Růst a vývoj rostlin - praktikum MB130C78



Podobné dokumenty
Růst a vývoj rostlin - praktikum MB130C78

Obrázky viz:

PROČ ROSTLINA KVETE Při opylení

Vladimír Vinter

Auxin - nejdéle a nejlépe známý fytohormon

"Učení nás bude více bavit aneb moderní výuka oboru lesnictví prostřednictvím ICT ". Oplození

BUNĚČNÁ STĚNA - struktura a role v rostlinné buňce

Název projektového úkolu: Řekni mi jak Jak vzniká klíček? Třída: VI. Název společného projektu: Jak dlouho trvá, než?

Název: POZOROVÁNÍ PLASTIDŮ,VAKUOL, BUNĚČNÉ STĚNY Autor: Paed.Dr.Ludmila Pipková

,,Škola nás baví CZ. 1.07/1.4.00/

VAKUOLY - voda v rostlinné buňce

BIOLOGIE BA

Základy mikroskopování

Arabidopsis thaliana huseníček rolní

Název školy: Gymnázium Jana Nerudy, škola hl. města Prahy

PRÁCE S MIKROSKOPEM Praktická příprava mikroskopického preparátu

Základy genetiky 2a. Přípravný kurz Komb.forma studia oboru Všeobecná sestra

Teoretický úvod: FOTOTROPISMUS. Praktikum fyziologie rostlin

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

4) Reprodukce rostlin

FYZIOLOGIE ROSTLIN Laboratorní práce č. 3

Autorem materiálu a všech jeho částí, není-li uvedeno jinak, je L. Sinkulová

Úloha 5 k zápočtu z přednášky B130P16 (praktické základy vědecké práce)

Základní pojmy a vztahy: Vlnová délka (λ): vzdálenost dvou nejbližších bodů vlnění kmitajících ve stejné fázi

ROSTLINNÉ ORGÁNY - KVĚT

Vitální barvení, rostlinná buňka, buněčné organely

4) Reprodukce rostlin

Zvyšování kvality výuky technických oborů

2) Reprodukce rostlin

BOTANIKA - 1.ročník. Krytosemenné rostliny (26)

7) Dormance a klíčení semen

Genetika zvířat - MENDELU

Rostlinná anatomie. generativní orgány, rozmnožování rostlin

LABORATORNÍ PRÁCE Č.

LABORATORNÍ PRÁCE KLUB PAMPELIŠKA

Inovace studia molekulární a buněčné biologie reg. č. CZ.1.07/2.2.00/

téma: Úvodní praktikum autor: Mgr. Michal Novák cíl praktika: Seznámit žáky s náplní praktika doba trvání: 2 místo: odborná učebna biologie

Vznik dřeva přednáška

Semenné sady systém reprodukce a efektivita

Růst a vývoj rostlin - praktikum

Růst a vývoj rostlin - praktikum

Rozvoj vzdělávání žáků karvinských základních škol v oblasti cizích jazyků Registrační číslo projektu: CZ.1.07/1.1.07/

Struktura a vývoj embrya krytosemenných rostlin

3) Růst a vývoj. a) Embryogeneze a cytokineze b) Meristém a vývoj rostliny c) Vývoj listů a kořenů KFZR 1

Název: VNITŘNÍ STAVBA KOŘENE

Anatomie a morfologie rostlin - květ

Název: VNITŘNÍ STAVBA KVĚTU

LABORATORNÍ CVIČENÍ Z BIOLOGIE. Téma: STAVBA A FUNKCE MIKROSKOPU, PŘÍPRAVA DOČASNÝCH PREPARÁTŮ

Autorem materiálu a všech jeho částí, není-li uvedeno jinak, je L. Sinkulová

Anotace: Materiál je určen k výuce přírodopisu v 7. ročníku ZŠ. Seznamuje žáky se růstem a rozmnožováním kvetoucích rostlin. Materiál je plně funkční

Cyklus uhlíku: Aktivita Pěstujte rostliny. Protokoly experimentů pilotní školní rok 2007/2008

ROSTLINNÉ ORGÁNY KVĚT, PYLOVÁ ZRNA

Vytvořilo Oddělení lékařské genetiky FN Brno

Nauka o dědičnosti a proměnlivosti

TEORETICKÁ ČÁST test. V otázkách s volbou odpovědi je jen jedna odpověď správná.

