Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU POLYBROMOVANÝCH DIFENYLETERŮ METODOU GC-MS



Podobné dokumenty
Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU LC-MS - FUMONISIN B 1 A B 2

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU LC-MS - aflatoxin B1, B2, G1 a G2

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MELAMINU A KYSELINY KYANUROVÉ METODOU LC-MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU DEKOCHINÁTU METODOU HPLC

Jednotné pracovní postupy analýza půd STANOVENÍ OBSAHU PERFLUOROALKYLOVÝCH SLOUČENIN (PFAS) METODOU LC-MS/MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU GTH METODOU GC-MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MADURAMICINU A SEMDURAMICINU METODOU HPLC

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU VITAMÍNU D METODOU LC/MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU 5-VINYL - 2-THIOOXAZOLIDONU (GOITRINU) METODOU GC

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU NEPOVOLENÝCH DOPLŇKOVÝCH LÁTEK METODOU LC-MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU INDIKÁTOROVÝCH KONGENERŮ PCB METODOU GC-MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv Vydání 1 STANOVENÍ OBSAHU KOKCIDIOSTATIK METODOU LC-MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU REZIDUÍ POLÁRNÍCH PESTICIDŮ METODOU LC-MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU SEMDURAMICINU METODOU HPLC

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv Vydání 1 STANOVENÍ OBSAHU KOKCIDIOSTATIK METODOU LC-MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU REZIDUÍ POLÁRNÍCH PESTICIDŮ METODOU LC-MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv Stanovení obsahu celkového a volného tryptofanu metodou HPLC

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU HPLC - OCHRATOXIN A

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU VITAMÍNU A A VITAMÍNU E METODOU HPLC

L 54/80 CS Úřední věstník Evropské unie

CS Úřední věstník Evropské unie L 54/85

L 54/76 CS Úřední věstník Evropské unie

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv MULTIREZIDUÁLNÍ METODA STANOVENÍ MYKOTOXINŮ METODOU LC-MS/MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU PERSISTENTNÍCH ORGANOCHLOROVÝCH PESTICIDŮ METODOU GC-MS

Příloha 1. Návod pro laboratorní úlohu

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU REZIDUÍ PESTICIDŮ METODOU LC-MS

CS Úřední věstník Evropské unie L 54/89

L 54/116 CS Úřední věstník Evropské unie

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU KOBALTU METODOU ICP-MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU REZIDUÍ PESTICIDŮ METODOU GC-MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MĚDI, ŽELEZA, MANGANU A ZINKU METODOU FAAS

Standardní operační postup

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU VITAMÍNU A A VITAMÍNU E METODOU HPLC S UV DETEKCÍ

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv Vydání 1 STANOVENÍ OBSAHU MADURAMICINU METODOU HPLC

Stanovení vit. A a vit. E metodou HPLC v krmivech a premixech dopl ňkových látek

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU VITAMÍNU D METODOU HPLC

Postup ke stanovení báze metamfetaminu metodou GC-FID

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU SELENU METODOU ICP-OES

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU DRASLÍKU, SODÍKU, HOŘČÍKU A VÁPNÍKU METODOU FAAS/FAES

Stanovení složení mastných kyselin

Spektrofotometrické stanovení fosforečnanů ve vodách

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU VÁPNÍKU MANGANOMETRICKY

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU REZIDUÍ DITHIOKARBAMÁTŮ METODOU GC-MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU ARSENU METODOU ICP-MS

Metodický postup pro stanovení PAU v půdách volných hracích ploch metodou HPLC a GC

L 54/32 CS Úřední věstník Evropské unie

Jednotné pracovní postupy testování odrůd STANOVENÍ OBSAHU TANINŮ V ČIROKU SPEKTROFOTOMETRICKY

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU AMINOKYSELIN

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU ARSENU, KOBALTU, CHROMU A NIKLU METODOU ICP-OES

Metodika stanovení kyselinové neutralizační kapacity v pevných odpadech

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MASTNÝCH KYSELIN V OLEJÍCH A TUCÍCH METODOU GC

Nová integrální strategie sledování organických polutantů v potravinách živočišného původu

