologous bone marrow mesenchymal stem cells in the treatment of amyotrophic lateral sclerosis: Preliminary results from clinical study...53 Nanovrstvy na bázi uhlíku pro funkční plochy implantátů z titanových slitin...54 Možnosti využitia mezenchymálnych kmeňových buniek z tukového tkaniva v liečbe popáleninových jaziev...55 Příprava 2D a 3D in vitro modelů dermálních fibroblastů pro studium chronické rány...56 The sentinel assay for monitoring of neural precursor cells differentiation...57 Human thymic cell cultures on nanofibrous scaffolds

19 SBORNÍK ABSTRAKT Injektovatelný kostní cement modifikovaný biodegradabilním polymerem: od přípravy po ex-vivo testy Vojtová L. 1,2, Montufar E.B. 1, Michlovská L. 1, Brtníková J. 1, Chamradová I. 1, Fohlerová Z. 1, Konečná Z. 3, Zikmund T. 1, Kaiser J. 1, Jančář J. 1,2,3, Srnec R. 4, Fedorová P. 4, Pěnčík J. 5, Sedlinská M. 6, Nečas A. 4 CEITEC Středoevropský technologický institut, Vysoké učení technické v Brně 1 SCITEG, a.s., Brno 2 Ústav chemie materiálů, Fakulta chemická, Vysoké učení technické v Brně 3 Oddělení chirurgie a ortopedie, Klinika chorob psů a koček, Fakulta veterinárního lékařství, Veterinární a farmaceutická univerzita Brno 4 Ústav pozemního stavitelství, Fakulta stavební, Vysoké učení technické Brno 5 Oddělení reprodukce, Klinika chorob koní, Fakulta veterinárního lékařství, Veterinární a farmaceutická univerzita Brno 6 Současné komerční kostní cementy jsou pro svou křehkost a pomalé vstřebávání limitovány pro použití v mini-invazivní chirurgii a v léčbě defektů kostí nesoucích zatížení. Samovytvrzovací kostní cement kombinující resorbovatelnou polymerní komponentu a speciální keramickou složku, který je injekčně snadno a rychle aplikovatelný (jehlou průměru G20) do tvarově různorodých defektů v kostní tkáni, je vhodnou alternativou existujícím cementům. Syntetický polymer zajistí tvarovou stálost a vytvrzení cementu ve fyziologických podmínkách. Díky rychlé biodegradaci polymeru je tvorbou vnitřní mikroporozityakcelerována rychlost resorpce cementu. Speciální interakce polymeru s anorganickýmičásticemi umožňuje dosáhnout pevnosti srovnatelnés pevností trabekulární kosti. Za účelem dosažení optimálních zpracovatelských a biomechanických vlastností byla sledována kinetika vytvrzování pomocí reologie a rentgenové difrakce, formování vnitřní mikrostruktury pomocí rastrovací elektronové mikroskopieataké 3D morfologie polymerních cementů pomocí počítačové mikrotomografie. Následně byla měřena cytotoxicita připravených kompozitů, kterápotvrdila dobrou biokompatibilitu polymer-kompozitního cementu. Mechanické zkoušky kompozitního cementu byly provedeny na modelech psích krátkých kostí, kdy polymer-kompozitní cement byl aplikován na vady, které simulují otvory zbylé po odstranění šroubů. Měření maximální síly a deformace kostních modelů potvrdilo dostačující mechanickou podporu kostní architektury statisticky významné úrovně.pro využití polymer-kompozitní biodegradabilní kostní pasty k výplním iatrogenních nebo patologických kostních defektů v humánní i veterinární klinické praxi je třeba ještě provést preklinické studie na animálních modelech. Tento výzkum byl finančně podpořen Ministerstvem školství, mládeže a tělovýchovy ČR v rámci projektu CEITEC 2020 (LQ1601) a výzkumného projektu IGA VFU Brno (91/2014/FVL) včetně finanční podpory institucionálního výzkumu FVL VFU Brno. 19

