Gelová elektroforéza - úvod, demonstrační sada pro učitele Kat. číslo

Podobné dokumenty
SDS polyakrylamidová gelová elektroforéza (SDS PAGE)

SDS-PAGE elektroforéza

Elektroforéza v přítomnosti SDS SDS PAGE

Polymorfismus délky restrikčních fragmentů (RFLP)

Obsah Protein Gel Electrophoresis Kitu a jeho skladování

ELEKTROFORETICKÁ SEPARACE NUKLEOVÝCH KYSELIN

Evropský sociální fond Praha & EU: Investujeme do vaší budoucnosti ELEKTROMIGRAČNÍ METODY

Polymorfismus délky restrikčních fragmentů

α-globin StripAssay Kat. číslo testů 2-8 C

Základy laboratorní techniky

PROTOKOL WESTERN BLOT

1. Příloha 1 Návod úlohy pro Pokročilé praktikum z biochemie I

Braf V600E StripAssay

PROTEINOVÁ DENATURUJÍCÍ ELEKTROFORÉZA (SDS PAGE)

Pufry, pufrační kapacita. Oxidoredukce, elektrodové děje.

2) Připravte si 7 sad po pěti zkumavkách. Do všech zkumavek pipetujte 0.2 ml roztoku BAPNA o různé koncentraci podle tabulky.

2) Připravte si 3 sady po šesti zkumavkách. Do všech zkumavek pipetujte 0.2 ml roztoku BAPNA o různé koncentraci podle tabulky.

Sada Elektřina a magnetismus. Kat. číslo

NRAS StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

MagPurix Viral/Pathogen Nucleic Acids Extraction Kit B

ORGANICKÁ CHEMIE Laboratorní práce č. 9

Western blotting. 10% APS 20,28 µl 40,56 µl 81,12 µl 20,28 µl 40,56 µl 81,12 µl

ORGANICKÁ CHEMIE Laboratorní práce č. 3

Sada pro získání DNA ze zeleniny/ovoce Kat. číslo

Pufry, pufrační kapacita. Oxidoredukce, elektrodové děje.

TESTOVÁNÍ GMO Praktikum fyziologie rostlin

EGFR XL StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

HbA1c. Axis - Shield. Společnost je zapsána v obchodním rejstříku Městského soudu v Praze, odd. C vložka 1299

TECHNICKÁ SPECIFIKACE Vybavení genetické laboratoře pro projekt EXTEMIT-K část B

Sraz studentů v 8:00 před laboratoří A5/108, s sebou plášť a přezutí PRINCIP. Polyakrylamidová gelová elektroforéza v přítomnosti SDS (SDS-PAGE)

MagPurix Forensic DNA Extraction Kit

1. VÝROBA OBALOVÉ FOLIE Z BRAMBOR

DOCELA OBYČEJNÁ VODA

Inovace bakalářského studijního oboru Aplikovaná chemie CZ.1.07/2.2.00/

Izolace genomové DNA ze savčích buněk, stanovení koncentrace DNA pomocí absorpční spektrofotometrie

Ústřední komise Chemické olympiády. 53. ročník 2016/2017. KRAJSKÉ KOLO kategorie C. ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (40 BODŮ) časová náročnost: 120 minut

53. ročník 2016/2017

cdna synthesis kit First-Strand cdna Synthesis System Verze 1.2

ELEKTRICKÁ DŽEZVA R-928

13/sv. 8 (85/503/EHS) Tato směrnice je určena členským státům.

Návod k laboratornímu cvičení. Vitamíny

DETEKCE A IDENTIFIKACE FYTOPATOGENNÍCH BAKTERIÍ METODOU PCR-RFLP

Chloridová iontově selektivní elektroda

Sada Látky kolem nás Kat. číslo

Úloha č. 1 Odměřování objemů, ředění roztoků Strana 1. Úkol 1. Ředění roztoků. Teoretický úvod - viz návod

DENATURACE PROTEINŮ praktické cvičení

100 přírodovědných pokusů. Laboratorní pomůcky. Mgr. Tomáš Kudrna

Název: Nenewtonovská kapalina

Jazykové gymnázium Pavla Tigrida, Ostrava-Poruba Název projektu: Podpora rozvoje praktické výchovy ve fyzice a chemii

