Elektroforéza v přítomnosti SDS SDS PAGE

Podobné dokumenty
SDS polyakrylamidová gelová elektroforéza (SDS PAGE)

Obsah Protein Gel Electrophoresis Kitu a jeho skladování

Sraz studentů v 8:00 před laboratoří A5/108, s sebou plášť a přezutí PRINCIP. Polyakrylamidová gelová elektroforéza v přítomnosti SDS (SDS-PAGE)

PROTOKOL WESTERN BLOT

SDS-PAGE elektroforéza

ELEKTROFORETICKÉ METODY

Inovace bakalářského studijního oboru Aplikovaná chemie CZ.1.07/2.2.00/

Polymorfismus délky restrikčních fragmentů (RFLP)

Evropský sociální fond Praha & EU: Investujeme do vaší budoucnosti ELEKTROMIGRAČNÍ METODY

Polymorfismus délky restrikčních fragmentů

Western blotting. 10% APS 20,28 µl 40,56 µl 81,12 µl 20,28 µl 40,56 µl 81,12 µl

TECHNICKÁ SPECIFIKACE Vybavení genetické laboratoře pro projekt EXTEMIT-K část B

Výzkumný ústav rostlinné výroby Praha Ruzyně. Metodika byla vypracována jako výstup výzkumného záměru MZe č Autor: Ing.

PROTEINOVÁ DENATURUJÍCÍ ELEKTROFORÉZA (SDS PAGE)

Obr. 1. Schematické znázornění 2D-PAGE (převzato z Lodish, H. a kol.: Molecular Cell Biology, 3. vyd., Freeman 1996)

Výzkumný ústav rostlinné výroby Praha Ruzyně

Ústřední komise Chemické olympiády. 53. ročník 2016/2017. KRAJSKÉ KOLO kategorie C. ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (40 BODŮ) časová náročnost: 120 minut

Gelová elektroforéza - úvod, demonstrační sada pro učitele Kat. číslo

Pufry, pufrační kapacita. Oxidoredukce, elektrodové děje.

Návod k laboratornímu cvičení. Vitamíny

laktoferin BSA α S2 -CN α S1 -CN Popis: BSA bovinní sérový albumin, CN kasein, LG- laktoglobulin, LA- laktalbumin

UŽIVATELSKÁ PŘÍRUČKA PRO ÚDRŽBU A USKLADNĚNÍ ELEKTROD

Identifikace a stanovení chininu v toniku pomocí CE-MS

ELEKTROFORETICKÁ SEPARACE NUKLEOVÝCH KYSELIN

Proteinový fingerprinting vaječného bílku

Jazykové gymnázium Pavla Tigrida, Ostrava-Poruba Název projektu: Podpora rozvoje praktické výchovy ve fyzice a chemii

Objednací číslo Určení Ig-třída Substrát Formát DP E Inhalační a potravinové alergeny

1. Příloha 1 Návod úlohy pro Pokročilé praktikum z biochemie I

Elektromigrační metody

Stanovení celkové kyselosti nápojů potenciometrickou titrací

2) Připravte si 3 sady po šesti zkumavkách. Do všech zkumavek pipetujte 0.2 ml roztoku BAPNA o různé koncentraci podle tabulky.

α-globin StripAssay Kat. číslo testů 2-8 C

DETEKCE A IDENTIFIKACE FYTOPATOGENNÍCH BAKTERIÍ METODOU PCR-RFLP

Pufry, pufrační kapacita. Oxidoredukce, elektrodové děje.

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 ŠKOLNÍ KOLO. Kategorie C ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (40 BODŮ)

MOLEKULÁRNÍ METODY V EKOLOGII MIKROORGANIZMŮ

Braf V600E StripAssay

Elektrolytické vylučování mědi (galvanoplastika)

Určení koncentrace proteinu fluorescenční metodou v mikrotitračních destičkách

PROTOKOL NORTHERNOVA HYBRIDIZACE

Projekt Pospolu. Stanovení jílovitých podílů podle ČSN EN A1 Zkouška s methylenovou modří

ORGANICKÁ CHEMIE Laboratorní práce č. 9

ÚLOHA 1: Stanovení koncentrace kyseliny ve vzorku potenciometrickou titrací

DOPLŇKOVÉ ÚLOHY MĚŘENÍ KREVNÍHO TLAKU NEPŘÍMOU METODOU

HODNOCENÍ ASFALTŮ

NRAS StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

Základy obsluhy plazmatických reaktorů, seznámení s laboratorní technikou

2) Připravte si 7 sad po pěti zkumavkách. Do všech zkumavek pipetujte 0.2 ml roztoku BAPNA o různé koncentraci podle tabulky.

