Cvičení ke kurzu Obecná ekotoxikologie. Úloha A - Stanovení ekotoxicity v testu klíčení rostlin

Podobné dokumenty
Řasový test ekotoxicity na mikrotitračních destičkách

EKOTOXIKOLOGICKÉ TESTY

Úloha č. 1 Odměřování objemů, ředění roztoků Strana 1. Úkol 1. Ředění roztoků. Teoretický úvod - viz návod

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 NÁRODNÍ KOLO. Kategorie E. Zadání praktické části Úloha 2 (30 bodů)

ODDĚLOVÁNÍ SLOŽEK SMĚSÍ, PŘÍPRAVA ROZTOKU URČITÉHO SLOŽENÍ

2) Připravte si 3 sady po šesti zkumavkách. Do všech zkumavek pipetujte 0.2 ml roztoku BAPNA o různé koncentraci podle tabulky.

Bakteriální bioluminiscenční test. Stanovení účinnosti čištění odpadních vod pomocí bakteriálního bioluminiscenčního testu

EKOTOXIKOLOGICKÉ BIOTESTY

Návod k laboratornímu cvičení. Vitamíny

1. Příloha 1 Návod úlohy pro Pokročilé praktikum z biochemie I

2) Připravte si 7 sad po pěti zkumavkách. Do všech zkumavek pipetujte 0.2 ml roztoku BAPNA o různé koncentraci podle tabulky.

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 NÁRODNÍ KOLO. Kategorie E. Zadání praktické části Úloha 1 (20 bodů)

TEORETICKÝ ÚVOD. Pipetování

QMS Kvalita v mikrobiologii 14. vydání Datum vydání: červen 2018

STUDIJNÍ MATERIÁL 3:

VETERINÁRNÍ A FARMACEUTICKÁ UNIVERZITA BRNO FAKULTA VETERINÁRNÍ HYGIENY A EKOLOGIE ÚSTAV EKOLOGIE A CHOROB ZVĚŘE, RYB A VČEL

Obsah 1 P edmluva Úvod Oblast použití Použité podklady Související právní p edpisy

Jazykové gymnázium Pavla Tigrida, Ostrava-Poruba Název projektu: Podpora rozvoje praktické výchovy ve fyzice a chemii

Citlivost terestrických zkoušek ekotoxicity

Stanovení korozní rychlosti elektrochemickými polarizačními metodami

Ústřední komise Chemické olympiády. 53. ročník 2016/2017. KRAJSKÉ KOLO kategorie C. ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (40 BODŮ) časová náročnost: 120 minut

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU SELENU METODOU ICP-OES

Zkouška inhibice růstu řas

VETERINÁRNÍ A FARMACEUTICKÁ UNIVERZITA BRNO FAKULTA VETERINÁRNÍ HYGIENY A EKOLOGIE ÚSTAV EKOLOGIE A CHOROB ZVĚŘE, RYB A VČEL

pracovní list studenta Analytická chemie Barevnost chemických látek Aleš Mareček

STANOVENÍ FYTOTOXICITY KOMPOSTŮ INHIBICE RŮSTU, KLÍČIVOST A INDEX KLÍČIVOSTI ŘEŘICHY SETÉ (LEPIDIUM SATIVUM)

Kurz 1 Úvod k biochemickému praktiku

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU KOBALTU METODOU ICP-MS

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 KRAJSKÉ KOLO. Kategorie E ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (50 BODŮ)

Příloha č. 2 Technické podmínky

Stanovení α-amylázy v moči

Test toxicity při semichronické expozici vůči okřehku menšímu (Lemna minor L.)

Studium komplexace -cyklodextrinu s diclofenacem s využitím NMR spektroskopie

Návod a protokol k praktickým cvičením z lékařské biochemie

Test toxicity při semichronické expozici vůči okřehku menšímu (Lemna minor L.)

Pufry, pufrační kapacita. Oxidoredukce, elektrodové děje.

Pufry, pufrační kapacita. Oxidoredukce, elektrodové děje.

