Provádění, možnosti a interpretace mikrobiologických vyšetření. Hemokultivace

Podobné dokumenty
Odběry vzorků u pacientů s podezřením na infekci krevního řečiště

VÍME VŠE O PREVENCI NEMOCNIČNÍ INFEKCÍ SPOJENÝCH S KATETRIZACÍ CENTRÁLNÍ ŽÍLY?

Mikrobiologické vyšetření moči

Poslední trendy krevních odběrů. Mgr. Tomáš Grim Mgr. Zuzana Kučerová

Odběr a transport biologického materiálu do mikrobiologické laboratoře. Jana Juránková OKM FN Brno

AKTUÁLNÍ DOPORUČENÍ MIKROBIOLOGICKÉ DIAGNOSTIKY A ANTIBIOTICKÉ LÉČBY INFEKČNÍ ENDOKARDITIDY 21ST COLOURS OF SEPSIS, OSTRAVA

Sepse, septický šok úloha mikrobiologa

RESPIRAČNÍ INFEKCE. Milan Kolář

Zkušenosti s diagnostikou sepse pomocí testu SeptiFast Test M GRADE. Zdeňka Doubková Klinická mikrobiologie a ATB centrum VFN Praha

Odběr a transport biologického materiálu do mikrobiologické laboratoře. Jana Juránková OKM FN Brno

G-2 Pokyny pro uchování a transport materiálu odebraného na mikrobiologická vyšetření

Dezinfekce rukou a přehled výskytu mikrobiální flory na rukou nemocničního personálu

Implementace laboratorní medicíny do systému vzdělávání na Univerzitě Palackého v Olomouci. reg. č.: CZ.1.07/2.2.00/

Lékařská mikrobiologie II

Diagnostická laboratoř Praha. Laboratorní příručka Příloha č.1. Přehled vyšetření prováděných v Laboratoři klinické mikrobiologie

Mikrobiologické vyšetření jako podklad pro racionální cílenou antibiotickou terapii. Význam správné indikace vyšetření a dodržování

Stafylokoky v současné době patří mezi důležité bakteriální patogeny. Např. u nozokomiálních infekcí krevního řečiště jsou spolu s enterokoky

Interpretace výsledků bakteriologických vyšetření

V lednici (2 8 C) Do 24 hod dní BK - 50 dnů. Uricult Při pokojové teplotě Do hod dní. Při pokojové teplotě

VÝVOJ REZISTENCE BAKTERIÁLNÍCH PATOGENŮ

Sepse a infekční endokarditida Michal Holub

LÉČBA VENTILÁTOROVÉ PNEUMONIE SPOLUPRÁCE INTENZIVISTY A MIKROBIOLOGA

M KR K O R BI B OLO L GA

Hygiena rukou a používání rukavic. MUDr. Bohdana Rezková, Ph.D. Ústav ochrany a podpory zdraví LF MU

Kontakt Telefon: Služba : ATB :

Indikace přípravku Zetamac v ordinaci praktického lékaře

Implementace laboratorní medicíny do systému vzdělávání na Univerzitě Palackého v Olomouci. reg. č.: CZ.1.07/2.2.00/

sepse = syndrom systémové zánětlivé odpovědi (SIRS) při infekci (SCCM/ACCP Consensus Conference 1992)

Kazuistika 3. Blahut L., Vágnerová I., Štosová T. Colours of Sepsis, Ostrava 2019 FAKULTNÍ NEMOCNICE OLOMOUC

LABORATORNÍ LISTY Vážené kolegyně a kolegové,

You created this PDF from an application that is not licensed to print to novapdf printer (

POH O L H E L D E U D U M

VÝVOJ REZISTENCE BAKTERIÁLNÍCH PATOGENŮ

SARS - Severe Acute Respiratory Syndrome (těžký akutní respirační syndrom).

kontaminovaných operačních výkonů, ale i u čistých operací, při kterých dochází k aplikaci

