Inovace studia molekulární a buněčné biologie



Podobné dokumenty
Inovace studia molekulární a buněčné biologie reg. č. CZ.1.07/2.2.00/

Sekvenování příští generace (Next Generation Sequencing, NGS)

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

Inovace studia molekulární a buněčné biologie reg. č. CZ.1.07/2.2.00/

Inovace studia molekulární a buněčné biologie reg. č. CZ.1.07/2.2.00/

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

Inovace studia molekulární a buněčné biologie reg. č. CZ.1.07/2.2.00/

Klonování DNA a fyzikální mapování genomu

Sekvenování nové generace. Radka Reifová

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

Výzkumné centrum genomiky a proteomiky. Ústav experimentální medicíny AV ČR, v.v.i.

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

Genové knihovny a analýza genomu

Inovace studia molekulární a buněčné biologie reg. č. CZ.1.07/2.2.00/

Sekvenování nové generace. Radka Reifová

Inovace studia molekulární a buněčné biologie reg. č. CZ.1.07/2.2.00/

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

Využití DNA markerů ve studiu fylogeneze rostlin

Genotypování: Využití ve šlechtění a určení identity odrůd

Využití rekombinantní DNA při studiu mikroorganismů

Využití metagenomiky při hodnocení sanace chlorovaných ethylenů in situ Výsledky pilotních testů

Základy molekulární biologie KBC/MBIOZ

V. letní škola metod molekulární biologie nukleových kyselin a genomiky Ústav morfologie, fyziologie a genetiky zvířat AF MENDELU

APLIKACE METAGENOMIKY PRO HODNOCENÍ PRŮBĚHU SANAČNÍHO ZÁSAHU NA LOKALITÁCH KONTAMINOVANÝCH CHLOROVANÝMI ETHYLÉNY

5. Sekvenování, přečtení genetické informace, éra genomiky.

Biotechnologický kurz. II. letní škola metod molekulární biologie nukleových kyselin a genomiky

Inovace studia molekulární a buněčné biologie reg. č. CZ.1.07/2.2.00/

Biotechnologický kurz. II. letní škola metod molekulární biologie nukleových kyselin a genomiky

Sekvenování DNA. stanovení pořadí nukleotidů v molekule DNA (primární struktury)

Biotechnologický kurz. III. letní škola metod molekulární biologie nukleových kyselin a genomiky

Metody molekulární biologie

PŘEHLED SEKVENAČNÍCH METOD

Osekvenované genomy. Pan troglodydes, Neandrtálec, 2010

Základy molekulární biologie KBC/MBIOZ

Základy molekulární biologie KBC/MBIOZ

Počítačové vyhledávání genů a funkčních oblastí na DNA

2. Z následujících tvrzení, týkajících se prokaryotické buňky, vyberte správné:

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

Sekvence. Genom. Základní informace. Výstupy z výukové jednotky

Struktura a analýza rostlinných genomů Jan Šafář

Mgr. Veronika Peňásová Laboratoř molekulární diagnostiky, OLG FN Brno Klinika dětské onkologie, FN Brno

Základy molekulární biologie KBC/MBIOZ

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

Exprese genetické informace

NGS analýza dat. kroužek, Alena Musilová

Molekulární základy dědičnosti. Ústřední dogma molekulární biologie Struktura DNA a RNA

Molekulární biotechnologie č.9. Cílená mutageneze a proteinové inženýrství

Inovace studia molekulární a buněčné biologie reg. č. CZ.1.07/2.2.00/

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

studium množství určitého transkriptu v daném vzorku a v množství dané molekuly mrna v dané buňce a v daném

Metody studia historie populací. Metody studia historie populací

DNA TECHNIKY IDENTIFIKACE ŽIVOČIŠNÝCH DRUHŮ V KRMIVU A POTRAVINÁCH. Michaela Nesvadbová

Na rozdíl od genomiky se funkční genomika zaměřuje na dynamické procesy, jako je transkripce, translace, interakce protein - protein.

