MOLEKULÁRNÍ BIOLOGIE I PŘÍPRAVA TKÁNĚ K IZOLACI DNA

Podobné dokumenty
MOLEKULÁRNÍ BIOLOGIE I PŘÍPRAVA TKÁNĚ K IZOLACI DNA

α-globin StripAssay Kat. číslo testů 2-8 C

NRAS StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

cdna synthesis kit First-Strand cdna Synthesis System Verze 1.2

Braf V600E StripAssay

Izolace nukleových kyselin

EGFR XL StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

2. Srovnání postupů izolace DNA kolonky vs. paramagnetické částice

DIAGNOSTICKÝ KIT PRO DETEKCI MINIMÁLNÍ REZIDUÁLNÍ CHOROBY U KOLOREKTÁLNÍHO KARCINOMU

DIAGNOSTICKÝ KIT PRO DETEKCI MINIMÁLNÍ REZIDUÁLNÍ CHOROBY U KARCINOMU PANKREATU

MagPurix Viral Nucleic Acid Extraction Kit

MagPurix Forensic DNA Extraction Kit

DETEKCE A IDENTIFIKACE FYTOPATOGENNÍCH BAKTERIÍ METODOU PCR-RFLP

MagPurix Viral/Pathogen Nucleic Acids Extraction Kit B

SDS polyakrylamidová gelová elektroforéza (SDS PAGE)

MagPurix Blood DNA Extraction Kit 200

Seminář izolačních technologií

Braf 600/601 StripAssay

Column DNA Lego Kit UNIVERZÁLNÍ SOUPRAVY PRO RYCHLOU IZOLACI ČISTÉ DNA (Katalogové číslo D201 + D202)

CVD-T StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

DIAGNOSTICKÝ KIT PRO DETEKCI MINIMÁLNÍ REZIUDÁLNÍ CHOROBY MRD EGFR

Polymorfismus délky restrikčních fragmentů (RFLP)

Sure-MeDIP I. with magnetic beads and MNase.

ÚLOHA C Klonování PCR produktu do plasmidu

Tkáňový homogenizátor MagNA Lyser od společnosti Roche

Molekulární metody pro střední školy

Základy laboratorní techniky

IZOLACE DNA (KIT DNeasy Plant Mini)

MagPurix Bacterial DNA Extraction Kit

DNA TECHNIKY IDENTIFIKACE ŽIVOČIŠNÝCH DRUHŮ V KRMIVU A POTRAVINÁCH. Michaela Nesvadbová

Sure-MeDIP II. with agarose beads and Mse I.

Izolace genomové DNA ze savčích buněk, stanovení koncentrace DNA pomocí absorpční spektrofotometrie

Laboratorní úlohy z molekulární biologie

TESTOVÁNÍ GMO Praktikum fyziologie rostlin

Gelová elektroforéza - úvod, demonstrační sada pro učitele Kat. číslo

Mendelova univerzita v Brně Agronomická fakulta Ústav biologie rostlin

Kras XL StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

Elektroforéza v přítomnosti SDS SDS PAGE

CYCLER CHECK. Test pro validaci teplotní uniformity cyklérů. Připraveno k použití, prealiquotováno. REF 7104 (10 testů) REF (4 testy)

TECHNICKÁ SPECIFIKACE Vybavení genetické laboratoře pro projekt EXTEMIT-K část B

Evropský sociální fond Praha & EU: Investujeme do vaší budoucnosti NUKLEOVÉ KYSELINY

Mendelova univerzita v Brně Agronomická fakulta Ústav biologie rostlin

SDS-PAGE elektroforéza

2. Z následujících tvrzení, týkajících se prokaryotické buňky, vyberte správné:

MOLEKULÁRNÍ BIOLOGIE. 2. Polymerázová řetězová reakce (PCR)

Určeno pro obecné laboratorní užití. Není určeno pro použití v diagnostických postupech. POUZE PRO POUŽITÍ IN VITRO.

C V C. Návod k použití pro Biofortuna SSPGo TM HLA No Template Control Kit BF Revize 2. Červenec 2014

Optimalizace metody PCR pro její využití na vzorky KONTAMINOVANÝCH PITNÝCH VOD

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv

Izolace RNA. doc. RNDr. Jan Vondráček, PhD..