20 SBORNÍK ABSTRAKT Příprava amfifilních nanovláken s přídavkem anorganických aditiv s potenciálním využitím v medicíně Švachová V. 1, Vojtová L. 2,3, Jančář J. 1,2,3, Khunová V. 4, Fohlerová Z. 5, Pavliňák D. 6 Vysoké učení technické v Brně, Chemická fakulta 1 CEITEC Central European Institute of Technology, Vysoké učení technické 2 SCITEG, a.s., Brno 3 Ústav prírodných a syntetických polymérov, Slovenská technická univerzita v Bratislave 4 CEITEC Central European Institute of Technology Masarykova univerzita - CEITEC MU 5 Ústav fyzikální elektroniky, Masarykova Univerzita 6 Předložená práce se zabývá přípravou (bio)polymerních kompozitních nanovláken pomocí procesu elektrostatického zvlákňování. V této práci byl výběr jednotlivých složek pro přípravu nanovláken zvolen tak, aby vyhovoval nárokům tkáňového inženýrství. Úspěšně byla připravena amfifilnínanovlákna ze směsi želatiny a syntetického polykaprolaktonu, která byla následně modifikována pomocí anorganického plniva nanotrubekhaloysitu. Chemické složení připravených nanovláken bylo studováno pomocí infračervené spektroskopie a elementární energiově disperzní spektroskopie, které potvrdily přítomnost halloysitu v nanovlákenném materiálu. Pomocí rastrovací elektronové mikroskopie byl určen průměr získaných nanovláken (cca kolem 380 nm) a sledována jejich morfologie. Připravená nanovlákna na bázi želatiny, polykaprolaktonu a haloysitu vykazovala vyšší hydrolytickou a termickou stabilitu než vlákna bez přídavku nanotrubek. Navíc, nanovlákna modifikovaná haloysitem o obsahu 0.5 hm. % vykazovala pevnost dvakrát vyšší než nemodifikovaná nanovlákna včetně zvýšeného prodloužení (o 380 %), které dodává novým nanovláknům výraznou pevnost, lesk a elasticitu. Prvotní studie cytotoxicity ukazují, že materiál je biokompatibilní a vhodný na použití v tkáňovém inženýrství jako materiál pro regeneraci měkké tkáně obsahující nosiče léčiv, respektive signálních molekul využitelných v regenerativní medicíně. Navíc může být připravený materiál vhodnou platformou pro růst buněk a testování léčiv. Tento výzkum byl finančně podpořen Ministerstvem školství, mládeže a tělovýchovy ČR v rámci projektů CEITEC 2020 (LQ1601) a LO1411 (NPU I) a Evropským fondem pro regionální rozvoj v rámci projektu CZ.1.05/2.1.00/

21 SBORNÍK ABSTRAKT Vplyv zložených kolagénnych pien s obsahom lyzátu trombocytov na rast fibroblastov a mezenchymálnych kmeňových buniek Filová E. 1, Prosecká E. 1, Plencner M. 1, Lukášová V 1,2, Daňková J. 1,3, Sovková V. 1,3, Švachová V. 4, Babrnáková J. 4, Kubešová B 5., Vojtová L. 6,7, Amler E. 1,3, Jančář J. 4,6,7 Ústav experimentální medicíny AV ČR, v.v.i. 1 Přírodovědecká fakulta UK, Praha 2 2. Lékařská fakulta UK Praha 3 Ústav chemie materiálů, Fakulta chemická, VUT v Brně 4 VA-BIOS, s.r.o. Brno 5 CEITEC VUT v Brně 6 SCITEG, a. s., Česká republika 7 Trojrozmerné porézne nosiče musia podporovať bunkovú adhéziu, rast a stimulovať diferenciáciu. Našim cieľom bolo zistiť cytotoxicitu kolagénnych kompozitných pien pomocov 3T3 fibroblastov a ich potenciál pre hojenie kostných defektov v kombinácii s nano hydroxyapatitom (HA). Boli pripravené peny buď z čistého kolagénu I, alebo s pridaním chitosanu, chitin/chitosan/ glukanového komplexu alebo oxidovanej celulózy. Peny v každej skupine buď obsahovali alebo neobsahovali lyzát prasačích trombocytov. Peny boli osadené 3T3 fibroblastami a kultivované v médiu s 10 % fetálneho séra počas 14 dní. V druhom experimente boli testované peny podobného zloženia, ale s obsahom HA v pomere 1:1 ku kompozitnému nosiču. Na peny sme nasadili humánne mezenchymálne kmeňové bunky (hmsc) a kultivovali sme ich v MEM médiu s 2,5% fetálneho séra počas 21 dní. Bola testovaná bunková viabilita (MTS test) a proliferácia (dsdna test). Bunky boli nasnímané konfokálnym mikroskopom po nafarbení DioC6(3) a propidium jodidom. U pien s HA bola imunohistochemicky sledovaná aj tvorba osteokalcínu. Kompozitné peny bez HA s obsahom lyzátu, chitosanu a oxidovanej celulózy preukázali zvýšenie viability a množstva DNA u 3T3 fibroblastov, predovšetkým