Implementace laboratorní medicíny do systému vzdělávání na Univerzitě Palackého v Olomouci. reg. č.: CZ.1.07/2.2.00/

Příprava rekombinantních molekul pro diagnostické účely

EKO/MEM - Molekulární ekologie mikroorganizmů Klonování a sekvenování přírodní DNA základ pro fylogenetickou analýzu společenstva

Molekulární genetika

Centrum aplikované genomiky, Ústav dědičných metabolických poruch, 1.LFUK

Masivně paralelní sekvenování

Mendelova univerzita v Brně Agronomická fakulta Ústav biologie rostlin

Genetická diverzita masného skotu v ČR

Využití metod strojového učení v bioinformatice David Hoksza

MOLEKULÁRNĚ BIOLOGICKÉ METODY V ENVIRONMENTÁLNÍ MIKROBIOLOGII. Martina Nováková, VŠCHT Praha

Mgr. et Mgr. Lenka Falková. Laboratoř agrogenomiky. Ústav morfologie, fyziologie a genetiky zvířat Mendelova univerzita

Molekulární metody ve studiích kořenových systémů. Jiří Košnar, 2016

Sekvenování DNA. stanovení pořadí nukleotidů v molekule DNA (primární struktury)

Determinanty lokalizace nukleosomů

Exprese genetického kódu Centrální dogma molekulární biologie DNA RNA proteinu transkripce DNA mrna translace proteosyntéza

Charakterizace hybridních trav pomocí cytogenetických a molekulárních metod

Ivo Papoušek. Biologie 8, 2015/16

Mikrosatelity (STR, SSR, VNTR)

SEKVENAČNÍ METODY NOVÉ GENERACE: JEJICH PRINCIPY A POTENCIÁLNÍ VYUŢITÍ V GENETICE ČLOVĚKA, ETICKÉ ASPEKTY

Molecular Ecology J. Bryja, M. Macholán MU, P. Munclinger - UK

DIAGNOSTICKÝ KIT PRO DETEKCI MINIMÁLNÍ REZIDUÁLNÍ CHOROBY U KOLOREKTÁLNÍHO KARCINOMU

Bakteriální transpozony

Next Generation Sequencing v klinické genetice, Iveta Valášková,

Masivně paralelní sekvenování

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

MIKROBIOLOGIE V BIOTECHNOLOGII

6. Kde v DNA nalézáme rozdíly, zodpovědné za obrovskou diverzitu života?

Molekulárně biologické metody princip, popis, výstupy

Molekulární genetika zvířat 2. Antonín Stratil. Česká zemědělská univerzita v Praze

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

AUG STOP AAAA S S. eukaryontní gen v genomové DNA. promotor exon 1 exon 2 exon 3 exon 4. kódující oblast. introny

Potřebné genetické testy pro výzkum a jejich dostupnost, spolupráce s neurology Taťána Maříková. Parent projekt. Praha

Thomas Hunt Morgan ( ) americký genetik a embryolog pokusy s octomilkou (D. melanogaster)

Metody studia exprese mrna. jádro a genová exprese 2007

ve srovnání s eukaryoty (životnost v řádu hodin) u prokaryot kratší (životnost v řádu minut) na životnost / stabilitu molekuly mají vliv

Inovace studia molekulární a buněčné biologie reg. č. CZ.1.07/2.2.00/

Polymerázová řetězová reakce. Základní technika molekulární diagnostiky.

1. Definice a historie oboru molekulární medicína. 3. Základní laboratorní techniky v molekulární medicíně

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

Exprese genetické informace

STRATEGIE NEXT-GENERATION SEKVENOVÁNÍ PRO REALIZACI PROJEKTŮ MALÉHO AŽ STŘEDNÍHO ROZSAHU NÁVOD NA OBJEDNÁNÍ

DIAGNOSTICKÝ KIT PRO DETEKCI MINIMÁLNÍ REZIDUÁLNÍ CHOROBY U KARCINOMU PANKREATU

Referenční lidský genom. Rozdíly v genomové DNA v lidské populaci. Odchylky od referenčního genomu. Referenční lidský genom.

Analýza DNA. Co zjišťujeme u DNA DNA. PCR polymerase chain reaction. Princip PCR PRINCIP METODY PCR

Genetický polymorfismus

Mendelova genetika v příkladech. Genetické markery

Transkript:

Investice do rozvoje vzdělávání Inovace studia molekulární a buněčné biologie Tento projekt je spolufinancován Evropským sociálním fondem a státním rozpočtem České republiky.