Hlavní indikace mikrobiologických vyšetření a interpretace jejich výsledků

Eva Krejčí. Antibiotické středisko, Zdravotní ústav se sídlem v Ostravě Lékařská fakulta Ostravské univerzity

Problematika dialyzovaných pacientů s MRSA

Antibiotická profylaxe v gynekologické operativě

PREGRADUÁLNÍ VZDĚLÁVÁNÍ V LÉKAŘSKÉ MIKROBIOLOGII

LABORATORNÍ PŘÍRUČKA MIKROBIOLOGICKÉ ODDĚLENÍ


Diagnostika sepse mikrobiologie

Infekce močových cest - mikrobiologická diagnostika

LABORATORNÍ PŘÍRUČKA

SeptiFast. rychlá detekce sepse. Olga Bálková Roche s.r.o., Diagnostics Division

Metamorfózy SIRS pohled mikrobiologa. Dana Němcová Oddělení klinické mikrobiologie PLM IKEM Ostrava

POH O L H E L D E U D U M

Urbánek K, Kolá M, ekanová L. Pharmacy World and Science. 2005, 27:

V. Adámková Klinická mikrobiologie a ATB centrum 1.LF UK a VFN, Praha. Colours of Sepsis; ATB STEWARDSHIP V INTENZIVNÍ MEDICÍNĚ, 30.1.

Stav rezistence bakteriálních patogenů v Karlovarském kraji.

ANTIBIOTICKÉ LÉČBY V INTENZIVNÍ MEDICÍNĚ

Standardní operační postup (SOP) CNRDD/P06/verze01. Testování sterility produktu

Respirační infekce a jejich původci. MUDr. Černohorská Lenka, Ph.D.

LABORATOŘE EUROMEDIC s.r.o. Oddělení klinické mikrobiologie a autovakcín

P13. Klinická mikrobiologie IV. Infekce ran a krevního řečiště

Stav rezistence bakteriálních patogenů v Karlovarském kraji za rok 2009

Příručka k odběru biologického materiálu pro vyšetření prováděná na OKM

Využití molekulárně-biologických postupů a multimarkerových strategií v intenzívní péči. Marek Protuš

Využití molekulárně-biologických postupů a multimarkerových strategií v intenzívní péči. Marek Protuš

M a s a r y kův onko l o g i c k ý ú s t a v. Ž l u t ý k o p e c 7, B r n o, ED.9. RNDr. Martina Mrkvicová, Ph.D. Schválil dne: 4.1.

Mikrobiologická diagnostika v intenzivní medicíně

Speciální odběrové soupravy krácená verze pro tisk. Odběrové soupravy pro odběr žilní krve

PCT kontrolovaná ATB terapie nosokomiální pneumonie ventilovaných nemocných

Alimentární intoxikace. MUDr. Miroslava Zavřelová ÚPL LF MU

ANALÝZA VÝSKYTU JEDNOTLIVÝCH BAKTERIÁLNÍCH DRUHŮ NA POVRCHU CENTRÁLNÍCH ŽILNÍCH KATÉTRŮ Autor: Mudroch T.

Pohled mikrobiologa, problematika antibiotické zátky

Výskyt a charakteristiky infekční endokarditidy v České republice. Incidence and characteristics of infective endocarditis in Czech Republic

INFEKČNÍ ENDOKARDITIDA. Jiří Beneš Klinika infekčních nemocí 3. LF UK Nemocnice Na Bulovce, Praha

Stav rezistence bakteriálních patogenů v Karlovarském kraji.

