S filtračními papíry a membránou je nutno manipulovat pinzetou s tupým koncem.

Podobné dokumenty
SDS-PAGE elektroforéza

Western blotting. 10% APS 20,28 µl 40,56 µl 81,12 µl 20,28 µl 40,56 µl 81,12 µl

Inkubace enzymů se substráty

PROTOKOL WESTERN BLOT

Obsah Protein Gel Electrophoresis Kitu a jeho skladování

Proteinový fingerprinting vaječného bílku

Tkáňový homogenizátor MagNA Lyser od společnosti Roche

Mikrokalorimetrie. Izotermální titrační mikrokalorimetrie

Sraz studentů v 8:00 před laboratoří A5/108, s sebou plášť a přezutí PRINCIP. Polyakrylamidová gelová elektroforéza v přítomnosti SDS (SDS-PAGE)

Protokoly Transformace plasmidu do elektrokompetentních buněk BL21 Pracovní postup:

Praktický kurz Pokročilé biofyzikální přístupy v genomice a proteomice května 2010

SDS polyakrylamidová gelová elektroforéza (SDS PAGE)

Návod a protokol k praktickým cvičením z lékařské biochemie

Výzkumný ústav rostlinné výroby Praha Ruzyně. Metodika byla vypracována jako výstup výzkumného záměru MZe č Autor: Ing.

Hmotnostní detekce biologicky významných sloučenin pro biotechnologie část 3 - Provedení štěpení proteinů a následné analýzy,

Praktické cvičení: Izolace a purifikace rekombinantního proteinu

ANALYTICKÝ SYSTÉM PHOTOCHEM

Protokol 04. pšeničná bílkovina. masné výrobky. zkrácená verze

PROTEINOVÁ DENATURUJÍCÍ ELEKTROFORÉZA (SDS PAGE)

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU HPLC - OCHRATOXIN A

α-globin StripAssay Kat. číslo testů 2-8 C

Pufry, pufrační kapacita. Oxidoredukce, elektrodové děje.

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU LC-MS - FUMONISIN B 1 A B 2

List protokolu QIAsymphony SP

ANALÝZA MARKERŮ OXIDAČNÍHO POŠKOZENÍ DNA, PROTEINŮ A LIPIDŮ PO IN VITRO APLIKACI LÁTEK NA BUNĚČNÉ KULTURY HEL a A549

STANOVENÍ MYKOTOXINŮ V OBILOVINÁCH METODOU ELISA

CVD-T StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

Inovace bakalářského studijního oboru Aplikovaná chemie CZ.1.07/2.2.00/

1. Metodika. Protokol č. F1-4 Metodika: Srovnávací analýza efektivity přípravy rekombinantního proteinu ve fermentoru

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU KOBALTU METODOU ICP-MS

Braf V600E StripAssay

Určení koncentrace proteinu fluorescenční metodou v mikrotitračních destičkách

Izolace genomové DNA ze savčích buněk, stanovení koncentrace DNA pomocí absorpční spektrofotometrie

53. ročník 2016/2017

Inovace bakalářského studijního oboru Aplikovaná chemie CZ.1.07/2.2.00/

Elektroforéza v přítomnosti SDS SDS PAGE

LABORATOŘ OBORU I. Příprava diagnostického testu na bázi lateral flow immunoassay ÚSTAV ORGANICKÉ TECHNOLOGIE (111)

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU LC-MS - aflatoxin B1, B2, G1 a G2

Kras XL StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

Vybraná vyšetření u pacientů s diabetes mellitus

WESTERN BLOT. Velikost signálu je vyhodnocována srovnáním s naneseným proteinovým markerem, což je komerčně dostupná směs proteinů o známé velikosti.

Příloha č. 3 - nabídková tabulka části č. 4

NRAS StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

Ústřední komise Chemické olympiády. 53. ročník 2016/2017. KRAJSKÉ KOLO kategorie C. ŘEŠENÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (40 bodů) časová náročnost: 120 minut

Návrh laboratorní směrnice pro konvenční cytogenetickou analýzu karyotypu buněk kostní dřeně a/nebo periferní krve

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU VITAMÍNU D METODOU LC/MS

1. Příloha 1 Návod úlohy pro Pokročilé praktikum z biochemie I

Dovednosti/Schopnosti. - orientuje se v ČL, který vychází z Evropského lékopisu;

EGFR XL StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

1) Název SOP-CCT-CYANOTOX-ELISA Stanovení microcystinů s využitím ELISA

Pufry, pufrační kapacita. Oxidoredukce, elektrodové děje.