Investice do rozvoje vzdělávání Genomika (KBB/GENOM) Tento projekt je spolufinancován Evropským sociálním fondem a státním rozpočtem České republiky.

Investice do rozvoje vzdělávání Sekvenování genomů Ing. Hana Šimková, CSc. Tento projekt je spolufinancován Evropským sociálním fondem a státním rozpočtem České republiky.

Investice do rozvoje vzdělávání Cíl přednášky - seznámení se strategiemi celogenomového sekvenování, s postupy používanými při celogenomovém sekvenování, anotacemi a sekvenačními technologiemi nové generace Klíčová slova - syntenie, metylační filtrace, whole-genome shotgun (WGS) sekvenování, hierarchické sekvenování, minimum tiling path, anotace, technologie 454, Illumina (Solexa), Solid Tento projekt je spolufinancován Evropským sociálním fondem a státním rozpočtem České republiky.

CELOGENOMOVÉ SEKVENAČNÍ PROJEKTY ČÍM UMOŽNĚNY? Ě - automatizovanými sekvenačními sytémy (fluorescenční barviva, kapiláry) vyšší kapacita, nižší objem reakcí, větší délka čtené é sekvence nižší náklady - vývojem programů pro uspořádávání sekvencí PROČ SEKVENOVAT? - objevování genů - detekce SNP a jejich využití pro mapování - komparativní genomika studium evoluce STRATEGIE SEKVENOVÁNÍ A) Redukční přístupy zaměřené na geny a) sekvenování s nižším pokrytím b) sekvenování ESTů c) sekvenování založené na C o t frakcionaci d) sekvenování založené na metylační filtraci B) Celogenomové náhodné sekvenování C) Hierarchické sekvenování

A) Redukční přístupy zaměřené na geny a) Sekvenování s nižším pokrytím (coverage) - sekvenování 3 ekvivalentů genomu (BACu) zachytí 95% všech sekvencí. Není vhodné pro velké genomy s hodně repeticemi. Může pomoci syntenie s již osekvenovanými genomy. (Syntenie = výskyt konzervovaného uspořádání genů v oblasti s rozsahem stovek kkb, pozorované pro genomy blízce příbuzných druhů) Speciální případ sekvenování konců BACů (BAC end sequencing) - dražší než běžné sekvenování z plasmidů, ale sekvence z obou konců BACu vytvářejí kostru umožňující poskládání celých genomů.

b) Sekvenování ESTů (koncových sekvencí z klonů cdna) levnější způsob ů získávání á í informací o genech, vhodné k odvozování molekulárních lá markerů z kódujících sekvencí a k potvrzení genů vytipovaných na základě sekvence zachytí jen cca 60% genů, jsou to jen zlomky genů, neobsahují regulační sekvence, obsahují poměrně dost chyb (reverzní transkriptáza není přesná) Struktura genu alternativní sestřih Různé cdna Jeden gen bývá reprezentován několika ESTy. Různé ESTy Reprezentativní hlavní transkript = RefSeq Pro mnoho organismů byly yyvytvořeny y databáze cdna o plné délce (full-length cdna) Člověk: www.h-invitational.jp Gibson a Muse, 2004

B) Celogenomové náhodné sekvenování (whole-genome shotgun, WGS) Celý genom se mechanicky rozbije na malé fragmenty obvykle tří velikostních frakcí (např. 2 kb, 10 kb, 50 kb), z kterých se vytvoří knihovny. Inzerty se sekvenují z obou stran získání íkáípárových konců. ů Sekvenuje se nadbytek sekvencí í( (pokrytí tí510 5-10x). Jednotlivé sekvence pospojovány pomocí počítače 90% automaticky, zbytek ručně. Menší knihovny k vlastnímu sekvenování, 50 kb knihovna k ověření správnosti sekvenčních kontigů a zaplnění mezer. Jednodušší, rychlejší a levnější. Celkově jsou potřeba jen tři knihovny. Náročné na hardware a software může dělat jen několik laboratoří na světě. Práce se hůř rozděluje mezi laboratoře. Neobejde se bez kvalitních fyzických a genetických map.

C) Hierarchické sekvenování (sekvenování klon po klonu, clone-by-clone sequencing, CBCS) ) Vychází z knihovny dlouhých inzertů (např. BAC, PAC) a fyzické mapy. Sekvenují se klony z MTP (minimum tiling path). Pro každý klon se konstruují 1-2 knihovny krátkých inzertů a provede se jejich shotgun sekvenování.