LABORATOŘ ANALÝZY POTRAVIN A PŘÍRODNÍCH PRODUKTŮ. Stanovení těkavých látek

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU KADMIA A OLOVA METODOU FAAS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU HPLC - ZEARALENON

P. Martinková, D. Pospíchalová, R. Jobánek, M. Jokešová. Stanovení perfluorovaných organických látek v elektroodpadech

UNIVERZITA PARDUBICE Fakulta chemicko-technologická Katedra analytické chemie. Nám. Čs. Legií 565, Pardubice.

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU TUKU V OLEJNATÝCH SEMENECH

13/sv. 6 CS (80/891/EHS)

L 54/66 CS Úřední věstník Evropské unie

Stanovení fenolických látek pomocí kapalinové chromatografie

ÚSTAV CHEMIE A ANALÝZY POTRAVIN

ANALÝZA EXTRAKTU PODLE MEHLICHA 3 METODOU ICP-OES

LABORATOŘ ANALÝZY POTRAVIN A PŘÍRODNÍCH PRODUKTŮ. Stanovení těkavých látek

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU BÍLKOVIN

LABORATOŘ OBORU I ÚSTAV ORGANICKÉ TECHNOLOGIE (111) Použití GC-MS spektrometrie

Stanovení sacharidů ve vybraných přírodních matricích pomocí kapalinové chromatografie s odpařovacím detektorem rozptylu světla (HPLC-ELSD)

L 54/72 CS Úřední věstník Evropské unie

LABORATOŘ ANALÝZY POTRAVIN A PŘÍRODNÍCH PRODUKTŮ

Praha, Liberec, Ostrava a Zlín (resp. Kroměříž a Uherské Hradiště)

JODOMETRICKÉ STANOVENÍ ROZPUŠTĚNÉHO KYSLÍKU

Zajištění správnosti výsledků analýzy kotininu a kreatininu

LABORATOŘ ANALÝZY POTRAVIN A PŘÍRODNÍCH PRODUKTŮ

LABORATOŘ ANALÝZY POTRAVIN A PŘÍRODNÍCH PRODUKTŮ

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU PROBIOTICKÝCH BAKTERIÍ RODU ENTEROCOCCUS

EXTRAKČNÍ METODY. Studijní materiál. 1. Obecná charakteristika extrakce. 2. Extrakce kapalina/kapalina LLE. 3. Alkalická hydrolýza

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ AKTIVITY FYTÁZY

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv

Přehled novinek v nabídce firmy LABICOM s.r.o.

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU VITAMÍNU C METODOU HPLC

MOŽNOSTI STANOVENÍ 2-ETHYLHEXYL NITRÁTU V NAFTĚ. OLGA NYKODÝMOVÁ, BOHUSLAV DVOŘÁK, PETRA BAJEROVÁ, ALEŠ EISNER a KAREL VENTURA.

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU GLUKOSINOLÁTŮ METODOU HPLC

Příloha 2. Návod pro laboratorní úlohu

LABORATOŘ ANALÝZY POTRAVIN A PŘÍRODNÍCH PRODUKTŮ

Chyby spektrometrických metod

STANOVENÍ OBSAHU HUMINOVÝCH KYSELIN A FULVOKYSELIN GRAVIMETRICKY

Hmotnostní detekce biologicky významných sloučenin pro biotechnologie část 3 - Provedení štěpení proteinů a následné analýzy,

LABORATOŘ ANALÝZY POTRAVIN A PŘÍRODNÍCH PRODUKTŮ

Hmotnostní spektrometrie

STANOVENÍ VLIVU CHEMIKÁLIÍ NA KRÁTKODOBOU NITRIFIKAČNÍ AKTIVITU

Inovace bakalářského a navazujícího magisterského studijního programu v oboru Bezpečnost a kvalita potravin (reg. č. CZ.1.07/2.2.00/28.