Protézová endokarditida -přehled problematiky. Petr Lupínek

Datum platnosti: Označení dokumentu: BLP01/LM Verze č.:6

Péče o intravaskulární katétry založená na důkazech. Zdeňka Knechtová

Laboratorní diagnostika v infektologii

Epidemiologicky závažné bakteriální infekce Vlastimil Jindrák

Ing. Růžena Seydlová. Základní ukazatele z chovu dojnic

ANTIBIOTICKÁ LÉČBA OFF-LABEL Z POHLEDU MIKROBIOLOGA. Milan Kolář Ústav mikrobiologie FNOL a LF UP v Olomouci

MIKROBIOLOGICKÁ LABORATOŘ NEMOCNICE ŠUMPERK

NA STOPĚ PACHATELE. Díl třináctý: Spolupráce při pátrání aneb Klinická mikrobiologie IV. Mikrobiologický ústav uvádí

NA STOPĚ PACHATELE. Díl třináctý: Spolupráce při pátrání aneb Klinická mikrobiologie IV. Mikrobiologický ústav uvádí

Provádění, možnosti a interpretace mikrobiologických vyšetření

Praktické aspekty očkování aspleniků a diabetiků

Pavel Suk ARK, FN u sv. Anny v Brně. Kongres ČSIM

Nozokomiální infekce na ICU. Jan Beroušek

INTERPRETACE VÝSLEDKŮ CITLIVOSTI NA ANTIBIOTIKA. Milan Kolář Ústav mikrobiologie Fakultní nemocnice a LF UP v Olomouci

P13. Klinická mikrobiologie IV. Infekce ran a krevního řečiště, biofilm na cévních katetrech

ZÁKLADY KLINICKÉ MIKROBIOLOGIE. M.Hanslianová OKM FN Brno

Fyziologická (přirozená) bakteriální mikroflóra dutiny ústní:

LÉČBA A ATB PROFYLAXE INFEKČNÍ ENDOKARDITIDY (nové doporučené postupy) Jiří Beneš Infekční klinika 3. LF UK Nemocnice Na Bulovce, Praha

Prevence infekcí v místě chirurgického výkonu. Lenka Fiedlerová

Implementace laboratorní medicíny do systému vzdělávání na Univerzitě Palackého v Olomouci. reg. č.: CZ.1.07/2.2.00/

EHK 544 Bakteriologická diagnostika-vyhodnocení

Epidemiologie spály. MUDr. František BEŇA

Nosokomiální nákazy. MUDr. Drahomíra Rottenbornová

Sledování nozokomiálních infekcí krevního řečiště v PKN v prvním pololetí roku 2009

Problematika epidemiologicky závažných bakteriálních kmenů ve FNUSA

Nové technologie v mikrobiologické diagnostice a jejich přínos pro pacienty v intenzivní péči

Bezpečnost práce v laboratoři. Ivana Vítková OKM, FN Brno

KLINICKÁ MIKROBIOLOGIE. MUDr. Pavel Čermák, CSc.

Transkript:

Provádění, možnosti a interpretace mikrobiologických vyšetření Hemokultivace Zpracoval: prim. RNDr. Roman Jirsa, Oddělení klinické mikrobiologie ONMB Oponoval: prim. MUDr. Ivan Herold, Anestesiologicko-resuscitační oddělení ONMB Indikace: Hemokultivace mají význam zejména u pacientů se známkami těžké sepse a sepse, u pacientů s infekčním procesem nejasné lokalizace a u infekčních procesů z nichž je nemožné či obtížné odebrat přímý materiál k mikrobiologickému vyšetření. Záchyt klíčového patogena hemokultivací je obecně nejvyšší u infekčních procesů lokalizovaných či komunikujících s krevním řešištěm a u infekcí spojených se vznikem septického stavu. Očekávaná průměrná záchytnost původce u vybraných infekčních procesů: Katetrové infekce krevního řečiště: >90% Endokarditida: - bakteriální: 85-95% - candidová: 50% Pyelonefritida: 40% Septická artritida: 10-20% Pneumonie: - G+ a G- neventilátorové: 30-40% - ventilátorové: 10% Abscesy:- hepatální, sleziny, perinefritický, itrarenální, plicní: 30-50 % - retroperitoneální: 25% - pankreatu: asi jen zřídka Poznámka: Většina abscesů je polymikrobiálních ale v hemokultuře se obvykle zachytí jen jedna či dvě bakterie. Předpokládaný patogenní podíl těchto bakterií je třeba zvážit doporučujeme případnou individuální mikrobiologickou konzultaci. Spontánní bakteriální peritonitida: 25% Osteomyelitida: - v důsledku hematogenního rozsevu: 50% - vertebrální: 20-50% - ostatní formy: Obvykle nízká záchytnost (zejména v chronické fázi) Systémové candidosy: 10-40% Hemokultivací lze prokázat infekce vyvolané většinou klinicky relavantních druhů bakterií, kvasinek a hub, včetně řady růstově náročných patogenů. Někteří vzácnější obtížně kultivovatelní patogenové jsou hemokultivací obtížně prokazatelní, nebo nebo je třeba trvání hemokultivace prodloužit, hemokultivační médium v laboratoratoři obohatit růstovými suplementy, případně zvolit jiný způsob odečtu hemokultivační lahvičky. Při suspekci na infekci vyvolanou méně běžnými a růstově náročnými mikroby upozorněte na žádance, či lépe konzultujte odběr dopředu s klinickým mikrobiologem. Hemokultivací nejsou z bakteriálních patogenů zachytitelná mmj. mykoplasmata, chlamydie, Legionella pneumophilla, Coxiella burnetti.

Odběr materiálu: 1. Kdy a kolik hemokultur odebrat Infekce vzniklé v průběhu hospitalizace, akutní a subakutní komunitní infekce Hemokultury je optimální odebrat na počátku vzestupu tělesné teploty, respektivě za prvních příznaků horečky (třesavka, zimnice). Provádějí se dva odběry ze dvou různých míst krevního řečistě (ze dvou různých vpichů) s odstupem 20 30 minut. Odběr třetí hemokultury v rámci jedné série odběrů bývá obvykle málo přínosný a nedoporučujeme jej rutinně provádět: Vhodnější je, nejsou-li odebrané hemokultury pozitivní do 24 hodin (hlásíme na oddělení) a známky infekce u pacienta přetrvávají, provést nový odběr následující den při nástupu další febrilní špičky. Chronický febrilní stav u komutiních pacientů (suspekce na chronickou endokaditidu, apod.) Celkem minimálně tři odběr, provést vždy jen jeden odběr denně. Na žádanku napsat, že se jedná o dlouhodobé febrilie (v laboratoři bude zpracováno odlišným způsobem). 2. Do jakých lahviček a jaké množství krve odebrat Na oddělení jsou distribuovány lahvičky pro aerobní a anaerobní kultivaci krve. Aerobní lahvičky jsou BactAlert FA, BactAlert SA. Anaerobní lahvičky jsou BactAlert FN, BactAlert SN.. Na základě soudobých literárních údajů a vlastní dlouhodobé analýzy výsledků hemokultivací v ONMB doporučujeme použít těchto lahviček následovně: 1. Při prvním odběru krve odebrat 16-20 mililitrů a rovnoměrně ji rozdělit do jedné aerobní a jedné anaerobní lahvičky. 2. Při druhém a dalších odběrech stačí odebrat pouze 8-10 ml krve a vstříknout ji pouze do aerobní lahvičky (BactAlertFA). To neplatí, jedná-li se o chronické komunitní febrilie v tomto případě vždy odebrat 16-20 mililitrů krve a rozdělit rovnoměrně do aerobní i anaerobní lahvičky. Ve výjimečných případech lze provést hemokultivaci z množství krve menšího než 8 ml, ne však méně než ze 3 ml odebrané krve (nepodkročitelné minimum). V takovémto případě se celé odebrané množství vstříkne pouze do aerobní lahvičky. U malých dětí případně u pacientů s obtížným odběrem lze použít pediatrické lahvičky BactAlert PF. Do těchto lahviček se dává optimálně 4 ml krve, lze kultivovat i menší množství. BactAlert PF neumožňují záchyt anaerobních bakterií. Obecně platí, že pravděpodobnost záchybu mikroba se signifikantně snižuje s množstvím odebrané krve. Odběr u pacientů s probíhající antibiotickou terapií: Složení obsahu hemukultivačních lahviček částečně eliminuje účinek některých antibiotik, přesto však antibiotická terapie může vést k falešně negtivním výsledkům. Je-li u pacienta ATB terapie, doporučujeme provést odběr bezprostředně před podáním další dávky (minimální koncentrace antibiotika v krvi), bez ohledu na denní rozložení febrilních špiček. 3. Desinfekce místa venepunkce Vhodnými prostředky pro desinfekci místa venepunkce jsou např. jodofory, jodová tinktura a spitaderm.