Institut National de la Recherche Agronomique Hierarchické sekvenování - vytvoření MTP - minimální sestava klonů, které vytvářejí kontinuální sekvenci podél celého chromozómu (program FPC) Fyzická mapa MTP Kompletní knihovna 15 X coverage 60,000000 80,000000 BAC klonůů 150-200 misek Klony z MTP 1.3 X coverage 5000 BAC klonů 15 misek Paux et al. 2008 Minimální překryv: 30 proužků (35 kb)

Hierarchické sekvenování Sestavení fyzické mapy, výběr minimální trasy pro sekvenování (MTP) Shotgun sekvenování vybraných BAC nebo jiných klonů, uspořádání sekvencí Spojení Kontigy sekvenovaných klonů obsahují mezery Přidání údajů z párových konců a cdna Gibson a Muse, 2004 Kostra (scaffold) z kontigu sekvencí

Hierarchické sekvenování 1-2 knihovny z každého BAC klonu v MTP pracnější práce se dá snadno rozdělit mezi laboratoře (nejlépe po chromozómech), méně problémů při uspořádávání, dá se přednostně zaměřit na genově bohaté euchromatinové oblasti

Postup celogenomového sekvenování Genomická DNA (WGS) BAC klony (CBCS) 1) Příprava knihoven malých inzertů z náhodně naštípané DNA po velikostní selekci - obvykle 2 velikostní kategorie (2 kb, 10 kb), pro WGS ještě knihovna 50kb. 2) Příprava DNA pro sekvenování založena na alkalické lyzi bakteriálních kultur (automatizováno) 3) Vlastní sekvenování z knihoven 2 kb (případně 10 kb). Sekvenační reakce běží z primerů komplementárních k části vektoru. Sekvenování z obou konců inzertu získání párových konců. 4) Zpracování sekvenačních dat: pro čtení sekvencí program phred převádí píky fluorescence na nukleotidy, ke každému udává míru spolehlivosti (pravděpodobnost chyby). Phred skóre nad 20 = spolehlivé. Očišťuje sekvenci od sekvence vektoru.

5) Uspořádání sekvencí (sestavování sekvenčních kontigů) program phrap přesah minimálně i ě 40bp s homologií nad 97%. Pro určení č íkonečné č sekvence se kombinuje 5-10 překrývajících se čtení odvodí se konsensuální sekvence (nahrazuje manuální opravování). K manuálnímu upravování a opravování editor consed k opravování špatných překryvů, dvojznačných nukleotidů, překlenování mezer (navrhne primery pro sekvenování do mezery). 6) Tvorba kostry (scaffolding) skupiny sestavených sekvencí (sekvenční kontigy) jsou spojovány a orientovány na základě údajů z párových konců (2 sekvence + vzdálenost mezi nimi) zejména z knihoven dlouhých inzertů. K ukotvování kostry na chromozóm se využívají genetické a fyzické markery, detekované v sestavách sekvencí, a syntenie. 7) Opravy sekvencí a zaplňování mezer využívá údajů z genomových projektů jiných druhů, ze sekvenování cdna, z párových konců 50 kb klonů. Pro kvalitní dokončenou sekvenci většinou ručně, hlavně v oblastech repetic. Zaplnění mezer většinou přesekvenováním těchto oblastí.

ANOTACE SEKVENCÍ 1. Identifikace genů - na základě homologie se známými genovými sekvencemi v databázích - ab binitioiti - na základě existence dlouhých ORF blízkosti transkripčních a translačních motivů a polya signálu konsensuální sekvence pro rozhraní exonu a intronu Programy pro bakterie a jednodušší eukaryota např. Genefinder - pro složitější eukaryota využívají statistický přístup Hidden Markow models (HMM) Kpřijetí sekvence mezi geny nutné ještě další důkazy: 1. identita s nějakou cdna v databázi 2. shoda s jedním nebo více ESTy ze stejného organismu 3. podobnost nukleotidové nebo AK sekvence se sekvencemi genů jiných organismů v databázích 4. proteinová struktura homologní s nějakou doménou v databázi 5. spojení s typickými promotorovými sekvencemi (TATA box), shluky vazebných míst pro transkripční faktory, u savců blízkost CpG ostrova 6. důkaz, že mutace v sekvenci vyvolává nějakou změnu fenotypu