Reakce kyselin a zásad

Víme, co vám nabízíme

RUŠENÁ KRYSTALIZACE A SUBLIMACE

Separační metody v analytické chemii. Plynová chromatografie (GC) - princip

Braf 600/601 StripAssay

Identifikace mikroorganismů pomocí sekvence jejich genu pro 16S rrna

Izolace nukleových kyselin

Elektrolyzér Kat. číslo

I N V E S T I C E D O R O Z V O J E V Z D Ě L Á V Á N Í

Baristický ruční napěňovač mléka

Mumie versus Zombie: na koho si vsadit v případě jaderné katastrofy

Elektrolytické vylučování mědi (galvanoplastika)

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 KRAJSKÉ KOLO. Kategorie E ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (50 BODŮ)

CVD-T StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

Název: Krystalizace. Výukové materiály. Téma: Krystalizace. Úroveň: 2. stupeň ZŠ. Tematický celek: Vidět a poznat neviditelné. Předmět (obor): chemie

Projekt Pospolu. Stanovení jílovitých podílů podle ČSN EN A1 Zkouška s methylenovou modří

Elektroforéza. Rozdělení proteinů na základě pohyblivosti v el. poli

Název školy: Gymnázium Jana Nerudy, škola hl. města Prahy

ORGANICKÁ CHEMIE Laboratorní práce č. 4 Téma: Karbonylové sloučeniny, karboxylové kyseliny

Thermo Scientific Richard Allan Scientific HISTOGEL

Některá balení destilované vody jsou opatřena kovovým nebo plastovým krytem uzávěru, ten musíme před otevřením odstranit.

Mumie versus Zombie: na koho si vsadit v případě jaderné katastrofy

HM-843 Mixér Návod k obsluze

Stanovení α-amylázy v moči

ELEKTRICKÝ VAŘIČ R-243 R-244

NEUTRALIZAČNÍ ODMĚRNÁ ANALÝZA (TITRACE)

Stanovení cholesterolu ve vaječném žloutku a mléce kapilární elektroforézou

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU KOBALTU METODOU ICP-MS

NOVÉ NÁMĚTY PRO DEMONSTRAČNÍ POKUSY. Ondřej Maca, Tereza Kudrnová

MOLEKULÁRNÍ BIOLOGIE I PŘÍPRAVA TKÁNĚ K IZOLACI DNA

Cvičení ke kurzu Obecná ekotoxikologie. Úloha A - Stanovení ekotoxicity v testu klíčení rostlin

Stanovení paracetamolu, kofeinu a propyfenazonu v tabletách Valetol

Sešit pro laboratorní práci z chemie

I N V E S T I C E D O R O Z V O J E V Z D Ě L Á V Á N Í LABORATORNÍ PRÁCE Č. 6 PRÁCE S PLYNY

Podstata krápníkových jevů. Ch 8/07

CYCLER CHECK. Test pro validaci teplotní uniformity cyklérů. Připraveno k použití, prealiquotováno. REF 7104 (10 testů) REF (4 testy)

KVALITATIVNÍ ELEMENTÁRNÍ ANALÝZA ORGANICKÝCH LÁTEK

Trojské trumfy. pražským školám BARVY U ŽIVOČICHŮ A ROSTLIN. projekt CZ.2.17/3.1.00/32718 EVROPSKÝ SOCIÁLNÍ FOND

Elektroforéza. Rozdělení proteinů na základě pohyblivosti v el. poli

Uživatelská příručka

KARBOXYLOVÉ KYSELINY

R-522. Návod k použití SEKÁČEK POTRAVIN. česky. Sekáček potravin R-522

laktoferin BSA α S2 -CN α S1 -CN Popis: BSA bovinní sérový albumin, CN kasein, LG- laktoglobulin, LA- laktalbumin