STANOVENÍ ANTIOXIDAČNÍ KAPACITY METODOU FOTOCHEMILUMINISCENCE NA PŘÍSTROJI PHOTOCHEM

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv

LABORATORNÍ STANOVENÍ SÍRANŮ VE VODNÉM ROZTOKU

RUŠENÁ KRYSTALIZACE A SUBLIMACE

53. ročník 2016/2017

EXTRAKČNÍ METODY používané pro stanovení lipofilních a hydrofilních látek. Mgr. Romana Kostrhounová, Ph. D. RNDr. Ivana Borkovcová, Ph.D.

Stanovení esterů steroidů v krevním séru

NOVÉ NORMY PRO ANALÝZU VODY A PRO CHEMIKÁLIE K ÚPRAVĚ VODY

Transkript:

Národní referenční laboratoř Strana 1 STANOVENÍ OBSAHU POLYBROMOVANÝCH DIFENYLETERŮ METODOU GC-MS 1 Účel a rozsah Postup je určen pro kvantitativní stanovení vybraných kongenerů polybromovaných difenyletherů (PBDE) v krmných surovinách (rybí moučka, rybí tuk). Za podmínek daných tímto postupem lze dosáhnout detekčních limitů (0,04 0,08) µg/kg sušiny vzorku. 2 Princip PBDE se z předupraveného vzorku extrahují do dichlorometanu metodou tlakové extrakce rozpouštědlem (PLE) nebo Soxhletovy extrakce horkým rozpouštědlem. Extrakt se obohatí přídavkem vnitřního standardu s isotopově značenými PBDE ( 13 C-PBDE), převede se do hexanu, přečistí se třepáním s koncentrovanou kyselinou sírovou. Po odstředění se hexanová fáze dočistí pomocí silikagelu modifikovaného kyselinou sírovou, převede se do isooktanu a zanalyzuje metodou plynové chromatografie s tandemovou hmotnostně selektivní detekcí (GC-MS/MS). Alternativním způsobem přípravy vzorku k analýze PBDE je aplikace preparativní adsorpční chromatografie na kombinované silikagelové koloně. Obsahy PBDE se vyhodnotí z kalibrační závislosti plochy diagnostického iontu jednotlivých analytů na koncentraci příslušného analytu v roztoku směsného standardu, obsahujícím všechny požadované látky a vnitřní standardy. 3 Chemikálie Používají se chemikálie analytické čistoty, nejlépe kvality pro reziduální analýzu. 1 Hexan pro reziduální analýzu. 2 Dichlormetan pro reziduální analýzu, DCM. 3 Eluční směs 50% DCM v hexanu. 4 Eluční směs 20% DCM v hexanu. 5 Eluční směs 2% DCM v hexanu. 6 Isooktan pro reziduální analýzu. 7 Koncentrovaná kyselina sírová p.a., H 2 SO 4. 8 Hydroxid sodný, NaOH, roztok, c = 1 mol/l. Příprava: 4 g NaOH se rozpustí v odměrné baňce ve 100 ml vody (25). 9 Dusičnan stříbrný, AgNO 3.

Národní referenční laboratoř Strana 2 10 Silikagel 100 (0,063 mm 0,200 mm), aktivovaný při 150 C/12 h, uchovávaný v zábrusové lahvi v exsikátoru. 11 Kyselý silikagel 50%. Příprava: Smíchá se 50 g silikagelu (10) s 50 g H 2 SO 4 (7) a třepe se, až je směs sypká. Uchovává se v zábrusové lahvi v exsikátoru. 12 Silikagel 60 (0,063 mm 0,200 mm), aktivovaný při 250 C/12 h, uchovávaný v zábrusové lahvi v exsikátoru. 13 Kyselý silikagel 44%. Příprava: Smíchá se 56 g silikagelu (12) s 44 g H 2 SO 4 (7) a třepe se, až je směs sypká. Uchovává se v zábrusové lahvi v exsikátoru. 14 Zásaditý silikagel. Příprava: Smíchá se 33 g silikagelu (12) se 17 g NaOH (8) a třepe se, až je směs sypká. Uchovává se v zábrusové lahvi v exsikátoru. 15 Stříbrný silikagel. Příprava: Smíchá se 45 g silikagelu (12) s 5 g AgNO 3 (9), který byl před smícháním rozpuštěn ve 20 ml vody (25). Směs se důkladně promíchá a vysuší se při 120 C/8 h, a uchovává se v tmavé zábrusové lahvi v exsikátoru. 16 Síran sodný bezvodý, Na 2 SO 4, aktivovaný při 550 C/12 h. Uchovává se v zábrusové lahvi v exsikátoru. 17 Křemenná vata silanizovaná. 18 Mořský písek, vyžíhaný při 550 C/12 h. 19 Hydroskopická matrice, např. Speed-Matrix. 20 Standardy (viz.tabulka č.1 a 2).