Generativní orgány rostlin I.

2) Reprodukce rostlin

Propojení výuky oborů Molekulární a buněčné biologie a Ochrany a tvorby životního prostředí. Reg. č.: CZ.1.07/2.2.00/

Mendelistická genetika

ROSTLINNÁ PLETIVA I. Tělo cévnatých rostlin (kormus) je rozdělené strukturně ifunkčně na orgány: kořen, stonek a list.

Krytosemenné rostliny

Růst a vývoj rostlin - praktikum MB130C78

Počet chromosomů v buňkách. Genom

Bakalářské práce. Magisterské práce. PhD práce

Genetika mnohobuněčných organismů

ROSTLINY. Anotace: Materiál je určen k výuce přírodovědy ve 4. ročníku ZŠ. Seznamuje žáky se základními znaky, stavbou a dělením rostlin.

Sešit pro laboratorní práci z biologie

Základní genetické pojmy

Pohlavní rozmnožování. Gametogeneze u rostlin a živočichů.

Seznam obrázků z pracovních listů a námětů na laboratorní cvičení

Krytosemenné rostliny pletiva, asimilační barviva (laboratorní práce)

Krytosemenné rostliny pokožka listu, chlupy rostlin (laboratorní práce)

Inovace výuky - Přírodovědný seminář. Pokusy s vejci. Přs / 31, 32. vejce, skořápka, papírová blána, žloutek, bílek, uhličitan vápenatý

Rostlinná pletiva podle tvaru buněk a síly buněčné stěny Úvod - Doplňte chybějící místa v textu:

Rostlinná pletiva BIOLOGIE

Laboratoř růstových regulátorů Miroslav Strnad. ové kultury. Olomouc. Univerzita Palackého & Ústav experimentální botaniky AV CR

Bakalářské práce. Magisterské práce. PhD práce

Otázka 22 Rozmnožování rostlin

MECHOROSTY (BRYOPHYTA)

KAPRAĎOROSTY. pracovní list

Název: ŘASY Autor: PaedDr. Ludmila Pipková

Jehličnany (laboratorní práce)

Název práce: Rostlinná buňka a látky v ní obsažené. Odstavce Vzdělávací cíl, Pomůcky a Inovace viz následující strana

VY_32_INOVACE_ / Nitroděložní vývin člověka

BOBOVITÉ (FABACEAE) pracovní list

HVĚZDNICOVITÉ (ASTERACEAE) v širším pojetí

Název školy: Gymnázium Jana Nerudy, škola hl. města Prahy

Historie mikroskopu. 1 Přílohy. 1.1 Příloha 1: Prezentace k laboratorní práci. Mikroskop

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

Glosář - Cestina. Odchylka počtu chromozomů v jádře buňky od normy. Např. 45 nebo 47 chromozomů místo obvyklých 46. Příkladem je trizomie 21

Název: Kvasinky. Autor: RNDr. Lenka Simonianová. Název školy: Gymnázium Jana Nerudy, škola hl. města Prahy

Genetika pro začínající chovatele

PRAKTIKUM Z OBECNÉ GENETIKY

Chromosomy a karyotyp člověka

Stavba květu a odvození květního vzorce

Mikroskop, potřeby k mikroskopování (laboratorní práce)

ROSTLINNÉ ORGÁNY - LIST

Růst a vývoj rostlin

Transkript:

Růst a vývoj rostlin - praktikum MB130C78 Blok 4 Embryogeneze a dědičnost znaků Úlohy: 1. Embryogeneze - vývojové fáze zárodku Arabidopsis thaliana 2. Mutace postihující vývoj embrya u Arabidopsis thaliana 3. Markery embryonálního vývoje u Arabidopsis thaliana - lokalizace fluorescenčních proteinů v zárodku; křížení markerových linií 1

