ODLIŠENÍ ODRŮD PŠENICE OBECNÉ TRITICUM AESTIVUM L. METODOU RAPD

Podobné dokumenty
DISTINGUISHING OF THE SPRING AND WINTER GROWTH HABITS OF COMMON WHEAT VARIETIES (TRITICUM AESTIVUM L.) BY DETECTION OF GENE VRN1

CHARACTERISTICS OF WHEAT GENOTYPES USING HIGH MOLECULAR WEIGHT SUBUNITS GLUTENIN ALLELE

Mendelova genetika v příkladech. Genetické markery

CLP ANALYSIS OF MOLECULAR MARKERS DIGITAL IMAGE ANALYSIS OF ELECTROPHOEROGRAMS CZECH VERSION

DIAGNOSTICKÝ KIT PRO DETEKCI MINIMÁLNÍ REZIDUÁLNÍ CHOROBY U KOLOREKTÁLNÍHO KARCINOMU

DIAGNOSTICKÝ KIT PRO DETEKCI MINIMÁLNÍ REZIDUÁLNÍ CHOROBY U KARCINOMU PANKREATU

Využití DNA markerů ve studiu fylogeneze rostlin

Genetické markery, markery DNA

DNA TECHNIKY IDENTIFIKACE ŽIVOČIŠNÝCH DRUHŮ V KRMIVU A POTRAVINÁCH. Michaela Nesvadbová

DIAGNOSTICKÝ KIT PRO DETEKCI MINIMÁLNÍ REZIUDÁLNÍ CHOROBY MRD EGFR

USING MOLECULAR MARKERS FOR GENETIC DIVERSITY TESTING IN SPRING BARLEY WITH DIFFERENT SENSITIVITY AGAINST FHB

PCR IN DETECTION OF FUNGAL CONTAMINATIONS IN POWDERED PEPPER

Kvantitativní detekce houbových patogenů v rostlinných pletivech s využitím metod molekulární biologie

USING OF AUTOMATED DNA SEQUENCING FOR PORCINE CANDIDATE GENES POLYMORFISMS DETECTION

UTILIZATION OF WHEAT AND RYE SSR MARKERS IN TRITICALE VYUŽITÍ SSR MARKERŮ PŠENICE A ŽITA U TRITIKALE

Genetické markery - princip a využití

Fisher M. & al. (2000): RAPD variation among and within small and large populations of the rare clonal plant Ranunculus reptans (Ranunculaceae).

ALLELE FREQUENCY OF KIT GENE ASSOCIATED WITH TOBIANO SPOTTING PATTERN IN PAINT HORSE BREED

Mendelova univerzita v Brně Agronomická fakulta Ústav biologie rostlin

Bi5130 Základy práce s lidskou adna

USE OF SSR MARKERS TO IMPROVE TECHNOLOGICAL QUALITY IN MALTING BARLEY VYUŽITÍ SSR MARKERŮ PRO ZLEPŠENÍ TECHNOLOGICKÉ JAKOSTI SLADOVNICKÉHO JEČMENE

CYCLER CHECK. Test pro validaci teplotní uniformity cyklérů. Připraveno k použití, prealiquotováno. REF 7104 (10 testů) REF (4 testy)

Kameyama Y. et al. (2001): Patterns and levels of gene flow in Rhododendron metternichii var. hondoense revealed by microsatellite analysis.

POSOUZENÍ PRAKTICKÉ VYUŽITELNOSTI VYBRANÝCH DNA MARKERŮ REZISTENCE BRAMBORU VŮČI PHYTOPHTHORA INFESTANS

Genetický polymorfismus jako nástroj identifikace osob v kriminalistické a soudnělékařské. doc. RNDr. Ivan Mazura, CSc.