Národní referenční laboratoř Strana 3 Tabulka 1. - Seznam standardů PBDE PBDE Zkratka Vzorec Molekulová hmotnost (g/mol) 2,4,4 -Tribromodifenylether BDE28 C 12 H 7 Br 3 O 406,91 2,2,4,4 -Tetrabromodifenylether BDE47 C 12 H 6 Br 4 O 485,81 2,3,4,4 -Tetrabromodifenylether BDE66 C 12 H 6 Br 4 O 485,81 2,2,4,4,6-Pentabromodifenylether BDE100 C 12 H 5 Br 5 O 564,71 2,2,4,4,5-Pentabromodifenylether BDE99 C 12 H 5 Br 5 O 564,71 2,2,3,4,4 -Pentabromodifenylether BDE85 C 12 H 5 Br 5 O 564,71 2,2,4,4,5,6 -Hexabromodifenylether BDE154 C 12 H 4 Br 6 O 643,61 2,2,4,4,5,5 -Hexabromodifenylether BDE153 C 12 H 4 Br 6 O 643,61 2,2,3,4,4,5,6-Heptabromodifenylether BDE183 C 12 H 3 Br 7 O 722,51 Tabulka 2. - Seznam izotopově značených vnitřních standardů 13C-PBDE 13C-PBDE Zkratka Vzorec Molekulová hmotnost (g/mol) 2,4,4 -Tribromo[ 13 C 12 ]difenylether 13 C-BDE28 13 C 12 H 7 Br 3 O 418,80 2,2,4,4 -Tetrabromo[ 13 C 12 ]difenylether 13 C -BDE47 13 C 12 H 6 Br 4 O 497,70 3,3,4,4 -Tetrabromo[ 13 C 12 ]difenylether 13 C -BDE77 13 C 12 H 6 Br 4 O 497,70 2,2,4,4,6-Pentabromo[ 13 C 12 ]difenylether 13 C -BDE100 13 C 12 H 5 Br 5 O 576,60 2,2,4,4,5-Pentabromo[ 13 C 12 ]difenylether 13 C -BDE99 13 C 12 H 5 Br 5 O 576,60 2,2,4,4,5,6 -Hexabromo[ 13 C 12 ]difenylether 13 C -BDE154 13 C 12 H 5 Br 5 O 576,60 2,2,4,4,5,5 -Hexabromo[ 13 C 12 ]difenylether 13 C -BDE153 13 C 12 H 4 Br 6 O 655,50 2,2,3,4,4,5 -Hexabromo[ 13 C 12 ]difenylether 13 C -BDE138 13 C 12 H 4 Br 6 O 655,50 2,2,3,4,4,5,6-Heptabromo[ 13 C 12 ]difenylether 13 C -BDE183 13 C 12 H 3 Br 7 O 734,39 21 Směsné standardy: BDE-MXF: Směsný standard nativních PBDE pro kvantifikaci; 2000 ng/ml nonanu, (Wellington, Kanada). MBDE-MXFS: Směsný standard izotopově značených PBDE, surrogate; 2000 ng/ml nonanu, (Wellington, Kanada).