2) Připravte si 3 sady po šesti zkumavkách. Do všech zkumavek pipetujte 0.2 ml roztoku BAPNA o různé koncentraci podle tabulky.

COMET ASSAY (SINGLE CELL GEL ELECTROPHORESIS)

HbA1c. Axis - Shield. Společnost je zapsána v obchodním rejstříku Městského soudu v Praze, odd. C vložka 1299

Dle tohoto postupu se vyšetřují vzorky drobných masných výrobků, měkkých salámů a trvanlivých masných výrobků.

ELEKTROFORETICKÉ METODY

Inovace výuky chemie. ph a neutralizace. Ch 8/09

N Laboratoř hydrobiologie a mikrobiologie

Vybrané úlohy z toxikologie

Ústřední komise Chemické olympiády. 53. ročník 2016/2017. KRAJSKÉ KOLO kategorie C. ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (40 BODŮ) časová náročnost: 120 minut

Úloha č. 1 Odměřování objemů, ředění roztoků Strana 1. Úkol 1. Ředění roztoků. Teoretický úvod - viz návod

LABORATORNÍ PLASTY A POMŮCKY

GanglioCombi. se směsí enzymů značených IgG a IgM. anti-ganglioside protilátky ELISA (GA1, GM1, GM2, GD1a, GD1b a GQ1b)

Použití v laboratorních podmínkách

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv

BEZPEČNOSTNÍ LIST. NycoCard U-Albumin TD/Test Device. 1. POPIS PRODUKTU A VÝROBCE Název produktu: NycoCard U-Albumin TD/Test Device Aplikace:

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv Stanovení obsahu celkového a volného tryptofanu metodou HPLC

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU ARSENU METODOU ICP-MS

Bakteriální bioluminiscenční test. Stanovení účinnosti čištění odpadních vod pomocí bakteriálního bioluminiscenčního testu

5. BEZPEČNOSTNÍ OPATŘENÍ PŘI POUŽITÍ A MANIPULACI

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU SEMDURAMICINU METODOU HPLC

ORGANICKÁ CHEMIE Laboratorní práce č. 3

Objednací číslo Určení Třída IgG Substrát Formát EI G Parainfluenza viry typu 1. Ag-potažené mikrotitrační jamky

CHEMIE Pracovní list č.3 žákovská verze Téma: Acidobazická titrace Mgr. Lenka Horutová Student a konkurenceschopnost

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ AKTIVITY FYTÁZY

Protokol 04. pšeničná bílkovina. masné výrobky. plná verze

Evropský sociální fond Praha & EU: Investujeme do vaší budoucnosti ELEKTROMIGRAČNÍ METODY

Zuzana Zemanová, Kyra Michalová Centrum nádorové cytogenetiky, Ústav klinické biochemie a laboratorní diagnostiky VFN a 1.

Rapid-VIDITEST. H. pylori. (Jednokrokový kazetový test pro in vitro diagnostiku Helicobacter pylori ve stolici ) Návod k použití soupravy

NEUTRALIZAČNÍ ODMĚRNÁ ANALÝZA (TITRACE)

Inovace bakalářského studijního oboru Aplikovaná chemie CZ.1.07/2.2.00/ Výpočty z chemických vzorců

2) Připravte si 7 sad po pěti zkumavkách. Do všech zkumavek pipetujte 0.2 ml roztoku BAPNA o různé koncentraci podle tabulky.

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU HPLC - ZEARALENON

Braf 600/601 StripAssay

CA15-3 IRMA Souprava CA15-3 IRMA umožňuje přímé in-vitro kvantitativní stanovení s tumorem asociovaného antigenu CA15-3 v lidském séru

STANOVENÍ ANTIOXIDAČNÍ KAPACITY METODOU FOTOCHEMILUMINISCENCE NA PŘÍSTROJI PHOTOCHEM

Projekt Pospolu. Stanovení jílovitých podílů podle ČSN EN A1 Zkouška s methylenovou modří

53. ročník 2016/2017

IZOLACE DNA POMOCÍ CTAB PRO STANOVENÍ GMO METODOU PCR

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU NEPOVOLENÝCH DOPLŇKOVÝCH LÁTEK METODOU LC-MS

Cvičení ke kurzu Obecná ekotoxikologie. Úloha A - Stanovení ekotoxicity v testu klíčení rostlin

Sure-MeDIP I. with magnetic beads and MNase.