deň kultivácie v porovnaní s penami bez lyzátu, avšak čisté kolagéne peny ukázali pokles množstva DNA počas kultivácie. U pien s obsahom hydroxyapatitu bola najvyššia viabilita u kolagénu s oxidovanou celulózou s/bez lyzátu v porovnaní s ostatnými penami deň kultivácie, na 7. den bola u pien s chitosanom+lyzátom a chitín/chitosan/glukanovým komplexom v porovnaní s penami bez lyzátov a oboma čistými kolagénnymi penami. Meranie DNA ukázalo štatisticky vyššie množstvo DNA u oboch pien s oxidovanou celulózou ako u ostatných nosičov po celú dobu kultivácie. Tvorba osteokalcínu bola zistená u všetkých penových nosičov s hmsc 7. deň kultivácie. Penové zložené nosiče boli vhodnejšie na kultiváciu 3T3 fibroblastov ako čisté kolagénové peny, pričom lyzát trombocytov mal pozitívny účinok na rast a viabilitu buniek. Lyzát PRP mal pozitívny účinok na viabilitu hmsc pri zníženom obsahu séra, na proliferáciu buniek nemal vplyv. Projekt bol podporený projektami MŠMT (NPU I: LO1309 a CEITEC 2020 (LQ1601) a grantovou agentúrou Univerzity Karlovy (grant č ). 21

22 SBORNÍK ABSTRAKT Mesenchymální kmenové buňky jako podpora in vitro kultury dospělých prasečích kardiomyocytů Miklíková M., Čedíková M., Jarkovská D., Nalos L., Kuncová J., Švíglerová J., Vištejnová L., Lysák D., Štengl M. Biomedicínské centrum, Lékařská fakulta v Plzni Univerzity Karlovy v Praze Akutní srdeční příhoda patří celosvětově k nejčastějším onemocněním, mnoho pacientů se pak dlouhodobě potýká s jejími následky. Studie ukazují, že aplikace mesenchymálních kmenových buněk (MSC) výrazně zlepšuje regeneraci postiženého srdce. V posledních letech, spolu se zahájením klinického testování, se však objevují pochyby o tom, zda MSC skutečně funkci kardiomyocytů (CMC) a regeneraci srdce ovlivňují. Detailní představu o interakci MSC a CMC mohou poskytnout vhodně navržené in vitro modely kombinující kultivace obou těchto buněčných typů. Cílem práce bylo zhodnotit vliv MSC na CMC v in vitro kultuře sledováním morfologických a elektrofyziologických parametrů CMC. Kostní dřeň byla získána aspirací z tuberositas tibiae prasat domácích v anestezii. Mononukleární buňky byly izolovány gradientovou centrifugací (435 g, 30 min) a MSC byly separovány adhezí na kultivační plast. MSC byly kultivovány ve standartním kultivačním médiu α-modified Eagle?s medium obohaceném o 10% FBS a 100 IU/ml penicilinu a 100 mg/ml streptomycinu v inkubátoru (37 C, 5% CO2). Pro experimenty byly použity MSC ve 4. pasáži. Fenotyp izolovaných MSC byl zkontrolován průtokovou cytometrií na pozitivitu znaků CD73, CD90, CD44 a negativitu na CD45. Diferenciační potenciál MSC byl zkontrolován diferenciací do osteo- a chondro-linie. CMC byly izolovány z levých komor dospělých prasat domácích po zavěšení celého srdce do Langerhoffova aparátu a konstantním průplachu Tyrodovým roztokem následovaným kolagenázou (300mg/ 300ml) s albuminem (150mg/ml). CMC byly kultivovány samostatně nebo na speciálních košíčcích oddělených od MSC polyesterovou membránou v kultivačním médiu obohaceném o glukózu (4500mg/l). Každý den byla sledována morfologie CMC pod světelným mikroskopem. V prvním a třetím dnu po izolaci byla sledována viabilita CMC měřením aktivity dehydrogenáz pomocí barviva resazurin. Ve stejných časových intervalech byly měřeny také hodnoty vápníkových proudů a kontraktilita CMC při rostoucí frekvenci (0,5? 2Hz). Čerstvě izolované CMC vykazují typické příčně pruhované uspořádání buněčného skeletu a mají podlouhlý tvar s ostře lomenými konci. V průběhu kultivace se konce zaoblují a pruhování mizí. CMC ko-kultivované s MSC si uchovávají svou charakteristickou morfologii v průměru o 1 den déle. Viabilita buněk každým dnem kultivace klesá u obou skupin bez signifikantních rozdílů. Naměřené hodnoty vápníkových proudů ukazují, že MSC podporují normální funkci CMC, ale rozdíl není statisticky významný. Naopak, CMC ko-kultivované s MSC si signifikantně déle zachovávají schopnost kontrakce. Ko-kultivace CMC s MSC zlepšuje morfologické i elektrofyziologické parametry CMC a MSC pozitivně přispívají k udržení správných fyziologických funkcí adultních CMC izolovaných ze srdeční tkáně. 22