Národní referenční laboratoř Strana 4 MBDE-MXFR:Směsný standard izotopově značených PBDE, recovery; 2000 ng/ml nonanu, (Wellington, Kanada). BDE 209: 50 μg/ml toluenu, (AccuStandard, USA). MBDE-209: Izotopově značený BDE209; (25 ± 1,2) μg/mlnonanu, (Wellington, Kanada). 22 Standardní roztoky: Pracovní roztok BDE-MXF: 500 ng (jednotlivých BDE) v 1 ml isooktanu. Pracovní roztok BDE-MXF: 50 ng (jednotlivých BDE) v 1 ml isooktanu. Pracovní roztok MBDE-MXFS surrogate standardu: 500 ng (jednotlivých 13C-BDE) v 1 ml isooktanu. Pipetuje se (20 100) μl k (1 5) g vzorku. Pracovní roztok nástřikového standardu: 500 ng (jednotlivých 13C-BDE) v 1 ml isooktanu. 23 Kalibrační standardní roztoky: Připraví se ze standardních roztoků (22) v koncentračním rozsahu (0 500) ng v 1 ml isooktanu (viz. tab. 3). Tabulka 3. - Příprava kalibračních standardních roztoků Kalibrační úroveň c (ng/ml) BDE- MXF V (μl) BDE- MXF MBDE- MXFS MBDE- MXFR MBDE- MXFS MBDE- MXFR isooktan celkový 1 0 100 100 0 40 40 120 200 2 1 100 100 4 (50 ng/ml) 40 40 116 200 3 5 100 100 2 (500 ng/ml) 40 40 118 200 4 20 100 100 8 (500 ng/ml) 40 40 112 200 5 100 100 100 40 (500 ng/ml) 40 40 80 200 6 500 100 100 50 (2000 ng/ml) 40 40 70 200 24 Referenční materiály: WMF-01: Reference Fish Tissue for Organic Contam. Analysis (Wellington, Kanada). 25 Voda (deionizovaná, demineralizovaná nebo destilovaná).

Národní referenční laboratoř Strana 5 4 Přístroje a pomůcky 1 Plynový chromatograf s hmotnostním detektorem, např: GC-MS/MS: CP 3800/Varian 1200, software Workstation MS (Varian). GC-MS/MS: GC Trace Ultra/ITQ 1100, software Xcalibur (Thermo). 2 Kapilární kolona, např.: Rapid-MS 10 m 0,25 mm 0,25 µm (Varian). DB5-MS 15 m 0,25 mm 0,10 µm (Agilent J&W). DB-XLB 30 m 0,25 mm 0,25 µm (Agilent J&W). 3 Extraktor, např.: ASE 100 s příslušenstvím (rozebiratelné nerezové cely a celulózové filtry), (Dionex). B-811 pro Soxhletovu extrakci horkým rozpouštědlem, (Buchi). 4 Stolní chlazená odstředivka, např.: Sigma 2-16K (Sigma). 5 Muflová pec s T min do 600 C. 6 Ultrazvuková lázeň. 7 Horizontální třepačka. 8 Rotační vakuová odparka (RVO). 9 Zařízení pro odpařování proudem inertního plynu. 10 Skleněné kolonky pro sloupcovou chromatografii (SPE): Minikolonka o velikosti 12 mm 60 mm s rezervoárem 24 mm 60 mm. Kolona na silikagel o velikosti 20 mm 170 mm s rezervoárem 34 mm 75 mm. 11 Odměrné sklo (hamiltonky, odměrné baňky, odměrné válce). 12 Laboratorní sklo (kádinky, vialky, pasteurovy pipetky, inserty o objemu 250 µl). 13 Exsikátor. 5 Postup 5.1 Extrakce Podle typu matrice se zvolí optimální způsob extrakce. 5.1.1 Automatický extraktor ASE Vzorek (1 g až 5 g) se smíchá s odpovídajícím množstvím (1 až 3 násobek navážky vzorku) bezvodého síranu sodného (16). Směs se nasype do nerezové cely o objemu 11 ml, obohatí se směsným izotopově značeným vnitřním standardem (22) (10 ng jednotlivých 13 C-BDE/1 g vzorku), zbývající prostor se vyplní inertním materiálem (18) a lože se ukončí 2mm vrstvou