Kapitola: Přírodní látky Téma: Vitamíny. Cíl: Porovnat průběh a rychlost rozpouštění pevných forem vitamínu C v kyselině chlorovodíkové

Všeobecné lékařství 2014/15

Stanovení α-amylázy v moči

TESTOVÁNÍ GMO Praktikum fyziologie rostlin

ČESKÁ ZEMĚDĚLSKÁ UNIVERZITA V PRAZE

Stanovení paracetamolu, kofeinu a propyfenazonu v tabletách Valetol

PHH-720 Série. ph metr s vizuálním alarmem

Turnusové praktikum z biochemie

Výzkumný ústav rostlinné výroby Praha Ruzyně

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU SEMDURAMICINU METODOU HPLC

ELISA-VIDITEST PAU ve vodě

Úloha č. 8 POTENCIOMETRICKÁ TITRACE. Stanovení silných kyselin alkalimetrickou titrací s potenciometrickou indikací bodu ekvivalence

Ventilační systém neponořujte do vody či jiných kapalin ani jej nepoužívejte v blízkosti vody.

ÚSTAV LÉKAŘSKÉ BIOCHEMIE A LABORATORNÍ DIAGNOSTIKY 1. LF UK. Bílkoviny. Praktické cvičení z lékařské biochemie Všeobecné lékařství

Které látky se mohou vylučovat ledvinami, dialýza. Shrnutí. Cílová skupina. Časová náročnost

Destilační přístroj MDist 4 Návod k použití

ODŮVODNĚNÍ VEŘEJNÉ ZAKÁZKY

APLIKOVANÉ ELEKTROMIGRAČNÍ METODY

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 NÁRODNÍ KOLO. Kategorie E. Zadání praktické části Úloha 1 (20 bodů)

DENATURACE PROTEINŮ praktické cvičení

STANOVENÍ SIŘIČITANŮ VE VÍNĚ

Finnpipette DIGITAL. Uživatelská příručka

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU HPLC - OCHRATOXIN A

Neutralizace, měření senzorem ph Vernier Laboratorní práce

Stanovení organofosforových pesticidů ve vodě a půdě micelární elektrokinetickou chromatografií

Identifikace mikroorganismů pomocí sekvence jejich genu pro 16S rrna

Ztráty tlaku v mikrofluidních zařízeních

ODDĚLOVÁNÍ SLOŽEK SMĚSÍ, PŘÍPRAVA ROZTOKU URČITÉHO SLOŽENÍ

S filtračními papíry a membránou je nutno manipulovat pinzetou s tupým koncem.

BOD VZPLANUTÍ

EGFR XL StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

Senzor rozpuštěného kyslíku PS 2108

Výukový materiál zpracován v rámci projektu. EU peníze školám. Registrační číslo projektu: CZ.1.07/1.5.00/

IZOLACE, SEPARACE A DETEKCE PROTEINŮ I. Vlasta Němcová, Michael Jelínek, Jan Šrámek

Analýza aniontových tenzidů v čisticích prostředcích kapilární elektroforézou

Obsah soli v potravinách Laboratorní práce

ELFO: DNA testovaných vzorků společně se značeným velikostním markerem je separovaná standardně použitím agarosové elektroforézy.

PHH-222. ph metr. 4. Procedura kalibrace ph. 4-1 Důvod kalibrace

PHH-860. Ruční měřící přístroj ph/mv/teploty s komunikačním rozhraním RS-232

Protokoly Transformace plasmidu do elektrokompetentních buněk BL21 Pracovní postup:

DOCELA OBYČEJNÁ VODA

Mikrokalorimetrie. Izotermální titrační mikrokalorimetrie

Název školy: Gymnázium Jana Nerudy, škola hl. města Prahy. Předmět, mezipředmětové vztahy: biologie+ chemie, matematika, informační technika

Magnetická míchadla MS-3000 a MMS-3000 Uživatelská příručka

Laboratorní cvičení manuál pro vyučujícího. Oxidace benzaldehydu, redukční účinky kyseliny mravenčí a příprava kyseliny acetylsalicylové

Demontáž těsnicí ucpávky

Příprava roztoku o dané koncentraci Laboratorní práce

RUŠENÁ KRYSTALIZACE A SUBLIMACE

(Triticum aestivum L.)

Transkript:

Elektroforéza v přítomnosti SDS SDS PAGE Elektroforéza v přítomnosti SDS SDS PAGE je jednoduchá, rychlá a reprodukovatelná metoda pro kvalifikovanou charakterizaci a srovnání bílkovin.tato metoda separuje bílkoviny na základě rozdílné relativní molekulové hmotnosti. SDS se zde váže na bílkovinný řetězec v poměru 1.4 g SDS na 1g bílkoviny, přičemž délka komplexu SDS bílkovina je úměrná jeho molekulové hmotnosti. Na základě srovnání relativních mobilit neznámé bílkoviny a standardů je pak možné určit její relativní molekulovou hmotnost. elektromigrační dráha neznámé bílkoviny Relativní mobilita (Rf ) = ---------------------------------------------------- celková délka elektroforézy Kalibrační závislost Log MW = f (Rf ) I. Příprava gelu A. Sestavení gelového sendviče Na stojánek položte držák, k jeho vnitřní straně umístěte delší sklo, na ně spacery a pak kratší sklo. Držák stáhněte a upněte ve stojánku.