23 SBORNÍK ABSTRAKT Nové biopolymerní funkční hydrogely pro regeneraci měkkých tkání Poštulková H. 1, Nedomová E. 1, Vojtová L. 1,2, Jančář J. 1,2,3, Holland Ch. 4 CEITEC - Středoevropský technologický institut VUT v Brně 1 SCITEG, a. s., Česká republika 2 Ústav chemie materiálů, Fakulta chemická, VUT v Brně 3 University of Sheffield, Department of Materials Science and Engineering, Sheffield, UK 4 Polysacharidy a proteiny jsou díky svým unikátním vlastnostem vhodnými kandidáty pro přípravu hydrogelů k regeneraci měkkých tkání. Příprava nových funkčních hydrogelů pro tkáňové inženýrství z biodegradabilních a cenově dostupných biomateriálů přitahuje mnoho pozornosti. Předložená práce se zbývá přípravou hydrogelů z cenově dostupné přírodní polysacharidové pryskyřice hojně využívané v potravinářství a přírodního hedvábného proteinu, který je dobře zpracovatelný, dostupný, biodegradabilní a biokompatibilní s dobrými mechanickými vlastnostmi často využívaný v oblasti tkáňového inženýrství. Předkládáme práci, která se zabývá interakcemi daných biopolymerů a výslednými vlastnostmi připravených hydrogelů charakterizovaných pomocí infračervené (FTIR) a ultrafialové (UV/VIS) spektroskopie, reologií, analýzou mechanických vlastností, botnací studií, měřením smáčivosti a cytotoxicity pro keratinocyty. Prvotní studie ukazují, že hydrogelový přírodní biomateriál není cytotoxický a má vhodné vlastnosti pro využití například jako krytí popálenin. Tento výzkum byl finančně podpořen Ministerstvem školství, mládeže a tělovýchovy ČR v rámci projektu CEITEC 2020 (LQ1601). 23

24 SBORNÍK ABSTRAKT Zobrazení 3D struktury srdeční tkáně pomocí nano-ct Žídek J. 1, Konečná Z. 1, Perestrelo A. R. 2, Forte G. 2, Švachová V. 1, Vojtová L. 1,3, Brtníková J. 1, Jančář J. 1,3, Perpétua Pinto-do-Ó 4, Kaiser J. 1, Zikmund T. 1 Středoevropský technologický institut, VUT, Brno 1 Mezinárodní centrum klinického výzkumu, Fakultní nemocnice u sv. Anny v Brně (FNUSA-ICRC) 2 SCITEG, a. s. 3 Instituto de Engenharia Biomédica (INEB), Univerzita Porto, Portugalsko 4 Pro léčení, prevenci a kardiochirurgické zákroky je nutné rozpoznat zdravou srdeční tkáň a tkáň postiženou infarktem. Tyto tkáně byly doposud analyzovány pomocí fluorescenční mikroskopie a rastrovací elektronové mikroskopie, které detekovaly pouze jejich povrch. V příspěvku nabízíme možnost zobrazování těchto tkání pomocí počítačové nanotomografie. Zjistili jsme, že tato metoda je vhodná pro skenování jak zdravé, tak i postižené srdeční tkáně bez použití kontrastní látky, kdy je možné dosáhnout poměrně vysokého rozlišení (až 500 nm). V příspěvku bude prezentována metodika přípravy vzorků, jejich skenování a následná rekonstrukce dat do 3D modelu. V další části budou prezentovány strukturní elementy, které lze v této tkáni pozorovat. Detailní analýzou těchto struktur získaných ze 3D nanoct v kombinaci s konfokální, fluorescenční a rastrovací mikroskopií by bylo možné v budoucnu navrhnout jak fyzikálně-chemické tak i strukturální vlastnosti bioinspirovaných syntetických nanostrukturovaných tkání, které by sloužily jako in-vitro 3D modely progrese srdečních onemocnění. Výsledky tohoto výzkumu byly získány v rámci projektu CEITEC 2020 (LQ1601) za finančního přispění Ministerstva školství, mládeže a tělovýchovy České republiky v rámci účelové podpory z prostředků Národního programu udržitelnosti II a projektu FNUSA-ICRC no. CZ.1.05/1.1.00/ (OP VaVpI). 24