Kvalitní desinfekce místa vpichu je často velmi důležitá pro interpretaci nálezu v hemokultuře. Pro účinnou desinfekci je klíčový čas, po který desinfekční látka působí, účinnost desinfekce je též výrazně ovlivněna smegmatickou vrstvou na pokožce. Lze proto doporučit postup, kdy se na pokožku nejprve nastříkne vrstva desinfekce, ta se vzápětí setře kouskem sterilní gázy (odstranění smegmatu), desinfekce se znovu nastříkne a nechá na pokožce zaschnout (vlastní desinfekce). Vhodnými prostředky pro desinfekci místa venepunkce jsou chlorhexidin, jodofory, jodová tinktura a polyalkoholové přípravky, případně jiné přpravky pro desinfekci rukou. Desinfekci je nutné nechat působit po dobu doporučenou výrobcem, resp. nechat ji zaschnout na pokožce. Teprve poté se provede bez další zbytečné prodlevy venepunkce. Odběr se provádí ve sterilních rukavicích po předchozí dezinfekci rukou. Po provedené desinfekci místa venepunkce je zcela nevhodné nahmatávat místo vpichu (žílu) riziko kontaminace odebrané hemokultury. Nevhodný postup při provádění desinfekce místa vpichu se projeví zvýšeným počtem kožních kontaminant v hemokulturách (S. epidermidis, Propionibacterium acnes, viridující streptokoky, sporulující mikrobi). Zvýšený výskyt gram-negativních nefermentujících tyček ve stěrech či samotných hemokulturách může upozornit na kontaminaci samotného desinfekčního roztoku, mýdel, apod. 4. Odběr u pacientů se zavedeným žilním katetrem: A. Pacienti bez podezření na katetrovou infekci krevního řečiště: Není-li u pacienta podezření na katetrovou infekci upřednostněte pokud možno periferní odběr krve (vpichem) před odběrem krve pomocí zavedeného katetru. Odběr hemokultur prostřednictvím zavedených katetrů bývá obecně zatížen větší četností výskytu kontaminujících bakterií. V případě, že je odběr přesto proveden prostřednictvím zavedeného katetru, je třeba nález interpretovat velmi opatrně zejména v případech, kdy je pozitivita hemokultury zaznamenána za více než 24 hodin po vložení do přístroje. B. Pacienti se suspektní katetrovou infekcí krevního řečiště: Katetrovou infekci krevního řečiště lze bez vynětí žilního katetru laboratorně odhladnout pomocí rozdílu v časech pozitivit párovaných odběrů z CŽK versus periferní krve: Párovaný odběr z katetru a periferie: Nejprve odeberte standardní množství krve z periferie a rozdělte ji rovnoměrně do aerobní a anaerobní lahvičky. Poté bez zbytečného prodlení odeberte stejné množství krve z katetru a rozvněž ji rovnoměrně rozdělte do aerobní a anaerobní lahvičky. Za 30 minut pak proveďte nepárovaný odběr hemokultury (z CŽK nebo periferie stačí pouze do aerobní lahvičky). Důležité je, aby množství krve v párovaných lahvičkách bylo zhruba stejné. Nemůžeteli například z periferie odebrat více než 10 ml krve, vstříkněte celé odebrané množství do aerobní lahvičky a anaerobní lahvičku vůbec nepoužijte. Krev z katetru pak odeberte v takovém množství, aby jste do aerobní lahvičky mohli vstříknout stejné množství jako z perifirního odběru a zbytek krve odebrané z katetru vstříkněte do anaerobní lahvičky. Má-li pacient zaveden vícepramenný katetr, odeberte krev pokud možno ze středového lumen.