REKTIFIKACE DVOUSLOŽKOVÉ SMĚSI, VÝPOČET ÚČINNOSTI

Akutní test toxicity na žábronožkách Artemia salina

STANOVENÍ KOFEINU V NÁPOJÍCH METODOU HPLC

STANOVENÍ PROPUSTNOSTI OBALOVÝCH MATERIÁLŮ PRO VODNÍ PÁRU

Doprava, zdraví a životní prostředí Brno,

CZ.1.07/1.5.00/ pracovní list. Hygiena a toxikologie. Experimentální toxikologie. Mgr. Alexandra Šlegrová

N Laboratoř hydrobiologie a mikrobiologie

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MĚDI, ŽELEZA, MANGANU A ZINKU METODOU FAAS

α-globin StripAssay Kat. číslo testů 2-8 C

ELISA-VIDITEST PAU ve vodě

Určení koncentrace proteinu fluorescenční metodou v mikrotitračních destičkách

ULTRAFIALOVÁ A VIDITELNÁ SPEKTROMETRIE

CVIČENÍ 3: VODNÍ PROVOZ (POKRAČOVÁNÍ), MINERÁLNÍ VÝŽIVA. Pokus č. 1: Stanovení celkové a kutikulární transpirace listů analýzou transpirační křivky

HbA1c. Axis - Shield. Společnost je zapsána v obchodním rejstříku Městského soudu v Praze, odd. C vložka 1299

EKOTOXIKOLOGICKÉ ÚČINKY VYBRANÝCH REZIDUÍ, EKOTOXIKOLOGICKÉ TESTY

Braf V600E StripAssay

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv

NORMY PRO BIOLOGICKÉ METODY

Inhibitory koroze kovů

Objednací číslo Určení Ig-třída Substrát Formát DP E Inhalační a potravinové alergeny

EGFR XL StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

Příprava roztoků, absorpční spektrofotometrie

STANOVENÍ VLIVU CHEMIKÁLIÍ NA KRÁTKODOBOU NITRIFIKAČNÍ AKTIVITU

Spektrofotometrické stanovení fosforečnanů ve vodách

MagPurix Viral/Pathogen Nucleic Acids Extraction Kit B

VŠB-TUO FMMI, Katedra chemie CVIČENÍ Z EKOTOXIKOLOGICKÝCH TESTŮ

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 ŠKOLNÍ KOLO. Kategorie A ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (40 BODŮ)

Jednotné pracovní postupy analýza půd III TEST VLIVU CHEMIKÁLIÍ NA DÉLKU KOŘENE SALÁTU (LACTUCA SATIVA)

ELISA-VIDITEST Neurofilamenta-L

Aspartátaminotransferáza (AST)

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ AKTIVITY FYTÁZY

Úloha č.2 Vážení. Jméno: Datum provedení: TEORETICKÝ ÚVOD

BlueWell Intrinsic Factor IgG ELISA Cat.. IF01-96

Název: Osmóza. Čas: 120 minut Věk: Témata: Osmóza, molarity, sbírání dat a grafické znázornění. Diferenciace: Instrukce, IT podpora atd.

Funkční vzorek 5456/2017. Set ke stanovení minimálních inhibičních koncentrací antimikrobiálních. látek u Enterococcus spp.

Sada Rostliny, živočichové, biotopy Kat. číslo

cdna synthesis kit First-Strand cdna Synthesis System Verze 1.2

CRP. Axis - Shield. SINGLE TESTS CRP kvantitativní stanovení pomocí přístroje NycoCard Reader II

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU KADMIA A OLOVA METODOU FAAS

MIKROBIOLOGIE. Grampozitivní kokovitá bakterie STAPHYLOCOCCUS AUREUS bakteriální kmen dle ATCC 1260 (CCM 888).

MagPurix Forensic DNA Extraction Kit

LP č.1: FILTRACE A KRYSTALIZACE

Oxidační účinek ferátů na autotrofní a heterotrofní mikroorganismy

Funkční vzorek 5454/2017. Set ke stanovení minimálních inhibičních koncentrací antimikrobiálních. látek u Pseudomonas spp.