STATISTICKÉ HODNOCENÍ MARKEROVACÍ SCHOPNOSTI PCR MARKERU REZISTENCE JABLONÍ VŮČI STRUPOVITOSTI

TECHNICKÁ SPECIFIKACE Vybavení genetické laboratoře pro projekt EXTEMIT-K část B

Mendelova univerzita v Brně Agronomická fakulta Ústav biologie rostlin

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

STUDIUM SEGREGACE MAJORGENŮ ŘÍDÍCÍCH REZISTENCI JABLONÍ VŮČI PADLÍ JABLOŇOVÉMU A STRUPOVITOSTI

Optimalizace metody PCR pro její využití na vzorky KONTAMINOVANÝCH PITNÝCH VOD

Tento projekt je spolufinancován Evropským sociálním fondem a Státním rozpočtem ČR InoBio CZ.1.07/2.2.00/

MOLEKULÁRNÍ BIOLOGIE. 2. Polymerázová řetězová reakce (PCR)

Polymerázová řetězová reakce

Seminář izolačních technologií

Tento projekt je spolufinancován Evropským sociálním fondem a Státním rozpočtem ČR InoBio CZ.1.07/2.2.00/

DETEKCE A IDENTIFIKACE FYTOPATOGENNÍCH BAKTERIÍ METODOU PCR-RFLP

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv

Návod k použití souprav. Wipe test. Kontaminační kontrola. Testovací souprava pro kontrolu kontaminace využívající molekulárně - biologické metody

Mgr. et Mgr. Lenka Falková. Laboratoř agrogenomiky. Ústav morfologie, fyziologie a genetiky zvířat Mendelova univerzita

INTRODUCING OF SNAPSHOT METHOD FOR POLYMORPHISM DETECTION ZAVEDENÍ SNAPSHOT METODIKY PRO DETEKCI POLYMORFISMŮ

POLYMERÁZOVÁ ŘETĚZOVÁ REAKCE (PCR)

Určeno pro obecné laboratorní užití. Není určeno pro použití v diagnostických postupech. POUZE PRO POUŽITÍ IN VITRO.

Polymerázová řetězová reakce. Základní technika molekulární diagnostiky.

Implementace laboratorní medicíny do systému vzdělávání na Univerzitě Palackého v Olomouci. reg. č.: CZ.1.07/2.2.00/

Evropský sociální fond Praha & EU: Investujeme do vaší budoucnosti NUKLEOVÉ KYSELINY

Genetická diverzita masného skotu v ČR

Vyhledávání a charakteristika genů zodpovědných za modré zabarvení obilky pšenice seté (Triticum aestivum L.)

MOLEKULÁRNĚ BIOLOGICKÉ METODY V ENVIRONMENTÁLNÍ MIKROBIOLOGII. Martina Nováková, VŠCHT Praha

Kdo jsme. Centrum strukturní a funkční genomiky rostlin Ústavu experimentální botaniky AV ČR, v.v.i.

NÁVOD K POUŽITÍ PRO HER2 DNA QUANTIFICATION KIT

Návod k použití souprav. Wipe test. Elektronická verze Návodu k použití je ke stažení na Kontaminační kontrola

ISSR (Inter simple sequence repeat) Jiří Košnar

Využití molekulárních markerů v systematice a populační biologii rostlin. 12. Shrnutí,

Využití analýzy celkových buněčných proteinů pomocí SDS-PAGE při charakterizaci fluorescentních pseudomonád izolovaných ze speleotém

Popis výsledku QC1156/01/2004 Identifikace projektu:

Inovace studia molekulární a buněčné biologie reg. č. CZ.1.07/2.2.00/

Yi TPMT. Diagnostická souprava. Návod k použití. Haasova 27 Brno Česká republika. tel.:

UTILIZATION OF DNA MICROSATELLITES USED IN PARENTITY PANEL IN EVALUATION OF DIVERZITY AND DISTANCES BETWEEN THE BREEDS OF PIGS IN CZECH REPUBLIC