Teoretický úvod Embryonální vývoj Plodem řady brukvovitých včetně huseníčku rolního (Arabidopsis thaliana) je šešule. Otevřením jejích chlopní se odhalí semena nesoucí uvnitř zárodek nové rostliny (Obr. 1). Právě tyto zárodky (embrya) budou hlavním tématem dnešních úloh praktika. blizna čnělka rámeček přepážka semeno chlopně okraj chlopní stopka Obr. 1: Struktura plodu Arabidopsis thaliana. Nezralý plod před otevřením (A), zralý plod během otvírání zobrazený skenovací elektronovou mikroskopií (B) a příčný řez plodem (C). Převzato z Girin et al. (2009). Embryonální vývoj (Obr. 2) začíná oplozením vaječné buňky buňkou spermatickou, které splynou v zygotu. Tato protáhlá buňka se nesouměrně dělí. Vzniklé 2 buňky tvoří stádium nazývané jednobuněčné embryo, protože skoro celý zárodek (a posléze celá rostlina) vzniká z menší apikální buňky. Větší bazální buňka vytvoří pouze suspenzor spojující embryo se zbytkem semene a hypofýzu, z níž vznikne klidové centrum (základ meristému špičky kořene ) a kořenová čepička. Dělením buněk zárodku postupně dojde k vytvoření kulovitého (globular) embrya. V této fázi se z hypofýzy oddělí čočkovitá buňka (lens shaped cell), budoucí klidové centrum. V přechodném (transition) stádiu se začnou prodlužovat 2 protilehlé okraje horní části zárodku. Tento trend pokračuje dále v srdcovitém a torpédovitém embryu a vede ke vzniku děloh. Mezi dělohami se zakládá meristém vrcholu prýtu. Souběžně se diferencují další pletiva (Obr. 2). Embryonální vývoj je umožněn souhrou řady proteinů kódovaných v genomu A. thaliana. Nezastupitelnou úlohu hrají i fytohormony. Asi nejlépe prozkoumaná je funkce auxinu v embryonálním vývoji. Obrázek 3 znázorňuje rozmístění auxinu (zviditelněného pomocí markeru DR5:GFP) v zárodcích různého vývojového stupně. Poškození některých genů naruší vývoj rostliny natolik, že nedojde ani k vytvoření životaschopného embrya. Mayer et al. (1991) rozdělili následky vývojových mutací podle části zárodku, kterou postihnou na apikální (vrchol; např. mutace nazvaná cup-shaped cotyledon), centrální (fackel), bazální (kořenový pól; monopteros) a terminální - postihující oba póly embrya (gnom) (Obr. 4). 2

A B Obr. 2: Schematické zobrazení embryogeneze Arabidopsis thaliana. (A) Přehled stádií embryonálního vývoje. (B) Označení embryonálních pletiv. Upraveno z Laux et al. (2004). 3

Obr. 3: Embryogeneze Arabidopsis thaliana s vyznačením gradientů auxinu a lokalizací jeho přenašečů PIN1 a PIN7. Převzato z Bowman a Floyd (2008). Obr. 4: Mutace postihující vývoj embrya. Převzato z Mayer et al. (1991). Dědičná informace Pro kombinování dědičných znaků různých linií se používá křížení. Huseníček je samosprašný, pro přenos pylu z jiného rodiče je tedy třeba používat pouze květy (poupata) s nedospělými tyčinkami. Ostrou pinzetou se odstraní všechny části květu kromě pestíku. Blizna takto připraveného květu se následně opylí tyčinkou z druhého rodiče. Je vhodné zkontrolovat pod stereomikroskopem, že se na blizně opravdu zachytila pylová zrna. 4