ELISA-VIDITEST Neurofilamenta-L

fenanthrolinem Příprava

Úloha č. 8 POTENCIOMETRICKÁ TITRACE. Stanovení silných kyselin alkalimetrickou titrací s potenciometrickou indikací bodu ekvivalence

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU LC-MS - FUMONISIN B 1 A B 2

ČÍSLO KYSELOSTI

VYSOKÉ UČENÍ TECHNICKÉ V BRNĚ

Zpráva č.: CALLA CE ZPRÁVA O STUDII HODNOCENÍ PŘESNOSTI

NRAS StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

LRR/BUBCV CVIČENÍ Z BUNĚČNÉ BIOLOGIE 3. TESTY ŽIVOTASCHOPNOSTI A POČÍTÁNÍ BUNĚK

pracovní list studenta Komplexní sloučeniny Stanovení koncentrace železnaté soli Aleš Mareček

Praktický kurz Monitorování toxicity vybraných cytostatik pomocí MTT testu a real-time monitoringu xcelligence.

Protilátky proti ovariu ELISA

VYUŽITÍ A VALIDACE AUTOMATICKÉHO FOTOMETRU V ANALÝZE VOD

Metodické doporučení SZÚ pro hodnocení škodlivých a. nežádoucích látek uvolňujících se z vybraných skupin. výrobků pro stavby do vody a půdy.

Použití v laboratorních podmínkách

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU KVASINEK RODU SACCHAROMYCES

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU 5-VINYL - 2-THIOOXAZOLIDONU (GOITRINU) METODOU GC

UNIVERZITA PARDUBICE

Posouzení. vlastností směsi škváry a popílku ze spalovny odpadů TERMIZO a.s. dle vyhlášky č. 294/2005 Sb.

Transkript:

Cvičení ke kurzu Obecná ekotoxikologie Nutné potřeby, které studenti přinesou s sebou do cvičení: - Tento návod - Poznámkový sešit, psací potřeby - Nůžky - Pravítko (s milimetrovým rozlišením) - Přezůvky Úvodní přípravné otázky: (zdroj informací pro odpovědi - materiály k přednáškám, www.google.com) - Jaký je význam použitého organismu (= modelový zástupce rostlin)? - Jaké jsou praktické (ekologické) důsledky eventuálního poškození klíčení rostlin? - Co to je IC0 a co to je IC99? Proč se používá právě IC0 a ne například IC99? Úloha A - Stanovení ekotoxicity v testu klíčení rostlin Úvod: Ve skleněných petriho miskách jsou semena hořčice seté umístěna na filtrační papír a exponována ml standardního média s různým ředěním testované látky. Jako negativní kontrola slouží varianta se semeny exponovanými jen čistému médiu. Po ukončení experimentu se stanoví počet vyklíčených semen v kontrolách a v jednotlivých ředěních a u vyklíčených jedinců se vyhodnotí celková délka kořene. Získané výsledky lze využít pro výpočet hodnot IC0 (koncentrace zabraňující vyklíčení u 0% semen, resp. koncentrace 0% inhibující růst kořene). Metodika testu klíčení je standardizována do podoby Guidline OECD (No. 08) a metodického pokynu MŽP ČR pro hodnocení toxicity odpadů a vodných výluhů (Test inhibice růstu kořene Sinapis alba, Vyhl. MŽP ČR 8/997). Ve standardní podobě se provádí dny (96 hodin). Pro účely cvičení může být doba expozice modifikována. Materiál a chemikálie - semena hořčice bílé Sinapis alba (s atestem testu klíčivosti) - skleněné 0 cm petriho misky, pipety 0 ml, automatické mikropipety, filtrační papír, vialky pro přípravu ředění testované látky, pinzeta, laboratorní plastiková folie, špičky k pipetám - zásobní roztok standardního kultivačního média Úloha A - Postup - příprava EXPOZICE: ) Petriho misky popište jménem, datem, koncentrací testované látky. Do takto připravených petriho misek připravte a vložte kruhové výseče z filtračního papíru - celkem připravte petriho misek (x kontrola + ředění vzorku A v duplikátech + ředění vzorku B v duplikátech ) ) Příprava ředění vzorku - připravte následující koncentrace dodaného testovaného vzorku (vzorek A): 0.% v/v, 0.% v/v, % v/v (do ml standardního média napipetujete potřebný objem testovaného vzorku 7,µL, 7 L, 0 L/ ml - změnu celkového objemu zanedbejte) (vzorek B): mg/l, 0 mg/l, 00 mg/l (do ml standardního média napipetujeme potřebný objem testovaného vzorku,µl, 0µL, 600µL/mL změnu celkového objemu zanedbejte) - ředění proveďte v dodaném standardním médiu (roztok solí a základních živin nutných pro klíčení rostlin). ) Připravené expoziční roztoky dávkujte do petriho misek - vždy ml / misku - u kontrol použijte ml standardního média bez vzorku - použijte jednu pipetu a postupujte od nejnižší po nejvyšší koncentraci ) Do každé misky vložte semen hořčice bílé