AdnaTest ProstateCancerSelect

Identifikace mikroorganismů pomocí sekvence jejich genu pro 16S rrna

Polymorfismus délky restrikčních fragmentů

Hybridizace nukleových kyselin

Stanovení α-amylázy v moči

Uživatelská příručka

Polymerázová řetězová reakce

DYNEX nabízí komplexní řešení v oblasti zpracování a analýzy biologických materiálů pomocí molekulárně biologických metod.

List protokolu QIAsymphony SP

POLYMERÁZOVÁ ŘETĚZOVÁ REAKCE (PCR)

Návod k použití souprav. Wipe test. Kontaminační kontrola. Testovací souprava pro kontrolu kontaminace využívající molekulárně - biologické metody

PO STOPÁCH BAKTERIÍ V/KOLEM NÁS

Implementace laboratorní medicíny do systému vzdělávání na Univerzitě Palackého v Olomouci. reg. č.: CZ.1.07/2.2.00/

NUKLEOVÉ KYSELINY. Základ života

Konečná zpráva hodnocení různých způsobů přípravy vzorků pro AMPLICOR HPV test firmy Roche

Molekulární základy dědičnosti. Ústřední dogma molekulární biologie Struktura DNA a RNA

Praktický kurz Příprava buněčného lyzátu, izolace celkové RNA pomocí kolonek/tripure reagent, stanovení koncentrace RNA

IZOLACE DNA PRO STANOVENÍ GMO METODOU PCR (KIT NUCLEOSPIN FOOD)

PŘÍBALOVÁ INFORMACE. GeneProof PathogenFree DNA Isolation Kit IDNA050 IDNA250. In vitro diagnostický zdravotnický prostředek

CVIČENÍ II. IZOLACE DNA, DETEKCE GENŮ METODOU PCR, STANOVENÍ PŘÍBUZNOSTI IZOLÁTŮ METODOU ERIC PCR

Příprava vektoru IZOLACE PLASMIDU ALKALICKÁ LYZE, KOLONKOVÁ IZOLACE DNA GELOVÁ ELEKTROFORÉZA RESTRIKČNÍ ŠTĚPENÍ. E. coli. lyze buňky.

List protokolu QIAsymphony SP

S filtračními papíry a membránou je nutno manipulovat pinzetou s tupým koncem.

MOLEKULÁRNĚ BIOLOGICKÉ METODY V ENVIRONMENTÁLNÍ MIKROBIOLOGII. Martina Nováková, VŠCHT Praha

IZOLACE DNA PRO STANOVENÍ GMO METODOU PCR (KIT GENELUTE)

Molekulárně biologické metody v mikrobiologii. Mgr. Martina Sittová Jaro 2014

Polymerázová řetězová reakce. Základní technika molekulární diagnostiky.

Téma: IZOLACE DNA Z ROSTLIN, DIRECT A NESTED PCR SPECIFICKÝMI A UNIVERZÁLNÍMI PRIMERY, RFLP. Ing. Jana Fránová, Dr., Biologické centrum AV ČR v.v.i.

Praktické cvičení: Izolace a purifikace rekombinantního proteinu

Evropský sociální fond Praha & EU: Investujeme do vaší budoucnosti. Translace, techniky práce s DNA

Mendelova univerzita v Brně Agronomická fakulta Ústav biologie rostlin

MODERNÍ BIOFYZIKÁLNÍ METODY:

1. Příloha 1 Návod úlohy pro Pokročilé praktikum z biochemie I

Imunochemické metody. na principu vazby antigenu a protilátky

Western blotting. 10% APS 20,28 µl 40,56 µl 81,12 µl 20,28 µl 40,56 µl 81,12 µl

8 PŘÍLOHA A - TABULKY

ORGANICKÁ CHEMIE Laboratorní práce č. 9

Analýza DNA. Co zjišťujeme u DNA DNA. PCR polymerase chain reaction. Princip PCR PRINCIP METODY PCR

Ivo Papoušek. Biologie 8, 2015/16

Pracovní listy pro žáky

Obsah Protein Gel Electrophoresis Kitu a jeho skladování

Devyser AZF. Návod k použití

Ústřední komise Chemické olympiády. 53. ročník 2016/2017. KRAJSKÉ KOLO kategorie C. ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (40 BODŮ) časová náročnost: 120 minut

PROTOKOL WESTERN BLOT

2) Připravte si 3 sady po šesti zkumavkách. Do všech zkumavek pipetujte 0.2 ml roztoku BAPNA o různé koncentraci podle tabulky.