MagPurix Forensic DNA Extraction Kit

Progesteron ELISA test pro kvantitativní stanovení progesteronu v lidském séru nebo plazmě

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU VITAMÍNU D METODOU HPLC

BlueWell Intrinsic Factor IgG ELISA Cat.. IF01-96

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU DEKOCHINÁTU METODOU HPLC

Cvičení č. 2: Pasážování buněk. 1) Teoretický základ

1 Popis vzorku. 2 Detekční limit vyšetření. 3 Časová náročnost. 4 Zpracování vzorku. 4.1 Množství vzorku. 4.2 Odběr vzorků

Potenciometrické stanovení disociační konstanty

Transkript:

Western Blotting Příprava blotovacího sendviče... 1 Blotování... 2 Kontrola přenesení proteinů na membránu... 2 Blokování membrány... 2 Aplikace protilátek... 2 Vizualizace... 3 Vyvolání filmu... 4 Chemikálie a roztoky... 5 Poznámky... 7 Upozornění! Během práce používat nitrilové ochranné rukavice. Příprava blotovacího sendviče S filtračními papíry a membránou je nutno manipulovat pinzetou s tupým koncem. 1) Připravit 6 ks tlustých filtračních papírů (280 g/m 2 ) nebo 2 ks blotovacích papírů, blotovací membránu, 3 nádoby na pufry a blotovací přístroj. Filtrační papíry a membrána musí mít stejné rozměry jako gel. 2) Gel a membránu namočit zvlášť alespoň na 15 minut do blotovacího pufru. 3) První 3 filtrační papíry nebo 1 blotovací papír namočit do blotovacího pufru, poté je postupně naskládat na sebe do blotovací kazety. Každou vrstvu přejet válečkem. 4) Opatrně přenést blotovací membránu z blotovacího pufru do blotovací kazety tak, aby pod membránou nebyly vzduchové bubliny. Nesahat na povrch membrány. Nepoužívat váleček. 5) Pomocí zeleného nástroje přenést gel na blotovací membránu. Opatrně jej přejet válečkem. 6) Poslední 3 filtrační papíry nebo 1 blotovací papír namočit do blotovacího pufru a naskládat je do blotovací kazety na gel. Každou vrstvu přejet válečkem. 7) Přebytky blotovacího pufru v kazetě opatrně odsát buničinou. 8) Přiklopit sendvič v kazetě víkem a zajistit. Vložit kazetu do blotovacího přístroje. Rev. 2.1 Strana 1/8

Blotování 1) Vybrat List Bio-Rad 1 mini gel pro jeden gel v kazetě nebo 1 midi/2 mini gels pro dva gely v jedné kazetě Standard SD. 2) Vybrat Run a poté A:Run, případně B:Run dle pozice kazety. 3) Po ukončení blotování otevřít kazetu a pinzetou přenést membránu do nádobky tak, aby strana membrány, která se dotýkala gelu, byla nahoře. Membrána se nesmí nechat vyschnout! 4) Molekulový marker na membráně označit tužkou nebo propiskou (fix se vymyje). Kontrola přenesení proteinů na membránu 1) Do nádobky s membránou přidat roztok 0.1% Ponceau S (viz chemikálie a roztoky) a barvit do objevení proužků (cca 1 min). 2) Barvíci roztok slít zpět do zásobní lahve, membránu odbarvit 10% kyselinou octovou. 3) Opláchnout TBS-T. Blokování membrány 1) Slít TBS-T a přidat blokovací pufr. Na orbitální třepačce třepat na cca 80 rpm po dobu 90 minut. Aplikace protilátek 1) Blokovací pufr vrátit zpět do zásobní lahve a membránu 2 promýt TBS-T. 2) Přidat roztok primární protilátky (koncentrace je různá pro každou protilátku) a nechat přes noc na orbitální třepačce (80 rpm) v chladící místnosti. 3) Protilátku vrátit zpět do zásobní zkumavky, lze ji použít až 5, a uchovávat v mrazáku na -20 C. 4) Opláchnout membránu 3 TBS-T a poté 3 10 minut TBS-T na orbitální třepačce. 5) Přidat roztok sekundární protilátky (koncentrace je různá pro každou protilátku) a nechat 90 minut na orbitální třepačce při laboratorní teplotě. 6) Protilátku vrátit zpět do zásobní zkumavky, lze ji použít až 5, a uchovávat v mrazáku na -20 C. 7) Opláchnout membránu 3 TBS-T a poté 3 10 minut TBS-T na orbitální třepačce. Membránu nechat v TBS-T. Rev. 2.1 Strana 2/8