2. Identifikace regulačních sekvencí - jde o konzervované nekódující sekvence Identifikace za pomoci komparativní genomiky. Metody: - phylogenetic footprinting např. porovnáním lidské a myší DNA (programy PipMaker, VISTA) - phylogenetic shadowing porovnáním několika blízce příbuzných druhů (program eshadow)

SEKVENAČNÍ TECHNOLOGIE NOVÉ GENERACE - cílem urychlení a zlevnění celogenomového sekvenování (resekvenování) předpoklad pro personalizovanou genomiku a farmakogenomiku The Race for the $1000 Genome The Race for the $1000 Genome (Science 311: 1544 1546, 2006)

Sekvenační technologie nové generace (= masivně paralelní sekvenování) - místo konstrukce knihoven v bakteriích knihovny amplifikované DNA Platforma 454 (Roche) Solexa (Illumina) SOLiD (ABI) Sekvenační princip Pyrosekvenování Polymerase-based Sekvenování založené sequencing by synthesis na ligaci Způsob amplifikace PCR v emulzi Můstková amplifikace PCR v emulzi Pár. konce/vzdálenost (Ano)/3 kb Ano/200 bp Ano/600 bp -10 kb Mb/běh 500 Mb 1300 Mb (2 600 Mb) 30 Gb (120 Gb) Čas/běh (pár. konce) 7,5 hod (10 hod) 4 dny 5 dnů Délka čtené sekvence 400 bp (1000 bp) 35 bp (70 bp) 50 bp (100 bp) Náklady na 1 Mb 84,39 $ (250 bp) 5,97 $ (35 bp) 5,81 $ (35 bp) Sangerovo sekvenování (ABI) 1700 $ /1Mb perspektiva Upraveno podle Mardis E. (Cell, 2008)

454 sekvenování 1. Příprava knihovny jednořetězcové DNA (sstdna) 2. PCR amplifikace v emulzi (empcr) 3. Sekvenování (pyrosekvenování) Při jednom běhu přístroje čten současně až 1 milión sekvencí.

Ad 1) Příprava knihovny sstdna 1. Rozbití genomické DNA nebulizací na fragmenty 300-800 bp, zatupení konců 2. Naligování adaptorů ů A a B na konce fragmentů 3. Fragmenty zachyceny na kuličky pokryté streptavidinem (adaptor B obsahuje biotin) 4. Po denaturaci je nebiotinylovaný řetězec uvolněn a použit jako jednořetězcová templátová DNA = sstdna library Roche

Ad 2) PCR v emulzi 1. SstDNA knihovna je navázána na agarózové kuličky s oligonukleotidy komplementárními k adaptérům. Každá kulička - max. 1 sstdna. 2. Přidány reagencie pro PCR 3. Přidán olej a vytvořena emulze každá kulička s DNA zachycena v kapičce reakčního roztoku obklopené olejem = mikroreaktor 4. PCR v mikroreaktorech 5. Rozbití mikroreaktorů a obohacení o kuličky s amplifikovanou DNA Roche

Ad 3) Sekvenování masivně paralelní pyrosekvenování na pikotitrační destičce z optických mikrovláken Pyrosekvenování - založeno na - cyklických reakcích (přidávání T, A, G, C, T, A, ) -uvolnění pyrofosfátu v případě, že se inkorporovala specifická báze (a). Následuje kaskáda reakcí, která na konci vede k emisi viditelného světla (b). Před dalším cyklem - degradace neinkorporovaného nukleotidu (c). (a) (b) (c) malé kuličky s enzymy Roche

454 sekvenování Tradiční sekvenování Purifikovaná genomická DNA Příprava jednořetězcové templátové DNA PCR v emulzi Obohacení o kuličky s produktem Nanesení na pikotitrační destičku Pyrosekvenování Konstrukce knihoven 3kb, 8kb & 40 kb Posbírání a kultivace klonů Izolace DNA Sekvenační reakce Přečištění sekvenačního produktu Detekce na sekvenátoru Analýza dat ~ 3 dny ~ 1 měsícě Department of Energy Joint Genome Institute - Prochlorococcus marinus