) Petriho misky překryjte potravinovou folií (zajistí cirkulaci vzduchu a omezí vypařování) a umístěte do temna do inkubační místnosti (pokojová teplota) Úloha A - Postup - vyhodnocení KLÍČENÍ: ) Po ukončení expozice spočítejte počty nevyklíčených semen na jednotlivých miskách a zapište do tabulky. ) U vyklíčených semen vyhodnoťte délku kořene (s přesností na milimetry) a zapište do tabulky; ) Vypočítejte průměrnou hodnotu u každé varianty a hodnoty vyjádřete jako % kontroly a % inhibice (vyjádřete jako celá čísla) ) Vyhodnocení IC0 proveďte pomocí lineární regrese se zahrnutím logaritmu koncentrace (Excel) ) Schéma protokolu: princip, postup, výsledková tabulka, grafy pro jednotlivé sledované parametry a závěry

PROTOKOL - Cvičení z Obecné ekotoxikologie Úloha A - TEST EKOTOXICITY KLÍČENÍ ROSTLIN: Jména operátorů Datum založení expozice: Datum hodnocení: -> délka expozice (počet dní): Rostlina číslo Testovaný vzorek A (koncentrace % v/v) Kontrola 0.% % % Pozn. Celkem semen 0 0 0 0 Počet nevyklíčených Délky kořenů - Miska A Délky kořenů - Miska B Průměr délky kořenů % kontroly 00 % inhibice 0 IC0 - klíčení (% v/v) IC0 - růst kořene (% v/v)

Rostlina číslo Testovaný vzorek B (koncentrace % v/v) Kontrola mg/l 0 mg/l 00 mg/l Pozn. Celkem semen 0 0 0 0 Počet nevyklíčených Délky kořenů - Miska A Délky kořenů - Miska B Průměr délky kořenů % kontroly 00 % inhibice 0 IC0 - klíčení (% v/v) IC0 - růst kořene (% v/v) Otázky: ) Který z hodnocených parametrů je citlivějším ukazatelem toxicity? ) Který vzorek je více toxický? ) Jaké množství testované látky způsobí inhibici růstu kořene o 99% (vzorek A a vzorek B)?