25 SBORNÍK ABSTRAKT Mesenchymální kmenové buňky v regeneraci poškozených jater - současné poznatky a naše zkušenosti Vištejnová L. 1,3, Miklíková M. 1,3, Křečková J. 1,2, Kolinko Y. 1,3, Kubíková T. 1,3, Šlajerová M. 3, Tonar Z. 1,3, Karlíková M. 1, Hošek P. 1, Lysák D. 1, Králíčková M. 1,3, Třeška V. 2, Liška V. 1,2 Biomedicínské centrum, Lékařská fakulta v Plzni, Univerzita Karlova v Praze 1 Chirurgická klinika, Fakultní nemocnice v Plzni, Karlova Univerzita v Praze 2 Ústav histologie a embryologie, Lékařská fakulta v Plzni, Univerzita Karlova v Praze 3 Játra si zachovávají do značné míry vlastní schopnost regenerovat. Avšak při závažném onemocnění zahrnující jak chronickou intoxikaci alkoholem, tak selhání funkce vlivem metabolického syndromu, diabetu či vznikem karcinomu, játra ztrácejí svoji regenerační kapacitu. Současnou dostupnou léčbou je pouze transplantace jater. Proto zde existuje prostor pro vývoj nových metodik, které by vlastní regeneraci jater podpořily. Mesenchymální kmenové buňky patří mezi tyto nové a slibné léčebné přístupy, avšak definitivní potvrzení jejich pozitivního účinku musí být předmětem dalších experimentálních studií. Cílem této práce bylo ověřit vliv mesenchymálních kmenových buněk na kvalitu obnoveného jaterního parenchymu z pohledu morfologie a metabolické funkce u prasečího modelu jaterního poškození. U prasete domácího bylo vyvoláno jaterní poškození vlivem opakované 10 týdnů trvající biliární obstrukce. Po 10ti týdnech byla resekována polovina objemu jater a do portální žíly byla aplikována suspenze mesenchymálních kmenových buněk (MSCs) ve fyziologickém roztoku (n=10) a kontrolním zvířatům byl aplikován fyziologický roztok (n=11). Aplikovaný počet MSCs by stanoven na 10 6 buněk/ 1kg zvířete. Po 14ti dnech od aplikace MSCs bylo zvíře utraceno a byla odebrána játra na histologické hodnocení morfologie. Během celého experimentu byla v 4denních intervalech odebírána krev na biochemickou (jaterní enzymy, bilirubin, urea, NH4+) a imunologickou (IL-6, IL-8, TNF-alpha, TGFbeta) analýzu a sonograficky byl měřen celkový objem jater. Histologické kvantitativní hodnocení bylo provedeno na parafínových řezech barvených hematoxylinem-eosinem, pojivová tkáň byla zvýrazněna anilínovou modří a jadernou červení a jednotlivé hepatocyty byly barveny alciánovou modří a PAS (Periodic Acid Schiff) reakcí. Celý experiment byl schválen příslušnou etickou komisí. Při morfometrickém kvantitativním hodnocení obnoveného jaterního parenchymu byl hodnocen objemový podíl (Vv, %) pojivové tkáně, hepatocytů, jednojaderných a více jaderných hepatocytů, cév, žlučovodů, průměrná plocha jaterního lalůčku (mm 2 ) a průměrný objem jednojaderných a vícejaderných hepatocytů (mikro m 3 ). Skupina s aplikovanými MSCs vykazovala vyšší podíl pojivové tkáně, cév a žlučovodů a nižší podíl jednojaderných hepatocytů ve srovnání se skupinou bez MSCs. Tyto změny však nebyly statisticky signifikantní. Hladiny prozánětlivých cytokinů IL-6, IL-8, TNF-alpha, růstového faktoru TGF-beta, jaterních enzymů, bilirubinu, urey a NH4+ byly zlepšeny ve prospěch skupiny s aplikovanými MSCs, avšak veškeré změny byly opět statisticky nesignifikantní. Celkový objem jater byl po celou dobu sledování zvířete větší u skupiny s aplikovanými MSCs. Podařilo se zavést, vzhledem k malému počtu zveřejněných publikací, originální model jaterního poškození vlivem biliární obstrukce u velkého zvířete, prasete domácího. Avšak aplikace MSCs za účelem podpory regeneračního procesu v játrech neukázala ve sledovaných parametrech jednoznačný signifikantní pozitivní efekt. Práce byla podpořena Národním programem udržitelnosti I (NPU I) č. LO1503 poskytovaného Ministerstvem školství, mládeže a tělovýchovy a dále programem PRVOUK P36 Lékařské fakulty v Plzni, Univerzity Karlovy v Praze. 25