CRP. Axis - Shield. SINGLE TESTS CRP kvantitativní stanovení pomocí přístroje NycoCard Reader II

RNA Blue REAGENS PRO RYCHLOU PŘÍPRAVU ČISTÉ A NEDEGRADOVANÉ RNA (katalogové číslo R011, R012, R013)

Ivo Papoušek. Biologie 6, 2017/18

PROTEINOVÁ DENATURUJÍCÍ ELEKTROFORÉZA (SDS PAGE)

Molekulárně biologické a cytogenetické metody

Transkript:

Cvičení 9,10,11: MOLEKULÁRNÍ BIOLOGIE Jméno: Skupina: Cíl: Seznámení se se základními metodami, využívanými k analýze DNA 1. izolace DNA 2. amplifikace DNA pomocí PCR a elektroforéza 3. vizualizace DNA a hodnocení výsledku Úkol: Určení pohlaví ptačího jedince z biologického materiálu (svalová tkáň) pomocí PCR. MOLEKULÁRNÍ BIOLOGIE I PŘÍPRAVA TKÁNĚ K IZOLACI DNA Postup přípravy buněčného lyzátu: 1. vypreparujte kousek tkáně (svalovina, případně jiná tkáň ptáků) o velikosti maximálně dvou špendlíkových hlaviček a přeneste do mikrozkumavky (1,5 ml) popsané fixem 2. přidejte 200 μl roztoku GT Buffer 3. homogenizujte tkáň pomocí mikropaličky 4. novou špičkou připipetujte 20 μl proteinázy K (proteinase K) 5. uzavřete mikrozkumavku, ručně protřepejte a inkubujte při pokojové teplotě 2 minuty 6. novou špičkou připipetujte 200 μl lyzačního pufru GBT Buffer 7. uzavřete mikrozkumavku, protřepejte a vložte do třepacího termobloku předehřátého na 55 C a inkubujte cca 3 hod při 300 rpm (rounds per minute) 8. buněčný lyzát se uchová do příštího týdne při pokojové teplotě ZÁSADY PRÁCE studenti zpracovávají vzorek ve dvojicích, mikrozkumavky je třeba označit číslem skupiny a pořadovým číslem dvojice studentů, sada automatických pipet je k dispozici pro pracovní skupinu je nutné vybrat správnou pipetu dle rozsahu objemu a zkontrolovat a nastavit na pipetě požadovaný objem - pozor na přetočení pipety mimo dané rozmezí!! k zajištění přesného objemu je třeba důkladně nasadit špičku na pipetu (bezdotykově!!) k zabránění kontaminace pipet se pro práci s DNA používá špička s filtrem k zabránění kontaminace vzorku a chemikálií se pro každou chemikálii používá vždy nová špička (jednu špičku lze použít pro stejnou chemikálii) požadovaný objem se získá stlačením pipety do první polohy a ponořením špičky pipety do nasávané tekutiny, uvolněním stlačení, přenesením požadovaného objemu do zkumavky a stlačením pipety do první polohy homogenizace vzorku se provádí ve zkumavce tzv. propipetováním tj. po přidání určité chemikálie do zkumavky třikrát opakovaně nasát směs do špičky a vytlačit odstranění špičky se provádí bezdotykově 1/XI

MOLEKULÁRNÍ BIOLOGIE II IZOLACE DNA A PCR IZOLACE DNA 1. přidejte k buněčnému lyzátu v mikrozkumavce 200 μl 96% ethanolu 2. promíchejte obsah mikrozkumavky opakovaným převrácením 3. vezměte se sběrnou zkumavkou a víčko kolonky popište fixem (vaše indentifikační číslo) a přelijte celý obsah z mikrozkumavky do kolonky 4. centrifugujte 1 min při 13000 rpm 5. obsah sběrné zkumavky vylijte (do odpadní nádoby) a sběrnou zkumavku vraťte pod 6. do kolonky napipetujte (novou špičkou) 400 μl promývacího roztoku 1 (W1 Buffer) 7. centrifugujte 1 min při 13000 rpm 8. obsah sběrné zkumavky vylijte (do odpadní nádoby) a sběrnou zkumavku vraťte pod 9. do kolonky napipetujte (novou špičkou) 600 μl promývacího roztoku 2 (Wash Buffer) 10. centrifugujte 1 min při 13000 rpm 11. obsah sběrné zkumavky vylijte (do odpadní nádoby) a sběrnou zkumavku vraťte pod 12. centrifugujte 3 min při 13000 rpm 13. vložte do nové mikrozkumavky (2 ml) popsané fixem (původní sběrnou zkumavku vyhoďte) 14. napipetujte doprostřed kolonky 50 μl elučního roztoku (Elution Buffer) předehřátého na 55 C 15. inkubujte 2 min při pokojové teplotě 16. centrifugujte 2 min při 13000 rpm 17. odstraňte (vyhoďte ji do odpadní nádoby) a uzavřete mikrozkumavku, která obsahuje izolovanou DNA navázání DNA na centrifugace promývací roztoky centrifugace eluční roztok centrifugace DNA sběrná zkumavka 2/XI

