Biotechnologický kurz. II. letní škola metod molekulární biologie nukleových kyselin a genomiky

Podobné dokumenty
Biotechnologický kurz. II. letní škola metod molekulární biologie nukleových kyselin a genomiky

Biotechnologický kurz. III. letní škola metod molekulární biologie nukleových kyselin a genomiky

V. letní škola metod molekulární biologie nukleových kyselin a genomiky Ústav morfologie, fyziologie a genetiky zvířat AF MENDELU

Izolace RNA. doc. RNDr. Jan Vondráček, PhD..

1. Definice a historie oboru molekulární medicína. 3. Základní laboratorní techniky v molekulární medicíně

MOLEKULÁRNĚ BIOLOGICKÉ METODY V ENVIRONMENTÁLNÍ MIKROBIOLOGII. Martina Nováková, VŠCHT Praha

Základy genomiky. I. Úvod do bioinformatiky. Jan Hejátko

Vzdělávání zdravotních laborantek v oblasti molekulární biologie

Soulad studijního programu. Molekulární a buněčná biologie

Laboratorní workshop s teoreticko praktickou ukázkou molekulárně biologických technik ve spolupráci s firmou ROCHE

Využití DNA markerů ve studiu fylogeneze rostlin

Aplikovaná bioinformatika

Laboratoř sekvenace DNA Servisní laboratoř biologické sekce PřF UK

Mgr. et Mgr. Lenka Falková. Laboratoř agrogenomiky. Ústav morfologie, fyziologie a genetiky zvířat Mendelova univerzita

Metody analýzy DNA využívané ve Výzkumném a šlechtitelském ústavu Holovousy RNDr. Jana Čmejlová, Ph.D.

MagPurix Blood DNA Extraction Kit 200

SYNTETICKÉ OLIGONUKLEOTIDY

DY D NE N X Hana Vlastníková

Využití DNA sekvencování v

DYNEX nabízí komplexní řešení v oblasti zpracování a analýzy biologických materiálů pomocí molekulárně biologických metod.

Determinanty lokalizace nukleosomů

Molekulárně biologické metody princip, popis, výstupy

Pokročilé biofyzikální metody v experimentální biologii

Inovace studia molekulární a buněčné biologie reg. č. CZ.1.07/2.2.00/

Vykazování pro zdravotní pojišťovny a zákonné požadavky pro genetická vyšetření

Metody molekulární biologie

Standard studijního programu Bioinformatika

PCR IN DETECTION OF FUNGAL CONTAMINATIONS IN POWDERED PEPPER

Kdo jsme. Centrum strukturní a funkční genomiky rostlin Ústavu experimentální botaniky AV ČR, v.v.i.

Výzkumné centrum genomiky a proteomiky. Ústav experimentální medicíny AV ČR, v.v.i.

Mendelova univerzita v Brně Agronomická fakulta Ústav biologie rostlin

Diagnostika infekce Chlamydia trachomatis pomocí molekulárně genetické metody real time PCR nejen u pacientek z gynekologických zařízení

Bi5130 Základy práce s lidskou adna

EKONOMICKÉ ASPEKTY GENETICKÝCH VYŠETŘENÍ. I. Šubrt Společnost lékařské genetiky ČLS JEP

DEN OTEVŘENÝCH DVEŘÍ NA ÚMG

Osekvenované genomy. Pan troglodydes, Neandrtálec, 2010

Evropský sociální fond Praha & EU: Investujeme do vaší budoucnosti NUKLEOVÉ KYSELINY

Aplikace DNA markerů v mykologii a molekulárni taxonomii

Seminář izolačních technologií

Molecular Ecology J. Bryja, M. Macholán MU, P. Munclinger - UK

Libor Hájek, , Centrum regionu Haná pro biotechnologický a zemědělský výzkum, Přírodovědecká fakulta, Šlechtitelů 27, Olomouc

Molekulárně biologické metody v mikrobiologii. Mgr. Martina Sittová Jaro 2014

Genetická diverzita masného skotu v ČR

Centrum aplikované genomiky, Ústav dědičných metabolických poruch, 1.LFUK

Genotypování: Využití ve šlechtění a určení identity odrůd

INTRODUCING OF SNAPSHOT METHOD FOR POLYMORPHISM DETECTION ZAVEDENÍ SNAPSHOT METODIKY PRO DETEKCI POLYMORFISMŮ

Sekvenování nové generace. Radka Reifová

Izolace nukleových kyselin

Genetický polymorfismus jako nástroj identifikace osob v kriminalistické a soudnělékařské. doc. RNDr. Ivan Mazura, CSc.

Sekvenování nové generace. Radka Reifová

Ondřej Scheinost Nemocnice České Budějovice, a.s.

Výuka genetiky na Přírodovědecké fakultě MU

Projekt FR-TI2/075 MPO příklad spolupráce farmaceutů s komerčním sektorem. Milan Bartoš. Forum veterinarium, Brno 2010

PRAKTIKUM Z OBECNÉ GENETIKY

Filozofie validace. Je validace potřebná? Mezinárodní doporučení pro provádění validací ve forenzně genetických laboratořích

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

Standard studijního programu Experimentální biologie rostlin

1. seznámení s on-line databázemi, nástroji a softwarem (databáze, vyhledání sekvencí, základní manipulace se sekvencemi, navržení primerů)

Ústav experimentální medicíny AV ČR úspěšně rozšířil přístrojové vybavení pro vědce z peněz evropských fondů

NAT testování dárců krve v ÚVN Praha

INOVATIVNÍ KURZY IMUNOANALÝZY A ENDOKRINOLOGIE PRO VĚDECKÉ PRACOVNÍKY- PILOTNÍ ZKUŠENOSTI LÉKAŘSKÉ FAKULTY V PLZNI

TAČR GAMA VÚŢV, v.v.i. Projekt TG Závěrečná zpráva za dílčí projekt TGP006. Metodika pro rutinní stanovování genotypu zbarvení koní