Selekce jabloní v rané vývojové fázi s využitím molekulárních markerů

Uživatelská příručka

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

EGFR XL StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

VÝVOJ DNA ČIPŮ PRO DETEKCI GENETICKY MODIFIKOVANÝCH ORGANISMŮ

Charakterizace hybridních trav pomocí cytogenetických a molekulárních metod

Jaroslava Ovesná, Jan Hodek, Lucie Pavlátová,

DETEKCE VNITŘNÍHO GENU RÝŽE FOSFOLIPÁZY D POMOCÍ PCR

VARIABILITY OF THE PORCINE MYOD1 GENE VARIABILITA GENU MYOD1 U PRASAT

ÚVOD. Klíčová slova: smrk ztepilý, RAPD, somatická embryogeneze, polymorfizmus Key words: Norway spruce, RAPD, somatic embryogenesis, polymorphism

Genetický polymorfismus

C V C. Návod k použití pro Biofortuna SSPGo TM HLA No Template Control Kit BF Revize 2. Červenec 2014

α-globin StripAssay Kat. číslo testů 2-8 C

Metody studia historie populací. Metody studia historie populací

Braf V600E StripAssay

Projekt FR-TI2/075 MPO příklad spolupráce farmaceutů s komerčním sektorem. Milan Bartoš. Forum veterinarium, Brno 2010

Jan Hodek, Jaroslava Ovesná, Lucie Pavlátová. METODIKA DETEKCE GENETICKY MODIFIKOVANÉ PAPÁJI LINIÍ 55-1 a 63-1 METODIKA PRO PRAXI

Co zjišťujeme u DNA ACGGTCGACTGCGATGAACTCCC ACGGTCGACTGCGATCAACTCCC ACGGTCGACTGCGATTTGAACTCCC

DETECTION OF SNP IN MSTN GENE OF GASCONNE CATTLE BREED DETEKCE SNP V GENU MSTN U PLEMENE GASCONNE

Metody analýzy DNA využívané ve Výzkumném a šlechtitelském ústavu Holovousy RNDr. Jana Čmejlová, Ph.D.

MagPurix Blood DNA Extraction Kit 200

Vykazování pro zdravotní pojišťovny a zákonné požadavky pro genetická vyšetření

2 Inkompatibilita v systému Rhesus. Upraveno z A.D.A.M.'s health encyclopedia

Polymerázová řetězová reakce (PCR) Molekulární biologie v hygieně potravin 4, 2013/14, Ivo Papoušek

Mendelova univerzita v Brně Agronomická fakulta Ústav biologie rostlin

V. letní škola metod molekulární biologie nukleových kyselin a genomiky Ústav morfologie, fyziologie a genetiky zvířat AF MENDELU

LABORATORNÍ PŘÍRUČKA. Laboratoř HLA systému a PCR diagnostiky

Analýza DNA. Co zjišťujeme u DNA DNA. PCR polymerase chain reaction. Princip PCR PRINCIP METODY PCR

Braf 600/601 StripAssay

TESTOVÁNÍ GMO Praktikum fyziologie rostlin

Pokračování kultivačních metod

Konečná zpráva hodnocení různých způsobů přípravy vzorků pro AMPLICOR HPV test firmy Roche

VLASTNOSTI OSIVA JARNÍHO MÁKU Z PODZIMNÍCH A JARNÍCH VÝSEVŮ

Biofyzikální ústav AV ČR, Laboratoř molekulární epigenetiky, Královopolská 135, Brno, tel.: ,

Využití molekulárních markerů v systematice a populační biologii rostlin. 10. Další metody

IDENTIFIKACE A TYPIZACE STAFYLOKOKŮ METODOU (GTG) 5 -PCR

DETECTION OF FUNGAL CONTAMINATIONS IN POWDERED PEPPER USING MOLECULAR BIOLOGICAL METHODS

Jihočeská univerzita v Českých Budějovicích Zemědělská fakulta

Hybridizace nukleových kyselin

Analýza DNA. Co zjišťujeme u DNA

PhD. České Budějovice

Transkript:

ODLIŠENÍ ODRŮD PŠENICE OBECNÉ TRITICUM AESTIVUM L. METODOU RAPD Distinguishing of Wheat Varieties (Tritium aestivum L.) by Method RAPD Zuzana Kohutová, Zuzana Kocourková, Hana Vlastníková, Petr Sedlák Katedra genetiky a šlechtění, ČZU v Praze Abstract The RAPD method was used to distinguish sixteen varieties of common wheat. Four primers decameric oligonucleotides were selected as genotype-specific RAPD products. It concerned these following primers: OPC5, P49, RAPD7, RAPD9. For these analyses were optimised method of DNA isolation, amplification conditions and visualisation of electrophoreograms. All statistical evaluatioun was done using GelManager for Windows computer program. Genotype variability was expressed by bulked analyse by Dice coefficient of similarity. Key words: wheat, Triticum aestivum, RAPD, primers, varieties Souhrn Metoda RAPD byla použita pro odlišení šestnácti odrůd pšenice obecné. Byly vybrány čtyři primery dekamerické oligonukleotidy, které poskytovaly genotypově specifické RAPD produkty. Jednalo se o primery OPC5, P49, RAPD7, RAPD9. Pro tyto analýzy byla optimalizována metoda izolace DNA, podmínky amplifikace a vizualizace elektroforeogramů. Pro veškeré statistické vyhodnocení byl použit program GelManager for Windows. Genotypová variabilita byla vyjádřena pomocí shlukové analýzy na základě Diceho podobnostních koeficientů. Úvod Pšenice obecná (Triticum aestivum L.) představuje v celosvětovém měřítku jednu z nejvýznamnějších obilovin. Produkce této plodiny zajišťuje nejen výživu obyvatelstva, ale je rovněž důležitou součástí krmiv hospodářských zvířat a významnou vstupní surovinou pro řadu odvětví zpracovatelského průmyslu (Benada et al., 1981). Tato studie představuje využití genetických markerů založených na polymorfismu DNA pro odlišení odrůd pšenice obecné, kterou lze z hlediska obecné molekulární genetiky považovat za jeden z modelových druhů s dobře popsaným genomem.genetická a šlechtitelská pracoviště na celém světě se zabývají vypracováním metody identifikace odrůd s využitím biochemicko-genetických markerů. Tyto snahy jsou zapříčiněny hlavně neustále se zvyšujícím počtem odrůd. Zejména RAPD markery byly úspěšně využity pro identifikaci odrůd mnoha zemědělských plodin a při zjišťování genetické variability v rámci druhů nebo i mezi druhy. Literární přehled K aplikaci PCR markerů u pšenice a ostatních hospodářsky významných plodin vede obtížnost rozlišení odrůd v podobě semen či sadby pomocí morfologických znaků. Dosud používané metody k identifikaci odrůd jsou neekonomické a zejména v podobě vegetačních zkoušek velmi časově náročné. Detekce rozdílu mezi genotypy na úrovni druh, poddruh, odrůda, linie atd. na základě odlišnosti DNA, zjištěné za pomocí PCR markerů, označujeme termínem fingerprinting. Pro tento odrůdový fingerptinting bývá od 90. let 20. století velice často používána metoda RAPD (Vejl, 2002).