26 SBORNÍK ABSTRAKT Comparison of Human Mesenchymal Stromal Cells from Bone Marrow and Adipose Tissue and their Use in Pre-clinical Studies Kočí Z. 1,2,3, Kubinová Š. 1,2, Vacková I. 1, Turnovcová K. 1, Chudíčková M. 1,4, Holáň V. 1,4, Konrádová Š. 3, Vochomůrková E. 3, Školoudík L. 5,6, Filip S. 5,6, Bém R. 7, Dubský M. 7, Jirkovská A. 7, Syková E. 1,2 The Academy of Sciences of the Czech Republic, Institute of Experimental Medicine, Prague 1 2 nd Faculty of Medicine, Charles University, Prague 2 Bioinova, Ltd, Prague 3 Faculty of Science, Charles University, Prague 4 University Hospital in Hradec Králové 5 Faculty of Medicine in Hradec Králové 6 Diabetes Centre, Institute for Clinical and Experimental Medicine, Prague 7 Introduction Mesenchymal stromal cells (MSCs) represent a useful therapeutic approach for treating various diseases, and their safety and efficacy have already been demonstrated in numerous clinical trials. In this study, human MSCs isolated from bone marrow (BM-MSCs) and adipose tissue (ASCs) were compared in terms of their isolation, expansion, surface marker expression, differentiation potential and evaluated pre-clinically in the treatment of bone defects and diabetic wounds. Materials and Methods Bone marrow mononuclear cells (BMC) were isolated using Gelofusine (B.Braun, Melsungen, Germany) separation, BM-MSCs and ASCs were isolated, cultured and differentiated into adipocytes, osteoblasts and chondrocytes. The capacity of BM-MSCs to heal bone was examined in a clinically relevant model of temporal bone defects in guinea pigs. The defect was filled with an osteoconductive material alone or in combination with BM-MSCs ( cells). 30 days after implantation, the temporal bone was examined by histological, immunohistochemical and CT scan analysis. The potential of MSCs to heal full-thickness wounds was examined on streptozocin-induced diabetic rats. Three types of cells: BM-MSCs, (2 mil. cells), ASCs (2 mil. cells) or BMC ( progenitor cells) obtained from diabetic (DM) and healthy donors (nondm) were transplanted into the wound area and histologically and immunohistochemically evaluated after 14 days. Results BM-MSCs and ASCs show differences in population doubling time and differentiation potential. ASCs seem to be more plastic, however, due to distorted microenvironment, DM ASCs displayed impaired osteogenic potential. In preclinical testing, no adverse reactions occurred in any animal following MSC implantation. In temporal bone defects, the group implanted with BM-MSCs showed a significantly higher ratio of new bone formation, as well as a significantly higher volume percentage of new immature bone than controls. In the wound healing model, a significant acceleration of wound healing was seen in all cell treated groups in comparison with controls after 7 and 14 days. Vessel index (VI) was significantly higher in all cell-treated groups in comparison to controls. Noteworthy, treatment with nondm BMC and nondm BM-MSCs resulted in higher VI than treatment with DM BMC. Conclusion From a pre-clinical perspective, MSCs represent a safe and promising tool for many applications in regenerative medicine. Grant support: IGA NT13477; GACR S; MEYS CZ NPU I LO1309 and RVO FNHK