5. Očkování hemokultur Krytka hemokultury se sejme před odběrem hemokultury a na zátku se nanese desinfekce, která se nechá zaschnout. Vhodnou desinfekcí jsou např. polyalkoholy a spitaderm. K desinfekci víčka hemokultury nepoužívejte desinfekční prostředky obsahující jod! Zdrojem kontaminací mohou být částečky kůže zachycené v injekční jehle. Před očkováním hemokultury do lahvičky je proto vhodné vyměnit jehlu na injekční stříkačce. Vršek hemokultury ponechte volný pokud možno jej nepřelepujte isolepou ani ničím jiným. Štítek se jménem nalepte na libovolné místo lahvičky, nepřelepujte však čárové kody na štítku hemokultury!!! 6. Označení žádanky Na žádance by kromě standardních údajů měly být uvedeny zejména následující skutečnosti: a. jedná-li se o odběr z katetru nebo z periferie. Při párovaných odběrech katetrperiferie rovněž liší-li se některá lahvička množstvím vstříknuté krve od ostatních (o více než 2 ml). b. správná diagnosa a významné predispoziční faktory (onkologické diagnosy, diabetes, chronický alkoholismus, přítomnost cizích těles v organismu chlopenní náhrady, centrální žilní katetry či jiné venosní katetry, intraperitoneální dialýza apod.). c. Podezření na určitý typ infekce d.teplota ve febrilní špičce e. Přesný čas odběru hemokultury podstatným způsobem ovlivňuje zpravování v laboratoři a následně záchytnost bakterií!!! Všechny výše uvedené údaje mohou významným způsobem zpřesnit a urychlit identifikaci zachyceného mikroba. 7. Odběr kožních stěrů pro kontrolu kontaminace Stěr z místa venepunkce se provádí po zaschnutí desinfekce sterilní výtěrovkou, zásadně se neprovádí pokud desinfekce ještě nezaschla. Na stěrech vyznačte, ke kterému odběru v rámci dané série odběrů stěr patří. 8.Transport odebraných hemokultur do laboratoře Odebrané hemokultury je třeba dopravit do naší laboratoře co nejdříve, pokud možno do tří hodin po odebrání hemokultury. Je-li hemokultura odebrána mimo naší pracovní dobu, předejte odebrané hemokultury na Oddělení klinické biochemie (budou zde předinkubovány v termostatu a ráno předány na OKM zkrácení času kultivace). Na žádanku uveďte čas odběru hemokultury (s přesností na hodiny). Nemůžete-li hemokulturu předat na OKB k předinkubování, ponechte ji přes noc na oddělení při pokojové teplotě a zašlete do naší laboratoře druhý den.