Na základě těchto genetických markerů můžeme také určit vyrovnanost F 1 hybridů, stupeň homozygotnosti a zajistit tak požadovanou uniformitu odrůdy (Rom et al., 1995) RAPD (Randomly Amplified Polymorphic DNA) představuje amplifikaci DNA s jedním náhodným primerem (přibližně 6 12 bází) náhodně hybridizujícím s templátovou DNA. Reakce probíhá za přítomnosti jednoho krátkého oligonukleotidu (8 10 nukleotidů) s náhodně vybranou sekvencí bazí, genomové DNA, směsi nukleotidů dntp, reakčního pufru a termostabilní DNA polymerázy. Amplifikace je rozdělena do třech základních kroků: denaturace templátové DNA, nasedání primerů tzv. annealing a prodlužování nově vznikajícího řetězce DNA. RAPD na rozdíl od specifické PCR nevyžaduje znalost cílových sekvencí DNA (Řepková a Relichová, 2001). Výhoda RAPD spočívá ve velké rychlosti analýz a detekci polymorfismů a v možnosti testování vysokého počtu primerů současně. Nevýhodou metody je detekce převážně dominantních markerů, detekce odlišných lokusů při odlišných kříženích a velká závislost na typu termocykleru a podmínkách amplifikace (Gale a Witcombe, 1992). Caetano-Anollés et al. (1997) poukazují na omezení a nevýhody uplatnění RAPD analýzy. Především na nízkou reprodukovatelnost výsledků, odlišné výsledky z různých laboratoří a variabilitu výsledků způsobenou změnami v termálním cyklu. RAPD markery v genetice pšenice použili například Demeke et al. (1996), Dweikat et al. (1993), Francis et al. (1995), Joshi a Nguyen (1993), Ko et al. (1993), Loarce (1993), Vejl (1997a), Vejl (1997b). Metodika Biologický materiál Pro RAPD analýzy bylo použito 16 genotypů pšenice obecné (Triticum aestivum L.). Jednalo se o tyto odrůdy: Apache (1), Banquet (2), Complet (11), Corsaire (3), Drifter (4), Ebi (5), Mladka (12), Nela (13), Rheia (14), Rialto (6), Samanta (15), Sandra (7), SG-S5-02 (8), Sparta (9), Sulamit (16), Zdar (10). Izolace DNA Izolace DNA byla prováděna pomocí komerčně dodávaného izolačního kitu DNeasy Plant Mini Kit od firmy Qiagen a kitu Plant Gene Elute od firmy Sigma. K izolaci byly používány listy klíčních rostlin. Kvalita izolované DNA (vysokomolekularita) byla ověřena pomocí elektroforetické separace v 1% agarozovém gelu na horizontální elektroforéze. Vyizolovaná DNA byla kvantifikována pomocí UVspektrofotometru a poté ředěna na koncentraci 10 ng.µl-1. Amplifikace DNA Polymerázová řetězová reakce probíhala v termocykleru T-gradient (Biometra, Německo). Byly vybrány 4 primery, které poskytovaly u souboru dvaceti odrůd polymorfní RAPD produkty. Jednalo se o tyto primery: OPC5, P49, RAPD7 a RAPD9. Pro RAPD reakci bylo chemické složení následující: 10 ng templátové DNA, 30 ng primeru, 1x PCR pufr, 2,5 mm MgCl 2, 200 µm dntp, 1U Taq polymerázy. Reakční směs byla převrstvena 17 µl minerálního oleje. Pro RAPD byl použit námi optimalizovaný teplotní a časový profil uvedený v tabulce 1. Elektroforetická separace RAPD produktů a počítačová analýza elektroforeogramů Pro separaci amplifikovaných fragmentů DNA byla použita horizontální 1,5 % agarózová elektroforéza (přístroj firmy Bio Rad, USA). Vizualizaci umožňuje přítomnost ethidium bromidu v agarózovém gelu a prosvícení na UV transiluminátoru paprsky o vlnové délce 312 nm. Agarózové gely není možno uchovávat, proto byla pořízena fotodokumentace fotokamerou Polaroid. Byl použit