27 SBORNÍK ABSTRAKT Derivation of mesenchymal stem cells from human fresh and cryopreserved umbilical cord tissue Vacková I. 1, Turnovcová K. 1, Syková E. 1,2 Institute of Experimental Medicine, The Academy of Sciences of the Czech Republic 1 2 nd Faculty of Medicine, Charles university, Prague, Czech republic 2 Mesenchymal stem cells derived from the Wharton s jelly of human umbilical cord (WJ-MSCs) present relatively young stem cells, unhampered by the age and diseases with excellent proliferative properties. Due to their immunosuppressive properties and low immunogenicity WJ-MSC are suitable for allogenic transplantation without the risk of immune response after implantation. In contrast to autologous stem cells, WJ-MSC are readily available and can be administered immediately. Creating a repository of WJ-MSCs would increase their availability for clinical applications. The aim of this study was to assess the optimal isolation and cryopreservation procedures to facilitate WJ-MSCs banking. The cell yield after isolation of WJ-MSCs from fresh and cryopreserved umbilical cord tissues was compared. Wharton s jelly was maintained in liquid nitrogen for a prolonged time in different types of cryoprotective media cut into 1 2 mm3 or cm 3 pieces. Cells from fresh and cryopreserved Wharton s jelly were isolated using enzymatic digestion or plastic adhesion methods. Isolation efficacy, growth kinetics, immunophenotype, and differentiation potential were studied. Our results demonstrated that WJ-MSCs could be isolated from both fresh and cryopreserved tissue of human umbilical cord using both enzymatic and plastic adherent isolation methods while maintaining all the characteristics of MSCs. The maximal cell yield after 30 days in a culture of human WJ-MSCs isolated from approximately 1g of fresh or frozen tissue was 1, and , respectively. The difference in cell yield from fresh or cryopreserved tissue was irrelevant due to both maintaining high proliferative ability and culture longevity. Acknowledgments: This project was supported by TG , GACR S, MEYS CR LO

28 SBORNÍK ABSTRAKT Chronická nestabilita lokte a její řešení pomocí kadaverózního štěpu m. tib. posterior Vališ P., Hořák J., Rouchal M., Otaševič T., Novák J., Ortopedická klinika LF MU a Fakultní nemocnice Brno Chronická recidivující nestabilita lokte není příliš časté postižení. Může vzniknout následkem úrazu, chronickou mikrotraumatizací nebo iatrogenně. Primárními stabilizátory lokte, které bývají poškozeny při nestabilitě, jsou postranní vazy. Dalšími stabilizátory jsou dány tvarem ulnohumerálního skloubení, svaly přesahujícími loketní kloub a hlavička radia. Základní dělení chronické nestability lokte je: posterolaterální rotační, valgózní a varózní posteromediální rotační. Typ nestability záleží na poškozených strukturách. Terapie je možná konzervativní i operační, kdy záleží na typu a tíži nestability. Základem konzervativní léčby je naložení ortézy v postavení, které je odlišné pro různé typy postižení. Operační léčba chronické nestability lokte spočívá v rekonstrukci postranních vazů šlachovým štěpem. Kazuistika pojednává o pacientce, u které se rozvinula chronická valgózní nestabilita lokte po traumatu, konzervativně léčené zlomenině proximálního radia. Klinické a zobrazovací vyšetření potvrdilo lézi vnitřního postranního vazivového komplexu. Konzervativní terapie byla bez efektu. Následně byla provedena rekonstrukce vnitřního postranního vazu šlachovým štěpem. 28