Národní referenční laboratoř Strana 6 hydroskopické matrice (19). Uzavřená cela se umístí do přístroje ASE 100 (3) a extrahuje se DCM (2) podle předvoleného programu: T = 100 C; čas (statická fáze/profouknutí) = 300/60 s, proplach = 50 %, 3 extrakční cykly. Extrakt se převede pomocí isooktanu (6) do 100ml baňky a zkoncentruje se pomocí RVO (8) při 40 C na ~ 1 ml extraktu. 5.1.2 Automatický extraktor Büchi B-811 Do skleněné patrony s fritou se vloží 1 g až 5 g vzorku zabalené v buničině. Vzorek se obohatí přídavkem směsného izotopově značeného vnitřního standardu (22) (10 ng jednotlivých 13 C-BDE/1 g vzorku). Extrakční kelímek se naplní 80 ml až 100 ml DCM (2) a vloží se do něj varný kamínek. Délka extrakce je 1 h (20 min horký Soxhlet a 40 min promytí patrony). Poté se extrakt zkoncentruje na ~ 5 ml, převede se pasteurkou pomocí isooktanu (6) do 100ml baňky a zkoncentruje na RVO (8) při 40 C na ~ 1 ml extraktu. 5.2 Čištění extraktu Podle typu matrice a vzhledu extraktu se zvolí optimální kombinace čištění. 5.2.1 Třepání s koncentrovanou H 2 SO 4 Podíl extraktu odpovídající navážce 1 g vzorku se převede pasteurkou do 15ml zábrusové odměrné zkumavky a objem extraktu se upraví hexanem (1) na 5 ml. K podílu se přidá 10 ml koncentrované H 2 SO 4 (7) a zkumavka se uzavře zábrusovou zátkou. Obsah se promíchá pomalým převrácením obsahu zkumavky do odbarvení hexanové vrstvy a zkumavka se odplyňuje. Zkumavku bez zábrusové zátky se odstředí 3 min při 2000 ot/min. Přečištěný extrakt se odebere do 20ml vialky. Do zkumavky se přidá 1 ml hexanu, protřepe se, odstředí a hexanová vrstva se přidá k hlavnímu podílu. Spojené hexanové podíly se zkoncentrují odfoukáním pod dusíkem na 1 ml až 2 ml pro následné dočištění. 5.2.2 Dočištění na minikolonce s modifikovaných kyselým silikagelem Do krátké skleněné kolonky (10) se vloží smotek křemenné vaty a naplní se 1 g bezvodého Na 2 SO 4 (16) a 3 g kyselého silikagelu (11). Na čerstvě připravenou kolonku se nanese přečištěný extrakt (5.1.1 nebo 5.1.2) a k eluci se použije 10 ml hexanu (1), který se jímá do 50ml srdcovky. Eluát se odpaří na RVO na objem ~ 1 ml, převede se do vialky, pod proudem dusíku se zkoncentruje na objem 80 µl, převede se do insertu s nástřikovým izotopově značeným směsným standardem (10 ng jednotlivých 13C-BDE/1 g vzorku) (22). 5.2.3 Adsorpční chromatografie na kombinované silikagelové koloně Na dno skleněné kolony (10) se umístí smotek silanizované vaty a dále 2,5 g stříbrného silikagelu (15), 1 g aktivovaného silikagelu (12), 2,5 g zásaditého silikagelu (14), 1 g aktivovaného silikagelu (12), 5 g kyselého silikagelu (13), 1 g aktivovaného silikagelu (12), 5 g Na 2 SO 4 (16). Kolona se promyje 15 ml hexanu (1). Po promytí se na lože nanese ~ 2 ml surového extraktu a zásobní vialka po extraktu se 2 vypláchne hexanem, podíly se nanesou