2 B. Nalévání separačního gelu. Na elektromagnetickou míchačku dejte kádinku s míchadlem a do ní pipetujte roztoky podle schématu, roztoky nepipetujte ústy! 1.3 ml separačniho pufru ph 8.3 1.3 ml roztoku akrylamidu 2.5 ml destilované vody 50 µl 10 % persíranu amonného 5 ul TEMEDu Promíchejte polymerizační směs zvýšením otáček a nasajte ji do injekční stříkačky. Směs opatrně nastříkněte mezi skla do výše zářezu a převrstvěte n-butanolem. Ponechte polymerovat tak dlouho, až se mezi gelem a vodnou fází vytvoří ostré rozhraní. Slijte nezpolymerovanou část, promyjte vodou ze střičky a odsajte přebytek kapaliny filtračním papírem.

3 C. Nalévání koncentračního gelu Na elektromagnetickou míchačku dejte kádinku s míchadlem a do ní pipetujte roztoky podle schématu, roztoky nepipetujte ústy! 1.2 ml koncentračního pufru ph 0.7 ml roztoku akrylamidu 3.1 ml destilované vody 50 ul 10 % persíranu amonného 5 ul TEMEDu Promíchejte polymerizační směs zvýšením otáček a nasajte ji do injekční stříkačky. Mezi skla nastříkněte polymerizační směs a vložte do ní hřebínek. Ponechte polymerovat. Vyjměte hřebínek z gelu a vzorkové jamky vypláchněte destilovanou vodou. Gel vložte do vlhké komůrky.

4 II. Elektroforéza A. Sestavení aparatury Ke vnitřnímu elektrodovému prostoru připevněte gel a prázdný držák s kratším sklem. Takto sestavený vnitřní elektrodový prostor vložte do nádobky a naplňte elektrodovým pufrem. Elektroforetická aparatura Mini Protean II

5 B. Nanesení vzorku. Do vzorkových jamek naneste pomocí stříkačky 20 µl vzorku, tak abyste je podvrstvili pod elektrodový pufr. Mezi jednotlivými vzorky stříkačku vypláchněte destilovanou vodou. C. Vlastní elektroforéza Elektroforetickou aparaturu uzavřete víkem a připojte ji ke zdroji stejnosměrného napětí. Na zdroji nastavte konstantní napětí 125 V a po zapnutí ponechte elektroforézu probíhat tak dlouho, až zóna bromfenolové modři doputuje ke spodnímu okraji gelu. D. Ukončení elektroforézy Vypněte zdroj, otevřete elektroforetickou aparaturu, vyjměte z ní vnitřní elektrodový prostor, a slijte elektrodový pufr. Uvolněte z vnitřního elektrodového prostoru držák s gelem a opatrným zapáčením od sebe uvolněte skla. Z gelu odstraňte koncentrační část a zbytek přeneste do fixačního roztoku.

6 III. Detekce bílkovin stříbrem krok roztoky čas 1. 60 ml 50 % acetonu, 1.5 ml 50 % TCA, 25 µl 37 % HCHO 5 min 2. opláchněte 3x deionizovanou vodou 3 x 5 s 3. promytí deionizovanou vodou 5 min 4. opláchněte 3x deionizovanou vodou 3 x 5 s 5. 60 ml 50 % acetonu 5 min 6. 100 µl 10 % Na 2 S 2 O 3 v 60 ml deionizované vody 1 min 7. opláchněte 3x deionizovanou vodou 3 x 5 s 8. 0.8 ml 20 % AgNO 3, 0.6 ml 37 % HCHO, 60 ml H 2 O 8 min 9. opláchněte 2x deionizovanou vodou 2 x 5 s 10. 60 ml 2 % Na 2 CO 3, 25 µl 37 % HCHO, 25 µl 10 % Na 2 S 2 O 3 10-20 s 11. 1 % HAc 30 s 12. promytí deionizovanou vodou 10 s IV. Sušení gelu Gel přeneste do 1 % roztoku glycerínu a ponechte jej zde 15 minut ekvilibrovat. Do stejného roztoku vložte na 5 minut celofánovou folii, gel a zalijte jej trochou glycerínového roztoku. Gel překryjte celofánovou folií a pomocí skleněné tyčinky vytlačte gel gumovou membránou a vrchním víkem. Zapněte sušičku a ponechte gel sušit asi 2 hodiny při 80 0 C.!!!!! Důležité upozornění!!!!! Monomery používané pro přípravu gelu jsou neurotoxiny a proto : roztoky nikdy nepipetujte ústy pracujte v rukavicích pracujte v digestoři