Úlohy 1. Embryogeneze vývojové fáze zárodku Arabidopsis thaliana Cíl úlohy: Určit vývojové stádium embryí izolovaných z různě starých šešulí Arabidopsis thaliana. Princip úlohy: Tvar embrya se během vývoje mění prochází řadou stádií. Květy huseníčku dospívají postupně a k oplození všech vajíček daného květu dojde v krátkém časovém úseku. Pozice (pořadí) plodu na rostlině proto koreluje se vývojovým stádiem zárodků v semenech uvnitř daného plodu. Zadání: Izolujte embrya ve třech různých stádiích a pozorujte je pod mikroskopem. Zakreslete a nákres popište. Přiřaďte izolovaná embrya k vývojovým fázím dle předloženého schématu (Obr. 2). Zdůvodněte, proč jste se rozhodli pro uvedené stádium. Materiál a postup: Rostlinný materiál a potřebné vybavení: 1) Kvetoucí a plodící rostliny Arabidopsis thaliana pěstované při 20 C, 16h světlo/8h tma. 2) Pinzeta s tenkými hroty, nůžky, injekční jehly, oboustranná lepicí páska, plastová Petriho miska, podložní a krycí skla, plastové kapátko, popisovač, binokulární preparační stereomikroskop, mikroskop se záznamovým zařízením. Postup: 1) Nalezněte na rostlině huseníčku šešuli číslo 10. Počítejte od nejmladší ke starším (tedy shora dolů), plod č. 1 je nejmladší takový, kde pestík přerostl délku koruny květu. 2) Nůžkami (popř. ostrou pinzetou) oddělte vybraný plod od lodyhy tak, abyste způsobili minimální poranění stonku. 3) Šešuli umístěte na lepicí pásku přilepenou na Petriho misce švem vzhůru. 4) Ostrou injekční jehlou nařízněte oplodí z obou stran podél švu, uvolněné chlopně přitiskněte na lepicí pásku. 5) Pokuste se pinzetou uchopit placentu nesoucí semena a přeneste do kapky vody na podložním sklíčku. Jednotlivá semena nanoste tamtéž. 6) Pod stereomikroskopem otevřete vyvíjející se semena (dvěma jehlami nebo jehlou a pinzetou) a uvolněte embrya. Vaším cílem je získat alespoň 3 nepoškozené exempláře. 7) Pozorujte pod stereomikroskopem, popř. i pod mikroskopem, 1 typické embryo zakreslete do protokolu a popište. Protože je obvyklé odevzdat protokoly v elektronické podobě, sejměte nákres vhodným způsobem (fotoaparát, skener) a vložte do protokolu. 8) Pokuste se pojmenovat stádium, ve kterém se typické embryo nachází. Svůj názor zdůvodněte. 9) Postup opakujte s šešulí číslo 8 a 5. 5

2. Mutace postihující vývoj embrya u Arabidopsis thaliana Cíl úlohy: Zjistit, které z předložených rostlin nesou mutovanou alelu. Princip úlohy: Rostliny nesoucí mutantní alelu genu nezbytného pro úspěšný vývoj zárodku se projeví výskytem ( vyštěpováním ) embryí s abnormálním fenotypem. Z podílu takto poškozených zárodků na celkovém počtu lze odhadnout, jakým způsobem se mutantní znak dědí. Zadání: 6 Izolujte po 10 embryích ze 4 rostlin vyštěpující populace a pozorujte je pod mikroskopem. Vyfotografujte normální a mutantní embryo a obrázek popište (zdůrazněte rozdíly). Uveďte počet morfologicky normálních a mutantních zárodků pro každou rostlinu. Které rostliny nesou ve svém genomu danou mutaci? Odhadněte štěpný poměr a s jeho pomocí i povahu dané mutace (dominantní či recesívní). Odpovězte na následující otázky, výpočty vysvětlete. Uvažujte obecně, pro teoretický průměrný případ. o Pokud z každé ze 4 rozdávaných rostlin náhodně vyberete 10 embryí, kolik embryí celkem ponese mutantní alelu (průměrně)? o Když 4 rostliny z populace, která byla v praktiku rozdávána, necháte dozrát a jejich semena vysejete, kolik nositelů mutantní alely najdete mezi rostlinkami ve stádiu 6 listů? Opět uvažujte průměrný případ a náhodný výběr 10 potomků od každé ze 4 rostlin. Materiál a postup: Rostlinný materiál a potřebné vybavení: 1) Kvetoucí a plodící rostliny Arabidopsis thaliana pěstované při 20 C, 16h světlo/8 h tma. Jedná se o potomstvo rostliny heterozygotní pro jednu z následujících mutací: gnom či cup shaped cotyledon2. 2) Pinzeta s tenkými hroty, nůžky, injekční jehly, oboustranná lepicí páska, plastová Petriho miska, podložní a krycí skla, plastové kapátko, popisovač, binokulární preparační stereomikroskop, mikroskop se záznamovým zařízením. Postup: 1) Z rostliny číslo 1 oddělte šešuli, která by podle vašich zkušeností z úlohy 1 měla obsahovat embrya minimálně ve stádiu pozdním srdcovitém. Pracujte vždy jen s jedním plodem, aby ostatní mezitím neschly. 2) Vypreparujte alespoň 10 zárodků. 3) Pozorujte pod stereomikroskopem a hledejte abnormality ve vývoji. Preparát předložte ke kontrole vedoucímu praktika. 4) Zapište si, kolik mutovaných embryí jste zaznamenali pro kterou rostlinu. 5) Pomocí světelného mikroskopu či binokulárního stereomikroskopu se záznamovým zařízením nasnímejte embryo postižené mutací a normální embryo. Uložte si obrázky pro použití v protokolu (stačí z jedné rostliny). 6) Opakujte postup s rostlinami číslo 2, 3 a 4 (popřípadě i dalšími) 7) Odpovězte na otázky ze zadání.