Základní interpretace výsledku hemokultivace: Kdy lze hemokultivaci považovat za negativní? Naprostá většina infekcí krevního řečiště je pozitivních do 48 hodin, většinou ale již do 24 hodin. Naproti tomu někteří vzácní bakteriální původci a mykotické organismy mohou být zachyceny teprve prodlouženou kultivací. Pokud není pozitivita hemokultury hlášena laboratoří do 24 resp. 48 hodin od odběru, lze odběr považovat za vysoce pravděpodobně negativní a podle potřeby provést nové odběry. Rozlišení mezi infikujícími a kontaminujícími bakteriemi: Kožními či jinými kontaminantami bez klinického významu jsou téměř vždy mmj.: 1. Propionibacterium acnes 2. Staphylococcus epidermidis a ostatní koaguláza negativní stafylokoky, nemá-li pacient zaveden CŽK či jiný intravenostní vstup, nemá-li srdeční chlopenní náhradu, popřípadě není-li peritoneálně dialyzován. 3. Viridující streptokoky (s výjimkou streptokoků ze skupiny Milleri), nemá-li pacient zaveden CŽK (popřípadě jiný dlouhodobější intravenosní vstup), či není-li u něho podezření na bakteriální endokarditidu. 4. Sporulující mikrobi 5. Řada druhů environmentálních gram-negativních nefermentujících tyček, namá-li pacient zaveden CŽK (popřípadě jiný dlouhodobější intravenosní vstup), či není-li výrazně imunosuprimován, či nemá-li srdeční chlopenní náhradu. Kožními či jinými kontaminantami obvykle nejsou mmj.: Většina gram-negativních tyček, S. aureus, Enterokoky, Candida sp., streptokoky ze skupiny Milleri. Kožními či jinými kontamintantami prakticky nikdy nejsou mmj. : Streptococcus beta hemolytický skupiny A, další beta-hemolytické streptokoky, Streptococcus pneumoniae, Haemophilus influenzae, anaerobní bakterie. Další laboratorní kritérie pro odlišení infikujících bakterií od kožních kontaminací: 1. Infikující bakterie vyrůstají v hemokultuře v 95% případů do 48 hodin, nejčastěji ale do 24 hodin. Kontaminující bakterie vyrůstají obvykle po delší době než 24 hodin. 2. Infikující bakterie jsou častěji přítomny ve všech odběrech respektivě ve většině hemokultivačních lahviček z dané série odběrů. Kontaminující bakterie jsou častěji přítomny jen v jednom odběru respektivě v menšině lahviček odebraných v rámci série odběrů. 3. Bakterie zachycená v hemokultuře nebyla zachycena ve stěru před hemokulturou. Žádné z těchto kritérií není stoprocentně spolehlivé a jejich vypovídací hodnotu je třeba zvážit individuálně. Sporné případy konzultujte s námi. Diagnostika katetrové infekce krevního řečiště z odebraných hemokultur: Za předpokladu dodržení postupu pro párovaný odběr CŽK-periferie uvedeného výše lze z časového rozdílu mezi detekcí pozitivit párovaně odebraných hemokultur usoudit, jedná-li se o katetrový či jiný zdroj infekce.

V případě katetrových infekcí bývají hemokultrury odebrané z CŽK pozitivní o více než 2-3 hodiny dříve nežli párovaně odebrané hemokultury z periferie. V případě odběrů z několika pramenů vícepramenného katetru postačuje je-li toto časové kritérium splněno u odběru byť z jednoho jediného pramene. Má-li infekce jiný zdroj než katetr, bývá rozdíl mezi časy detekce pozitivity u párovaných hemokultivačních lahviček z CŽK versus periferie kratší než 2-3 hodiny. Toto kritérium nelze použít je-li hemokultura pozitivní za příliš dlouhou (více než 36-48 hodin), či příliš krátkou (méně než cca 5 hodin) dobu po vložení do přístroje. Je-li pozitivní pouze hemokultura odebraná z CŽK ale ne hemokultura odebraná z periferie, jedná se nejspíše o kontaminaci bakteriemi rostoucími v okolí katetru či kolonizujícími katetr v malém množství, a to zejména je-li pozitivita hemokultury detegována za déle než 24 hodin po vložení do přístroje (v případě kvasinek za déle než 48 hodin). Sporné případy doporučujeme konzultovat s klinickým mikrobiologem!!