grafický způsob zadávání binárních dat (přítomnost-absence polymorfní zóny) do programu GelManager for Windows, který umožnil komplexní vyhodnocení variability. Byly porovnány všechny získané elektroforeogramy a vypracována shluková analýza, ze které jsme získali dendrogram a podobnostní matice Diceho koeficientu. Tabulka 1: teplotně časový profil optimalizované RAPD reakce Kroky RAPD Teplota [ C] Čas [s] Počet cyklů počáteční denaturace 94,0 260 1 denaturace 94,0 30 39 annealing 37,8 45 39 prodlužování 72,0 90 39 závěrečné prodlužování 72,0 300 1 uchování produktů 4,0 max. 1 Výsledky a diskuse Výsledkem izolace DNA byla vysokomolekulární DNA, která byla otestována a po kvantifikaci naředěna na koncentraci 10 ng.µl -1. Otestovaná DNA byla použita pro reakci náhodné amplifikace polymorfní DNA RAPD. Bylo vyzkoušeno 42 primerů, z nichž 33 za daných podmínek reakce amplifikovalo a pouze 4 primery poskytly genotypově specifické RAPD zóny. Pro specifičnost amplifikace jsou důležitým faktorem annelační teplota a časový profil RAPD reakce. Různí autoři uvádí rozdílné annelační teploty v intervalu 35 C 38 C. Pro získání výsledků v této práci byla použita teplota 37,8 C. Z elektroforeogramů RAPD polymorfních produktů jednotlivých odrůd byl vyhodnocen rozsah genotypové variability zadáním údajů do programu GelManager for Windows, jehož výsledkem byla matice Diceho podobnostních koeficientů (tabulka 2). Ta byla použita pro sestavení dendrogramu. Joshi a Nguyen (1993) charakterizovali pomocí RAPD markeru 15 odrůd pšenice obecne, Gonzalez a Ferrer (1993) provedli RAPD analýzu 19 druhů a poddruhů rodu Hordeum a RAPD markery využili pro identifikaci odrůd také Loarce et al. (1996), Vierling a Nguyen (1992) a Vejl (1997a). Obrázek 1: Elektroforeogram RAPD produktů (primer RAPD7 u souboru 16 odrůd pšenice) Pozn.: S hmotnostní standard λdna/eco47i (AvaII) Označení genotypu je uvedeno v kapitole metodika

Obrázek 2: Elektroforeogram RAPD produktů (primer OPC5 u souboru 16 odrůd pšenice) Pozn.: S hmotnostní standard λdna/eco47i (AvaII) Označení genotypu je uvedeno v kapitole metodika Tabulka 2: Matice Diceho podobnostních koeficientů vyjadřující podobnosti v % mezi RAPD profily analyzovaných odrůd pšenice. Označení genotypu je uvedeno v kapitole metodika 16 100 15 0 100 14 0 43 100 13 0 22 0 100 12 0 55 67 0 100 11 40 33 60 0 57 100 10 0 33 40 0 57 25 100 9 0 53 46 0 60 36 55 100 8 25 27 46 0 40 55 55 43 100 7 0 57 67 29 67 40 60 62 46 100 6 0 57 50 0 44 60 20 46 31 33 100 5 0 40 46 0 40 36 36 43 43 31 46 100 4 0 50 60 0 86 50 75 73 55 80 40 36 100 3 0 50 57 22 55 50 33 40 53 57 43 40 50 100 2 0 53 62 0 60 55 36 43 43 46 62 57 55 67 100 1 25 53 46 0 40 36 36 29 43 31 31 43 36 40 57 100 16 15 14 13 12 11 10 9 8 7 6 5 4 3 2 1

Obrázek 3: Dendrogram charakterizující variabilitu mezi analyzovanými odrůdami pšenice Z uvedeného dendrogramu je patrné, že mezi odrůdami Mladka a Drifter je nejnižší genotypová variabilita. Největší genetická vzdálenost od ostatních genotypů byla prokázána u odrůdy Sulamit. Závěr Výsledky experimentů, které sledovaly možnost využití RAPD markerů při odlišení jednotlivých odrůd pšenice obecné, potvrzují, že metoda RAPD je vhodným postupem pro řešení této problematiky. Pro odlišení šestnácti odrůd byly dostačující 4 primery poskytující polymorfní produkty. Pro spolehlivé odlišení rozsáhlejšího souboru odrůd bude navrženo otestovat a vybrat větší množství primerů, jejichž výsledkem budou polymorfní zóny vhodné pro vyhodnocení. Nevýhodou je relativně vysoká citlivost metody, a proto je vhodné metodu vždy optimalizovat pro dané laboratorní podmínky. Literatura Přehled citované literatury je k dispozici u autora. Práce je podporována výzkumným záměrem MSM 412100002 a grantovým projektem QF4190. Kontaktní adresa autora: Ing. Zuzana Kohutová, Katedra genetiky a šlechtění, ČZU v Praze, Kamýcká 957,165 21 Praha 6 Suchdol, E-mail: kohutova@af.czu.cz