3. Markery embryonálního vývoje u Arabidopsis thaliana - lokalizace fluorescenčních proteinů v zárodku; křížení markerových linií Cíl úlohy: Zjistit, ve které části embrya lze pozorovat markerové proteiny u 2 různých linií. Křížením rostlin nesoucích dva různé fluorescenční markery získat potomstvo s oběma markery. Princip úlohy: Markerové linie využívají fluorescenční proteiny ke zviditelnění aktivity genů. Křížením takových linií vznikne potomstvo, které umožní sledovat aktivitu 2 různých genů v jedné rostlině. Pro úspěšné křížení je nezbytné zabránit samosprášení a přenést pyl z otcovské rostliny na bliznu rostliny mateřské. Zadání: Pomocí fluorescenčního mikroskopu pozorujte embrya z rostlin nesoucích fluorescenční markery. Zhotovte obrazový záznam. Popište, ve kterých pletivech/buňkách embrya je daný marker aktivní. Předložené rostliny zkřižte s cílem získat rostlinu nesoucí oba markery. Materiál a postup: Rostlinný materiál a potřebné vybavení: 1) 2 kvetoucí a plodící rostliny Arabidopsis thaliana pěstované při 20 C, 16h světlo/8h tma nesoucí každá jeden z fluorescenčních markerů. 2) Pinzeta s tenkými hroty, nůžky, injekční jehly, jednostranná a oboustranná lepicí páska, plastová Petriho miska, podložní a krycí skla, plastové kapátko, popisovač, binokulární preparační stereomikroskop, fluorescenční mikroskop se záznamovým zařízením. Postup: 1) Z každé rostliny oddělte šešuli, která by podle vašich zkušeností z úlohy 1 měla obsahovat embrya minimálně ve stádiu pozdním srdcovitém. 2) Vypreparujte aspoň 4 nepoškozené zárodky. 3) Pozorujte pod fluorescenčním mikroskopem a pořiďte obrazový záznam typického embrya. Ukažte vedoucímu praktika. 4) Popište, ve kterých pletivech či buňkách je fluorescenční protein přítomen (podle Obr. 2). 5) Na jedné z rostlin připravte alespoň 5 květů na křížení. Vyberte poupata, u kterých začíná prosvítat bílá koruna nebo co největší zcela uzavřená poupata. 6) Mladší poupata a starší květy a šešule na téže větvi odstraňte tak, abyste způsobili minimální poranění stonku. 7) Pinzetou odstraňte všechny květní části kromě pestíku. 8) Na větev nalepte kousek lepicí pásky s popisem křížení (stačí uvést otce) a vaším jménem. 9) Pinzetou oddělte tyčinku z plně otevřeného květu druhé rostliny. 10) Tyčinkou opylte připravené pestíky. 11) Pod stereomikroskopem zkontrolujte přítomnost pylu na blizně. V případě potřeby můžete opylování opakovat s dalšími tyčinkami. 7

Citovaná literatura: Bowman, J.L., and Floyd, S.K. (2008). Patterning and polarity in seed plant shoots. Annual Review of Plant Biology 59, 67-88. Girin, T., Sorefan, K., and Ostergaard, L. (2009). Meristematic sculpting in fruit development. Journal of Experimental Botany 60, 1493-1502. Laux, T., Wurschum, T., and Breuninger, H. (2004). Genetic regulation of embryonic pattern formation. Plant Cell 16, S190-S202. Mayer, U., Ruiz, R.A.T., Berleth, T., Misera, S., and Jurgens, G. (1991). Mutations affecting body organization in the Arabidopsis embryo. Nature 353, 402-407. Petrasek, J., and Friml, J. (2009). Auxin transport routes in plant development. DEVELOPMENT 136, 2675-2688. 8