29 SBORNÍK ABSTRAKT Význam spongioplastiky při osteosyntéze periprotetických suprakondylických zlomenin kolenního kloubu Ženčica P., Motyčka J., Vališ P., Heger J. Ortopedická klinika LF MU a Fakultní nemocnice Brno Úvod. Četnost výskytu periprotetických zlomenin (PPZ) po TEP kolenního kloubu vzrůstá s nárůstem primoimplantací. Udává se v rozmezí mezi 0,3% až 2,5%. Nejčastěji se jedná o suprakondylické zlomeniny (1-4%), v oblasti tibie je incidence výskytu nižší (0,4-1,7%) s převahou mediálního kondylu. Dochází k nim většinou za 2-4 roky po primoimplantaci, počet peroperačních zlomenin je výrazně vyšší při revizních operacích (13%), poruchy hojení v 9%. Suprakondylární zlomeniny jsou téměř vždy řešeny osteosyntézou, v našem případě pomocí LISS nebo NCB dlahy a spongioplastikou při kostních defektech. Materiál a metoda. V období od 4/2005-8/2015 jsme ošetřili celkem 36 PPZ po TEP kolenního kloubu, z toho 34 suprakondylických a dvě tibiální. Všechny TEP byly kondylární cementované bez femorálního dříku. Soubor zahrnoval 27 žen (jedna pacientka s oboustrannou frakturou a jedna s refrakturou) a 7 mužů, průměrný věk byl 74 (58-87) let. Zlomeniny femorální jsme klasifikovali dle Su et al. s doplněním subtypů dle Krbec et al., typ 2 IA, 4 IIA, 8 IIB, 6 IIC, 2 IIIA, 4 IIIB, 8 IIIC, dvě zlomeniny proximální tibie. Průměrný interval mezi primoimplantací TEP a úrazem byl 78 (1-210) měsíců, průměrný interval od úrazu do ošetření byl 2,3 dne. 23 zlomenin bylo ošetřeno pomocí LISS dlahy, 7 pomocí NCB dlahy, dvě zlomeniny byly ošetřeny kombinací LISS + zevního fixátoru (FE) z důvodu velké defektní tříštivé zóny suprakondylárně, jedna zlomenina tahovými šrouby, jedna revizní femorální komponentou, jedna pomocí AO dlahy a jedna AO kondylární dlahou. Primární spongioplastika byla použita u 25 pacientů, sekundární spongioplastika při prodlouženém hojení nebo při reoperacích u 6 pacientů. Průměrná doba sledování byla 47 měsíců. Výsledky. Kostní zhojení se zřetelnými radiologickými známkami bylo dosaženo průměrně po 7 (3-26) měsících u 29 zlomenin a průměrně 48 měsíců (9-99) u 7 zlomenin s nutností reoperace pro selhání osteosyntézy nebo pseudoartrózu se sekundární spongioplastikou. Průměrný rozsah pohybu po zhojení byl 90 ( ) flexe. Průměrná doba hospitalizace 19 dní, postupné zatěžování za 3-6 měsíců po operaci. Závěr. Osteosyntéza pomocí LISS nebo NCB dlahy je efektivní metoda volby operační léčby periprotetických fraktur distálního femuru nad femorální komponentou. Vzhledem k úhlově stabilnímu charakteru poskytuje dobrou fixační stabilitu distálního fragmentu i v kombinaci s FE v případě defektní tříštivé zóny. Reimplantace femorální komponenty s dlouhým dříkem v případě uvolnění komponenty nebo pakloubu je vhodným řešením této komplikace. Spongioplastiku považujeme za nezbytnou součást ošetření těchto zlomenin, zvláště u tříštivých a defektních zlomenin, při prodlouženém hojení nebo pakloubů s nutností reoperace. 29

30 SBORNÍK ABSTRAKT Replantace kryoprezervované příštítné tkáně- kazuistiky Linhartová M., Kubešová B., Štrajtová L., Pacasová R., Řehořová J. Fakultní nemocnice Brno Od roku 2011 byla vyvinuta a vyzkoušena nová metodika zamražování příštítné tkáně, kterou jsme realizovali s pracovníky Národního centra tkání a buněk. Metodiku jsme představili na kongresu bioimplantologie již v minulosti, kdy posléze proběhla realizace v praxi. V roce 2012 dvěma pacientům s terciární hyperparatyreosou v chronickém dializačním programu bylo nutno odebrat kompletní příštínout tkáň i se zbytky tymu. Zdravou část paratyreoidy jsme odeslali dle protokolu, kde zůstala hibernovaná téměř 3 roky. V roce 2015 pak vyvstal požadavek reimplantace vzhledem ke zhoršení osteoporosy a komplikacím vyplývajících z hypokalcémie navozené totální ablací příštítné tkáně. Replantaci jsme u obou pacientů provedli ve sterilním režimu na chirurgickém sálku v lokální anestezii s implantací revitalizované tkáně do svalu na předloktí. Výkony proběhly zcela bez komplikací, rozeběhla se hormonální aktivita příštítné tkáně do normy a doposud je u obou pacientů fyziologicky funkční. Považujeme tyto případy za úspěch, i když se jedná o izolované komplikované případy terciární hyperparatyreosy, pro které je tato metodika vydatným přínosem. 30