Analýza aniontových tenzidů v čisticích prostředcích kapilární elektroforézou

PROTOKOL NORTHERNOVA HYBRIDIZACE

Návod k laboratornímu cvičení. Alkoholy

Spektrofotometrické stanovení fosforečnanů ve vodách

IZOLACE, SEPARACE A DETEKCE PROTEINŮ I. Vlasta Němcová, Michael Jelínek, Jan Šrámek

MagPurix Viral Nucleic Acid Extraction Kit

Transkript:

Gelová elektroforéza - úvod, demonstrační sada pro učitele Kat. číslo 108.6411 PŘÍRUČKA PRO UČITELE S NÁVODEM PRO STUDENTY Strana 1 ze 18

Příručka pro učitele Úvod do gelové elektroforézy Shrnutí Cíle Podklady Tuto příručku pro učitele je možné používat s Předváděcí sadou pro učitele (21-1147) i se Studentskou sadou pro 8 stanic (21-1148). Prostřednictvím Úvodu do gelové elektroforézy se studenti seznámí se základními principy separace makromolekul pomocí gelové elektroforézy. Tato technika přestavuje základní nástroj všech moderních molekulárních biologů. Studenti nebo učitel při demonstraci provedou lití agarózového gelu a zavedení známých a neznámých barviv s různou velikostí a nábojem molekul do gelových jamek. Poté do gelu přivedou elektrický proud a budou pozorovat, jak jednotlivá barviva prostupují matricí agarózového gelu. Následně se provede vyhodnocení a zápis migračních délek a elektrických nábojů barviv. Na závěr se na základě těchto údajů provede identifikace složek neznámých barviv. Studenti se naučí základní principy gelové elektroforézy. Studenti se seznámí s univerzální technikou používanou v biotechnologických laboratořích. Studenti budou pozorovat, jak molekuly barviv různých velikostí a nábojů během elektroforézy migrují gelem a na základě této informace poté vypracují závěry o neznámých barvivech. Gelová elektroforéza je základní biotechnologická technika pro separaci makromolekul podle jejich velikosti a náboje. Tato metoda se často používá pro analýzy a manipulace se vzorky DNA, RNA nebo proteinů. Při této laboratorní práci se použije elektroforéza v agarózovém gelu pro oddělení a zjištění vlastností molekul barviv různých velikostí a nábojů. V gelové elektroforéze se vzorky určené k separaci aplikují do média v podobě porézního gelu připraveného z materiálu jako například agaróza. Agaróza je čistá forma agaru, gelové látky extrahované z červených řas. Agarózový gel se připraví přidáním práškové agarózy do kapalného pufru a poté se směs vaří až do rozpuštění agarózy. Tato tekutá agaróza se poté zchladí na přibližně 55-60 C, nalije se do gelové formy, nazývané nalévací vanička, a nechá se ztuhnout. Před ztuhnutím se do nalévací vaničky umístí formovací hřebínek, aby se vytvořila řada jamek, do kterých se zavedou vzorky po vyjmutí hřebínku ze ztuhlého gelu. Nalévací vanička a ztuhlý gel se poté umístí do elektroforetické vany, která má na každé straně připojenou elektrodu. Gel se pokryje pufrem obsahujícím ionty, jako tris-boritan-edta (TBE), který reguluje ph systému a je elektricky vodivý. Následně se z gelu opatrně vyjme hřebínek a vzorky se zavedou do výsledných jamek v gelu pomocí pipety. Vzorky pro gelovou elektroforézu jsou smíchané s malým množstvím sacharózy nebo glycerolu, aby se zvýšila jejich hustota. To způsobí, že vzorky po zavedení klesnou na dno jamky. Strana 2 ze 18