Vizualizace Krabici s fotofilmem otevřít pouze v temné komoře, jinak by došlo k jeho zničení. 1) Připravit tác: nádobku s membránou, nitrilové rukavice, pracovní karton potažený folií, pinzetu s tupým koncem, papírový ručník, detekční systém, mikrozkumavku nebo malou kádinku dle množství detekčního systému, pipetu se 2 špičkami, stopky, folii na membránu, osvitovou kazetu, nůžky, fotofilm, 2 prázdné nádobky na vývojku a ustalovač, 2 nádobky s ultračistou vodou, vývojka, ustalovač. 2) Zkontrolovat stav vývojky a ustalovače nesmí být výrazně žluté. Následující část probíhá v temné komoře při bezpečném světle (safe light). 3) Namíchat detekční systém roztok A a roztok B v poměru 1:1. Celkový objem v ml vypočítat dle rovnice: šířka membrány výška membrány 0.05. Pro každý roztok použít čistou špičku! Promíchá se pipetou. 4) Membránu rohem okapat na papírový ručník a přenést na pracovní karton. 5) Celý objem detekčního systému nanést kapáním na membránu. Nechat inkubovat nejméně 5 minut. 6) Během inkubace připravit fotofilm. S filmem manipulovat pouze v suchých rukavicích v temné místnosti. Opatrně vyklepnout jeden list z krabice. Ustřihnout potřebnou část fotofilmu, ustřihnout jeden roh pro označení a zavřít jej do osvitové kazety. Zbytek fotofilmu vrátit do krabice a důkladně uzavřít. Při zhasnutém bezpěčném světle lze zjistit intenzitu svitu detekčního systému na membráně. 7) Inkubovanou membránu nechat rohem okapat na papírový ručník a vložit ji do folie tak, aby mezi membránou a folií nezůstaly vzduchové bubliny. Folii s membránou vložit do osvitové kazety, na ni položit fotofilm (již s ním nehýbat) a osvitovou kazetu zavřít. 8) Fotofilm exponovat po potřebnou dobu. Liší se dle intenzity svitu detekčního systému od 1 do 10 minut. Rev. 2.1 Strana 3/8

Vyvolání filmu 1) Do prázdných nádobek již během expozice fotofilmu přelít vývojku a ustalovač. 2) Osvícený film přenést do vývojky a klepat do objevení proužků. Poté jej pinzetou přenést do nádobky s ultračistou vodou. 3) Opláchnutý fotofilm přenést do nádobky s ustalovačem a klepat do odbarvení pozadí. Poté opět opláchnout v ultračisté vodě. 4) Fotofilm nechat okapat a oschnout postavený na hranu na papírovém ručníku nebo za roh pověšený na šňůru. Rev. 2.1 Strana 4/8

Chemikálie a roztoky 10 zásobní TBS pufr 24 g Tris 88 g NaCl Přidat 900 ml ultračisté vody, upravit ph na 7.6 pomocí HCl. Doplnit do 1000 ml ultračistou vodou. Uchovávat při laboratorní teplotě. 1 TBS-T pufr 100 ml 10 zásobního TBS pufru doplnit do 1000 ml ultračistou vodou. Přidat 1.0 ml TWEEN 20. Uchovávat při laboratorní teplotě. 10% kyselina octová 10.1 ml kyseliny octové doplnit do 100 ml ultračistou vodou. Blotovací pufr 25mM Tris 1.51 g 192mM glycin 7.21 g 20% methanol 100 ml Doplnit ultračistou vodou do 500 ml. ph se neupravuje (cca 8.2). Uchovávat v lednici. Barvící roztok 0.1% Ponceau S 0.1 g Ponceau S rozpustit ve 100 ml ultračisté vody. Uchovávat při laboratorní teplotě. 5% Blokovací pufr 5 g blokovacího mléka nebo 5 g BSA (bovine serum albumin) rozpustit ve 100 ml TBS-T. 3% Blokovací pufr 3 g blokovacího mléka nebo 3 g BSA (bovine serum albumin) rozpustit ve 100 ml TBS-T. Vývojka 6 ml Fomadonu LQN smíchat s 84 ml ultračisté vody. Ustalovač 15 ml Fomafixu smíchat se 75 ml ultračisté vody. Rev. 2.1 Strana 5/8

Detekční systém (připraví se v čas potřeby) Amersham ECL Prime Western Blotting Detection Reagent Roztok A smíchat s roztokem B v poměru 1:1. Celkový objem vypočítat dle rovnice: Množství v ml = šířka membrány výška membrána 0.05 Rev. 2.1 Strana 6/8

Poznámky Rev. 2.1 Strana 7/8

Publikace je spolufinancovaná Evropským sociálním fondem a státním rozpočtem České republiky. Registrační číslo projektu: CZ.1.07/2.3.00/20.0235, název projektu: TEAB. Rev. 2.1 Strana 8/8