Národní referenční laboratoř Strana 7 postupně na kolonu. Eluce se provede 25 ml hexanu (1) a 30 ml 20% DCM v hexanu (4). Do eluátu se přidá 1 ml isooktanu a zkoncentruje se na RVO (8) při 40 C na ~ 1 ml extraktu a následným odfoukáním pod dusíkem na 80 µl a převede do insertu s nástřikovým izotopově značeným směsným standardem (10 ng jednotlivých 13 C-BDE/1 g vzorku) (22). 5.3 GC-MS/MS stanovení 5.3.1 Chromatografické podmínky Plynový chromatograf (1) s nepolární kapilární kolonou (2). Nastavení přístroje a podmínky měření jsou uvedeny v měřicí metodě příslušného ovládacího programu použité přístrojové sestavy. 5.3.2 Podmínky pro hmotnostní spektrometrii Elektronová ionizace (EI) při 70 ev, měření v MS/MS módu, pro každý analyt se snímají dva produktové ionty. Kompletní nastavení je uvedeno v aktuální měřicí metodě použité přístrojové sestavy. 5.3.3 Měření Před analýzou se zkontroluje aktuální stav MS. Systém musí vykazovat typické odezvy na ionty vody a vzduchu (m/z 18, 28, 32) a kalibračního plynu. Prověří se citlivost GC-MS systému analýzou nejnižšího kalibračního bodu. Pokud je poměr signál k šumu u všech sledovaných kongenerů větší než 10, provede se kalibrace pro všechny sledované kongenery PBDE. Následně se do sekvence řadí reálné vzorky tak, aby před analýzou každého vzorku bylo do systému nastříknuto rozpouštědlo. 6 Kontrola kvality U všech stanovení se používá metoda izotopového ředění, přídavek izotopově značených vnitřních standardů se přidává do extraktu vzorku a výtěžnost postupu se průběžně kontroluje přídavkem nástřikového standardu do finálního extraktu. Do série vzorků se průběžně zařazuje analýza kontrolních vzorků referenčních materiálů a procesní slepý vzorek. Pro tyto kontrolní vzorky se vede a vyhodnocuje regulační diagram. 7 Výpočet a vyjádření výsledků Analyt se považuje za identifikovaný, pokud odchylka retenčního času daného kongeneru v chromatogramu vzorku a kalibračního standardu je menší než 1 % a pokud poměr produktových iontů daného kongeneru ve spektru vzorku je v rozmezí ± 50 % poměru ve spektru kalibračního standardu. Kvantifikace se provede pomocí kalibrační přímky metodou izotopového ředění, případně metodou vnitřního standardu. Kalibrační závislosti musí vykazovat minimální charakteristiky (RSD < 20 %, R 2 > 0,995).

Národní referenční laboratoř Strana 8 Výtěžnost vnitřních standardů v každém vzorku se stanoví porovnáním hodnot vnitřního a nástřikového standardu získaných při kalibraci s těmito hodnotami získanými z extraktu vzorků. Vnitřní standardy by měly vykazovat výtěžnost minimálně 50 %. Výsledky se získají průměrem ze dvou paralelních stanovení. V případě výsledku pod mezí detekce LOD se uvede n.d.(nedetekováno), v intervalu nad mezí detekce do meze stanovitelnosti se uvede <LOQ (mez stanovitelnosti). Pro hodnoty nad mezí stanovitelnosti se výsledek zaokrouhlí podle tabulky č.4. Tabulka 4. Zaokrouhlování a udávání výsledků Hladina reziduí (μg/kg) Zápis výsledků < 10 2 platné číslice > 10 3 platné číslice 8 Validační data Za podmínek daných tímto postupem lze pro jednotlivé kongenery PBDE dosáhnout meze detekce (0,04 0,08) µg/kg sušiny vzorku. Nastavená mez stanovitelnosti pro zápis výsledků RL = 0,1 µg/kg pro všechny stanovované kongenery. Opakovatelnost stanovení na různých koncentračních hladinách je uvedena v tabulce 5. Tabulka 5. Opakovatelnost Hladina reziduí (μg/kg) RSD (%) < 10 30 10 100 20 > 100 15