Po zavedení všech vzorků do jamek v gelu se vana připojí ke zdroji elektrického napájení a do gelu se přivede elektrický proud (obvykle 50-150 V). Vana je konstruovaná s kladnou elektrodou (anodou) na jednom konci a zápornou elektrodou (katodou) na druhém konci. Elektroforéza doslova znamená "unášení elektřinou"; jakmile se vytvoří elektrické pole, nabité molekuly ve vzorcích začnou prostupovat póry v gelu k tomu póĺu, který je přitahuje. Molekuly s výsledným záporným nábojem migrují směrem ke kladné elektrodě a molekuly s výsledným záporným nábojem putují směrem k záporné elektrodě. Celkový náboj molekul má vliv na rychlost prostupování gelem. Molekuly s velkým nábojem migrují gelem rychleji, než méně nabité molekuly. Mobilita molekul během gelové elektroforézy také závisí na velikosti a tvaru molekul. Drobné póry gelové matrice se chovají jako síto, které zajišťuje rozlišení molekul. Malé molekuly se pohybují póry snadněji než velké molekuly, a proto prostupují relativně rychle. Velké molekuly čelí většímu odporu při jejich cestě drobnými póry gelu, a proto se pohybují pomaleji. Velikost a náboj jsou faktory, které společně určují, jak rychle se budou molekuly pohybovat gelem, a tedy jakou vzdálenost urazí. Malá velikost a silný náboj znamená vyšší rychlost migrace gelem. Velká velikost a slabý náboj snižují rychlost migrace. (Pozn.: Při elektroforéze DNA, kdy mají všechny vzorky stejný náboj, je rychlost migrace založena pouze na velikosti). Při této aktivitě bude elektroforéze v agarózovém gelu podrobeno pět známých vzorků barviv a tři neznámé vzorky. Některá z těchto barviv budou přitahována zápornou elektrodou a jiná kladnou elektrodou v závislosti na jejich celkovém náboji. Každý ze známých vzorků barviva vykazuje zcela jinou vzdálenost migrace v gelu v souvislosti s jejich velikostí a nábojem molekul. Studenti zjistí složky neznámých směsí barviv porovnáním migračních vzdáleností a směrů migrace neznámých vzorků s daty získanými o známých vzorcích barviva. Poznámka: Elektroforéza barviv poskytuje jednoduchý a užitečný úvod do gelové elektroforézy. Přestože se určitým způsobem liší od většiny elektroforéz, se kterými se studenti později setkají, tyto rozdíly jsou stejně poučné, jako podobnosti jednotlivých metod. Například složky barviv jasně ilustrují, jak probíhá proces separace, zatímco DNA a proteinové gely je nutné obarvit, aby se ukázaly separované pruhy. Také to, že můžeme vidět specifické molekuly barviva, které urazily specifické vzdálenosti v gelu, později pomůže pochopit použití a princip nanášecího barviva při separaci DNA. Vytváření jamek uprostřed gelové hmoty a pozorování průchodu složek barviva různými směry podle jejich elektrického náboje později usnadní pochopení použití a chování SDS při obarvování proteinových vzorků pro eliminaci náboje jako potencionálního faktoru separace. Strana 3 ze 18

Materiály Poskytnuté materiály jsou určené pouze pro použití s Předváděcí sadou pro učitele, nebo Studentskou sadou pro 8 stanic. Carolina Biological Supply Company odmítá veškerou odpovědnost za jakékoli jiné použití těchto materiálů. Materiály obsažené v Předváděcí sadě pro učitele (21-1147) 1 lahev 0,8% rozpustné agarózy, 60 ml (připraveno z 0,48 g agarózy v 60 ml 1 TBE) 1 lahev 20xTBE pufru, 20 ml (dostatečné množství pro přípravu 400 ml 1 roztoku TBE) bromfenolová modř, 30 µl metyloranž, 30 µl ponceau G, 30 µl xylen cyanol, 30 µl pyronin Y, 30 µl neznámý vzorek #1, 30 µl neznámý vzorek #2, 30 µl neznámý vzorek #3, 30 µl 8 pipet 1 měřítko 1 plastová miska Potřebný materiál, ale neobsažený v Předváděcí sadě pro učitele (21-1147) vana pro gelovou elektroforézu zdroj elektrického napájení (nejméně 50-V) role maskovací lepicí pásky držák mikrozkumavek do mikrocentrifugy 400ml (nebo větší) nádoba varná lázeň, nebo mikrovlnná trouba destilovaná voda (380 ml) vodní lázeň 55 60 C (volitelné) Strana 4 ze 18