PCR Vždy dvojice studentů zpracovává jeden vzorek: 1. připravte PCR směs do malé PCR mikrozkumavky (směs pro jeden vzorek 18 μl): 10 μl - PCR master mix (směs nukleotidů dntp, DNA polymerázy a Mg 2+ iontů) 2 μl - primer 2550F (GTTACTGATTCGTCTACGAGA) 2 μl - primer 2718R (ATTGAAATGATCCAGTGCTTG) 4 μl - voda pro PCR degenerované nukleotidy: R=A,G; Y=C,T 2. připipetujte k PCR směsi (18 μl) novou špičkou 2 μl izolované DNA 3. pořádně uzavřete PCR mikrozkumavku, vložte ji do termocykleru, vyučující následně spustí PCR program 4. po dokončení programu bude PCR produkt uchován v lednici Program PCR amplifikace: Počáteční denaturace DNA 94 C 3 min Denaturace DNA 94 C 30 sec Nasedání primerů (annealing) 55 C 45 sec 35 cyklů Syntéza komplementárního řetězce DNA (extenze) 72 C 45 sec Dosyntetizování řetězců DNA (finální extenze) 72 C 5 min GELOVÁ ELEKTROFORÉZA MOLEKULÁRNÍ BIOLOGIE III ELEKTROFORÉZA Příprava 1,2% agarózového gelu (jeden gel pro celou skupinu) 1. do baňky typu Erlen odvažte 1,2 g agarózy 2. skleněným válcem odměřte 100 ml TBE pufru, přidejte do baňky a kroužením promíchejte 3. dejte baňku do mikrovlnné trouby a vařte při teplotě nastavené na maximální ohřev po dobu 2 minut (jakmile začne obsah kádinky bublat, přerušte ohřev a promíchejte obsah kádinky v ruce s nasazenou rukavicí) 4. po 2 minutách ohřevu vyjměte baňku z mikrovlnné trouby a opatrně ji ochlaďte pod tekoucí vodou na teplotu přibližně 60 C (teplota, kdy několik sekund udržíme kádinku přiloženou ke hřbetu ruky) 5. napipetujte (novou špičkou) 3 μl MIDORI Green (10 tis. krát koncentrovaný roztok) a v ruce promíchejte 6. připravte si nalévací vanu a přelijte do ní rozehřátý agar z baňky 7. do vany vložte hřebínek a špičkou od pipety odstraňte případné bubliny v gelu (gel ztuhne asi po 30 minutách) 3/XI

Nanášení vzorků 1. po ztuhnutí gelu vyjměte hřebínek, přeneste gel do elektroforetické vany a zalijte TBE pufrem tak, aby byl celý gel ponořený 2. do jedné z jamek v gelu (nejlépe do prostřední) naneste 3 μl velikostního markeru 3. do dalších jamek v gelu nanáší (novou špičkou) vždy jeden z dvojice studentů svůj vzorek, tj. 10 μl PCR produktu (s pipetou je třeba manipulovat opatrně, ať neprotrhnete gel) 4. zapojte elektroforetickou vanu do zdroje a pusťte elektrický proud při konstantním napětí 120 V po dobu 30 minut 5. po ukončení elektroforézy přemístěte gel na UV-transluminátor a pod UV zářením odečtěte výsledek (v rámci bezpečnosti je třeba pozorovat gel přes plastový kryt) Vyhodnocení: U samičího pohlaví: (ZW) se na gelu objeví 2 pruhy (bandy). Jeden větší, který odpovídá CHD-Z, a druhý menší asi o 200 bp (párů bazí), který odpovídá CHD-W. U samčího pohlaví: (ZZ) se na gelu objeví jen jeden pruh, který odpovídá CHD-Z. 100 bp 200 bp 300 bp 400 bp 500 bp 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 Výsledek gelové elektroforézy: 1, 10 velikostní marker; 2, 3, 4, 5 samice; 6, 7, 8, 9 samec. 4/XI