Úloha B - Stanovení ekotoxicity v testu s planktonními producenty (test inhibice růstu zelené řasy) Úvod: Řasové buňky rodu Pseudokirchneriella subcapitata jsou v mikrotitrační 96-jamkové destičce exponovány různým ředěním testovaného vzorku (každá varianta ve třech opakováních). Těsně po zahájení expozice (START) a po ukončení (KONEC) experimentu se na destičkovém spektrofotometru stanoví absorbance (680 nm) v jednotlivých jamkách s řasou a testovanými vzorky. Během experimentu dochází u kontrolních variant k růstu řas: hodnota rozdílu absorbancí (da = KONEC - START) odpovídá celkovému růstu za daných podmínek. Hodnoty da jednotlivých variant se vyjádří jako % inhibice růstu (da v kontrole=00%) a ze získaných hodnot se vypočítají hodnoty IC0 (koncentrace inhibující růst z 0%) Metodika testu klíčení je standardizována do podoby Guidline OECD (No. 0). Pro účely cvičení bylo uspořádání modifikováno. Materiál a chemikálie - připravená řasová kultura Pseudokirchneriella subcapitata o vhodné hustotě v standardním kultivačním médiu - mikrotitrační destička, automatické mikropipety, vialky pro přípravu ředění testované látky, špičky k pipetám - médium pro ředění vzorků Úloha B - Postup - příprava EXPOZICE: ) Příprava ředění vzorku - připravte následující koncentrace z dodané testované látky (KCrO7 - dichroman draselný, koncentrace dodaného zásobního roztoku 00 mg/l): 00, 00, 0,,. mg/l: - připravte si mikrozkumavek - do první přeneste 00 ul zásobního roztoku a do ostatních 00 ul destilované vody (vialky popište koncentracemi) - z roztoku o nejvyšší koncentraci 00mg/L přeneste 00 ul do další vialky popsané 00mg/L s vodou a důkladně promíchejte (ředění :, dojde k naředění pův.konc. na polovinu, tj. 00 mg/l), stejným způsobem připravte seriovým ředěním další nižší koncentrace ) Expozice řas - do 6 čistých mikrozkumavek dávkujte 90 ul řasové kultury (! kulturu před pipetováním důkladně promíchejte) - následně k řasám pipetujte po 0 ul vody (vialka - kontrola), resp. 0 ul z jednotlivých ředění připravených v předchozím bodě (tzn. z připraveného roztoku. mg/l odeberte 0uL a napipetujte do mikrozkumavky s řasama - popsané 0.6) - použijte jednu pipetu, pipetujte od nejnižší koncentrace - špičku není třeba vyměňovat. Připravené roztoky jsou tedy výsledně 0x zředěny (0:90) a výsledné koncentrace jsou: 0 (kontrola), 0.6,.,.,, 0 mg/l - vialky s řasou a testovanou látkou důkladně promíchejte - Z každé varianty pipetujte x 00 ul, vždy do jamek mikrotitrační destičky (x kontrola, poté x z každé koncentrace). Mikrodestičku popište jménem, datem a jamky s testovanou látkou popište odpovídajícími koncentracemi (K, 0.6,.,.,, 0). ) Stanovení počáteční hodnoty absorbance pro hodnocení růstu - na mikrodestičkovém readeru odečtěte absorbanci při 680 nm - získaný soubor (ve formátu MS-Excel) uložte na pevný disk počítače do adresáře "/ ObEkotox-cviceni/ pod názvem START-příjmení.xls, kde příjmení je příjmení jedné z osob ve dvojici ) Mikrodestičku přikryjte víčkem a uchovejte v inkubační místnosti s řízeným světelným režimem

Úloha B - Postup - vyhodnocení INHIBICE RŮSTU: ) Po ukončení expozice zkontrolujte opticky stav růstu řas v jednotlivých jamkách mikrodestičky, případné problémy zaznamenejte ) Na mikrodestičkovém readeru odečtěte absorbanci při 680 nm (KONEC) - získaný soubor (ve formátu MS-Excel) uložte na pevný disk počítače do adresáře "/dokumenty/obekotoxcviceni/ pod názvem KONEC-příjmení.xls, kde příjmení je příjmení jedné z osob ve dvojici ) S využitím výpočtů v připraveném souboru MS-Excel (bude k dispozici v laboratoři) - vypočítejte průměrné hodnoty KONEC a START jednotlivých variant, vypočítejte % růstu a % inhibice ve srovnání s kontrolou (viz tabulka/protokol) ) S využitím lineární regrese v Excelu vypočtěte IC0 pro inhibici růstu a zapište do tabulky. 6

PROTOKOL - Cvičení z Obecné ekotoxikologie Úloha B - EKOTOXIKOLOGICKÝ BIOTEST RŮSTU ŘAS: Jména operátorů Datum založení expozice: Datum hodnocení: -> délka expozice (počet dní): A680 START (průměr) A680 KONEC (průměr) hodnota da Koncentrace (mg/l) Kontrola (0) 0.6.. 0 % růstu 00 % inhibice 0 IC 0 (mg/l) Otázky: ) Při které použité koncentraci látky ještě nebyl pozorován inhibiční efekt? ) Při které použité koncentraci látky již bylo možno poprvé uvidět významný inhibiční efekt? ) Jaké jsou hodnoty NOEC, LOEC a MATC? ) Jaká koncentrace způsobí inhibici růstu o 99%? 7