Časová náročnost Příprava učitele Materiály obsažené ve Studentské sadě pro 8 stanic (21-1148) agarózový prášek, 4 g (pro přípravu 500 ml 0,8% roztoku agarózy) 1 lahev 20 x TBE pufru, 200 ml (pro přípravu 4 L 1 roztoku TBE) bromfenolová modř, 500 µl metyloranž, 500 µl ponceau G, 500 µl xylen cyanol, 500 µl pyronin Y, 500 µl neznámý vzorek #1, 500 µl neznámý vzorek #2, 500 µl neznámý vzorek #3, 500 µl 64 pipet 8 měřítek 8 plastových misek Příručka pro učitele a návod pro studenty (materiály ke kopírování jsou na konci této Příručky pro učitele) Potřebný materiál, ale neobsažený ve Studentské sadě pro 8 stanic (21-1147) 8 van pro gelovou elektroforézu 8 zdrojů elektrického napájení (nejméně 50-V) role maskovací lepicí pásky držák mikrozkumavek do mikrocentrifugy 4 L (nebo větší) nádoba 1 L baňka, nebo kádinka varná lázeň, nebo mikrovlnná trouba destilovaná voda (3800 ml) vodní lázeň 55 60 C (volitelné) Potřebný čas Aktivita 5 minut Příprava 1 TBE pufru 5 minut Odstředění nebo sklepnutí barevných činidel 10 25 minut Příprava 0.8% roztoku agarózy Laboratorní postup Potřebný čas Aktivita *20 minut Lití agarózového gelu 10 15 minut Zavádění vzorků do gelu 15 25 minut Elektroforéza 15 minut Šetření a diskuse o výsledcích *Gely je možné lít a skladovat v elektroforetické vaně, pokryté 1xTBE pufrem, po dobu 2 dnů před zavedením vzorků. Strana 5 ze 18

Tipy pro učitele Lití gelu můžete provést v jedné laboratorní lekci a uložit gel až na 2 dny v elektroforetické vaně, pokrytý 1 TBE pufrem, před zavedením vzorků barviv a provedením elektroforézy. složky neznámého vzorku barviva #3 mají časem tendenci se v roztoku usazovat. Z tohoto důvodu neznámý vzorek barviva #3 co nejtěsněji před použitím promíchejte vířením roztoku, nebo několikrát prsty ostře klepněte na dno zkumavky. Pokud používáte Studentskou sadu pro 8 stanic (21-1148), potom se o vzorky barviv musí jednotlivé laboratorní pracovní stanice ve třídě podělit. Doporučuje se provést elektroforézu gelů při napětí 100 150 V. Elektroforéza při tomto napětí bude trvat přibližně 15 až 25 minut. Gely je možné podrobit nižšímu napětí, ale celková doba elektroforézy bude delší. Gely by neměly být vystaveny napětí nižšímu než 50 V, protože pokud se budou vzorky separovat pomalu, potom dojde k jejich rozptýlení. Gel je nutné analyzovat ihned po elektroforéze. Nečekejte až do další laboratorní lekce. Časem se pruhy barviva rozptýlí a bude obtížné je rozlišit. Migrační vzdálenosti v neznámých vzorcích barviv nemusí přesně odpovídat svým protějškům mezi známými vzorky barviv (mohou se lišit o 1 2 mm). To je způsobeno vzájemným působením mezi různými typy barviv ve směsi při jejich procházení gelem. Takové vzájemné působení může někdy mírně ovlivnit konečnou migrační vzdálenost. Bezpečnostní tipy Pokud používáte Studentskou sadu pro 8 stanic (21-1148), připomeňte studentům, že musí vždy používat bezpečné laboratorní postupy. Pozorně na studenty dohlížejte, když připojují elektroforetickou vanu ke zdroji elektrického napájení. Zdroj napájení se nesmí zapnout dříve, než je víko vany bezpečně umístěno a elektrické vodiče jsou správně zapojeny do vstupů. Před sejmutím víka a odpojením těchto vodičů je nutné vypnout zdroj elektrického napájení. Příprava Příprava 1 TBE pufru Tris-boritan-EDTA (TBE) je stabilní pufrový roztok, proto je možné ho připravit několik dnů dopředu a uložit ve skleněné baňce, nebo jiné nádobě při pokojové teplotě až do použití. Tento roztok připravíte následujícím způsobem: Pro Předváděcí sadu pro učitele (21-1147) Pro přípravu 1 koncentrace TBE přidejte 20 ml (celou lahev) 20 TBE pufru do 380 ml destilované vody v 400ml (nebo větší) nádobě. Vypláchněte veškeré zbytky z lahve, která obsahovala 20 TBE pufr, trochou čerstvě namíchaného pufru 1 TBE a vše přidejte do nádoby s 1 TBE. Míchejte až do úplného smíchání roztoku. Na nádobu nalepte štítek 1 TBE. Pro Studentskou sadu pro 8 stanic (21-1148): Pro přípravu 1 koncentrace TBE přidejte 200 ml (celou lahev) 20 TBE pufru do 3800 ml destilované vody v 4 L (nebo větší) nádobě. Strana 6 ze 18