KONTROLNÍ OTÁZKY 1. Vyberte, z jakého materiálu lze izolovat DNA? A) priony, B) savčí krev, C) ptačí krev, D) vlasová cibulka, E) plodová voda, F) sliny, G) bakterie, H) rostlinné pletivo, I) kvasinky, J) viry 2. Zakroužkujte ANO/NE dle pravdivosti jednotlivých tvrzení a) Molekulární biologie studuje strukturu a interakci ANO NE biomakromolekul b) Chromatografie nepatří mezi metody molekulární biologie ANO NE c) DNA je možné izolovat i z virových částic ANO NE d) Tkáně nebo orgány musí být před izolací nejprve ANO NE homogenizovány e) Lysozym slouží k odstranění kontaminant a k extrakci DNA ANO NE z roztoku f) Termocykler je přístroj k izolaci DNA ANO NE 3. Nakreslete strukturu DNA tak, aby bylo patrné, co tvoří základ řetězce a jak jsou oba řetězce spojeny, vyznačte i orientaci řetězců. 4. Napište alespoň tři různé konkrétní účely, ke kterému se využívají metody molekulární biologie 1... 2... 3... 5. Kdo se zasloužil o rozvoj metody PCR? A) Jeffreys, B) Mullis, C) Sanger, D) Linné 6. Popište obrázek - složky reakční směsi pro PCR 7. Kolik cyklů mívá obvykle PCR? A) 15-20, B) 25-35, C) 30-50, D) 50-100, E) víc než 100 8. Kolik kopií DNA vznikne z jedné výchozí molekuly DNA po čtyřech cyklech PCR reakce? 5/XI

9. Která tvrzení o primerech jsou pravdivá? A) jsou to chemicky syntetizované oligonukleotidy ANO NE B) slouží jako templáty (vzory) pro syntézu nového řetězce DNA ANO NE C) vymezují úsek DNA, který bude amplifikován (množen) ANO NE D) k zahájení PCR reakce stačí jeden specifický primer ANO NE E) připojují se ke komplementárním úsekům protilehlých DNA řetězců ANO NE 10. Do schématu doplňte, o které fáze PCR se jedná, a přiřaďte k nim teploty při kterých obecně probíhají (72 C, 94-95 C, 55-65 C) Fáze: (teplota) 1)..... 2)..... 3)..... 11. Jak se nazývají přístroje na obrázcích a k čemu slouží?.......... 12. Jak lze orientačně zjistit velikost úseků DNA v gelu? Vyberte správnou odpověď. A) pravítkem, B) pomocí velikostního standardu (žebříčku), C) pomocí enzymů, D) nelze zjistit, musí se sekvenovat 6/XI

13. Opravte text (nehodící se škrtněte, doplňte, nebo vyberte správnou možnost) A. Izolace DNA Izolace DNA se provádí pomocí izolační soupravy, založené na principu adsorpce na silikát. Vyšetřovaný materiál (ptačí tkáň) je lyzován pomocí.. (obsahuje detergenty, které rozpouští membrány a denaturuje.), enzymu... (štěpí bílkoviny včetně histonů vázajících se na DNA) a enzymu.. (rozkládá RNA). Výběr odpovědí: lyzační pufr, RNAáza, DNA, proteináza K, bílkoviny Buněčný lyzát byl přenesen na izolační /do sběrné zkumavky, jejíž součástí je silikonový/silikátový povrch. V přítomnosti choanotropních solí, které jsou součástí lyzačního pufru adheruje/precipituje DNA na silikát. Opakovanou denaturací/centrifugací byla kolonka s navázanou DNA promyta pomocí promývacího roztoku a nakonec uvolněna pomocí elučního/lyzačního roztoku. B. PCR, elektroforéza K určení pohlaví u ptáků se využívá gen CHD/gen SRY, který kóduje lipid/protein, jež reguluje aktivaci transkripce na úrovni chromatinu. Tento gen je u ptáků lokalizován na autozomech/gonozomech. Samčí pohlaví je u ptáků homogametické/heterogametické s pohlavními chromozomy XX/XY/ZZ/ZW. Samičí pohlaví se značí Pomocí PCR byla namnožena RNA/DNA odpovídající části genu na chromozomu.. a na chromozomu Počet fragmentů (bandů) získaných pomocí PCR u samce byl... a u samice. Fragmenty DNA byly separovány pomocí spektrofotometru/gelové elektroforézy, vizualizovány pod ultrafialovým/elektromagnetickým zářením a vyhodnoceny. 7/XI