Vypláchněte veškeré zbytky z lahve, která obsahovala 20 TBE pufr, trochou čerstvě namíchaného pufru 1 TBE a vše přidejte do nádoby s 1 TBE. Míchejte až do úplného smíchání roztoku. Na nádobu nalepte štítek 1 TBE. Odstředění nebo sklepnutí barevných činidel Činidla se během přepravy často rozprostřou okolo stěny nebo víčka zkumavky, ve které jsou skladována. Z tohoto důvodu je před vytvořením pracovních stanic nutné vzorky barviv dostat na dno jejich skladovacích zkumavek s použitím jedné z níže uvedených metod. Zkumavky obsahující vzorky barviv je možné odstředit, nebo sklepnout několik dnů před laboratorní lekcí a uložit ve vzpřímené pozici do držáku na mikrozkumavky. 1. Zkumavky s barvivy na krátkou dobu (~ 30 s) roztočte v mikrocentrifuze pro 1,5 ml zkumavky. 2. Ostře poklepte na dno každé zkumavky o desku stolu, až veškerá kapalina steče na dno zkumavky. Příprava 0,8% roztoku agarózy Pozor: Při manipulaci s 0,8% roztokem agarózy použijte kuchyňské chňapky nebo žáruvzdorné rukavice. Připravte 0,8% roztok agarózy nejméně 30 minut před litím gelu. Pro Předváděcí sadu pro učitele (21-1147) Rozpusťte agarózu ohřátím lahve jedním z následujících způsobů: 1. Uvolněte víčko lahve s 0,8% agarózou. Lahev ohřívejte v mikrovlnné troubě na vysoký výkon v minutových intervalech, dokud se agaróza úplně nerozpustí. Po každé minutě ohřívání láhev protřepejte, abyste zabránili překypění agarózy. Pozorně lahev pozorujte. Pokud se agaróza začne vařit příliš divoce, opatrně ji vyjměte ze zdroje tepla a počkejte, až se kapalina usadí. Poté pokračujte v zahřívání, je-li to potřeba. 2. Uvolněte víčko lahve s 0,8% agarózou. Ohřívejte lahev ve varné lázni až do úplného rozpuštění agarózy (přibližně 6 až 12 minut). Hladina vody musí být právě nad hladinou agarózy v lahvi. Po pár minutách ohřívání láhev vždy protřepejte, abyste zabránili překypění agarózy. Pozorně lahev pozorujte. Pokud se agaróza vaří příliš divoce, opatrně ji vyjměte ze zdroje tepla a počkejte, až se kapalina usadí. Poté pokračujte v zahřívání, je-li to potřeba. Rozpouštěním agarózy se 0,8% agarózový roztok stává čirým. Protřepejte lahev a pozorujte její dno, abyste se ujistili, že na dně nezůstává nerozpuštěná agaróza. Nechte lahev zchladnout, dokud ji nebudete moci držet holou rukou bez pocitu pálení. Stále by měla být teplá okolo 55 až 60 C. V tuto chvíli můžete agarózu hned použít, nebo ji udržovat na teplotě 55 až 60 C ve vodní lázni, dokud nebudete připraveni ji použít. Strana 7 ze 18