Sekvenace aplikace ve virologické diagnostice. Plíšková Lenka FN Hradec Králové

J09 Průkaz nukleové kyseliny

Písemná zpráva zadavatele pro část 4. - Fluorometr pro testování proteinů, RNA, DNA

Genetické markery - princip a využití

Obhajoba IP 2014 Zemědělská fakulta JU FOTO

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

Pracovní skupina pro molekulární mikrobiologii TIDE

DNA TECHNIKY IDENTIFIKACE ŽIVOČIŠNÝCH DRUHŮ V KRMIVU A POTRAVINÁCH. Michaela Nesvadbová

Cvičení z cytogene/ky

Molekulární metody ve studiích kořenových systémů. Jiří Košnar, 2016

Změny sazebníku výkonů pro mikrobiologické obory

Využití molekulárních markerů v systematice a populační biologii rostlin. 12. Shrnutí,

APLIKACE METAGENOMIKY PRO HODNOCENÍ PRŮBĚHU SANAČNÍHO ZÁSAHU NA LOKALITÁCH KONTAMINOVANÝCH CHLOROVANÝMI ETHYLÉNY

Inovace studia molekulární a buněčné biologie reg. č. CZ.1.07/2.2.00/

Molekulární genetika

Písemná zpráva zadavatele

Genetické markery, markery DNA

Implementace laboratorní medicíny do systému vzdělávání na Univerzitě Palackého v Olomouci. reg. č.: CZ.1.07/2.2.00/

PŘEHLED SEKVENAČNÍCH METOD

Kvantitativní detekce houbových patogenů v rostlinných pletivech s využitím metod molekulární biologie

Tkáňový homogenizátor MagNA Lyser od společnosti Roche

GENOTOXICITA A ZMĚNY V GENOVÉ EXPRESI

Mendelova genetika v příkladech. Genetické markery

Výzkumný a šlechtitelský ústav ovocnářský Holovousy, s.r.o.

Co se o sobě dovídáme z naší genetické informace

Vývoj vykazování a úhrad metod molekulárněgenetické diagnostiky a PGT ze zdravotního pojištění

analýzy dat v oboru Matematická biologie

MATEMATICKÁ BIOLOGIE

Aplikace molekulárně biologických postupů v časné detekci sepse

Genotypování markerů užitkovosti a zdraví u skotu

6. Kde v DNA nalézáme rozdíly, zodpovědné za obrovskou diverzitu života?

PhD. České Budějovice

Analýza DNA. Co zjišťujeme u DNA DNA. PCR polymerase chain reaction. Princip PCR PRINCIP METODY PCR

Některé vlastnosti DNA důležité pro analýzu

Metody používané v MB. analýza proteinů, nukleových kyselin

Genetické metody v zoologii

MOLEKULÁRNÍ BIOLOGIE. 2. Polymerázová řetězová reakce (PCR)

Využití metod strojového učení v bioinformatice David Hoksza

Transkript:

Biotechnologický kurz Biotechnologický kurz II. letní škola metod molekulární biologie nukleových kyselin a genomiky 20. - 24. 6. 2011 Ústav morfologie, fyziologie a genetiky zvířat AF MENDELU v Brně Zemědělská 1, Budova A, 4. patro (učebny dle programu) PROGRAM Projekt CZ.1.07/2.3.00/09.0037: Další odborné vzdělávání jako cesta ke zkvalitnění personálního zabezpečení pracovníků pro biotechnologický výzkum a vývoj Tento projekt je spolufinancován Evropským sociálním fondem a státním rozpočtem České republiky. 1

20. 6. 2011 Izolace a PCR amplifikace nukleových kyselin, separace DNA, identifikace polymorfismů 8:00 8:05 Úvodní slovo prof. RNDr. Aleš Knoll, Ph.D. 8:05 12:00 dopolední blok; lektor: Ing. Pavla Chalupová (ÚMFGZ AF MENDELU v Brně); učebna: N4104 (Výuková laboratoř molekulární genetiky), 4. patro 8:05 8:30 - praktická část - Homogenizace vzorků k izolaci DNA, lýze tkání 8:30 10:30 - přednáška - Izolace nukleových kyselin - typy metod izolace NK (fenol-chloroform, adsorbční metody, magnetické kity, automatické izolátory), izolace DNA, RNA, plazmidová DNA, si a mirna, enzymy používané k úpravám NK (DNázy, RNázy, proteázy), stabilita a uchování NK 10:30 12:00 - praktická část - Izolace genomové DNA pomocí automatické izolační stanice QIAcube a příprava PCR reakce pro sekvenování 12:00 12:30 - přestávka 12:30-17:30 odpolední blok; lektor: Ing. Pavla Chalupová (ÚMFGZ AF MENDELU v Brně); učebna: N4104 (Výuková laboratoř molekulární genetiky), 4. patro 12:30 13:00 - praktická část - Příprava PCR reakce pro fragmentační analýzu pomocí automatické pipetovací stanice QIAgility 13:00 14:00 - přednáška - DETEKCE A KVANTIFIKACE NUKLEOVÝCH KYSELIN - gelová elektroforéza, faktrory ovlivňující gelovou elektroforézu, varianty a modifikace elektroforézy, spektrofotometrické stanovení koncentrace a kvality NK, NanoDrop 2000, Agilent 2100 Bioanalyzer 14:00 15:00 - přednáška - polymerázová řetězová reakce (PCR) - princip PCR, složení reakční směsi, kontaminace při PCR, PCR troubleshotting, modifikace a využití PCR 15:00 17:30 - praktická část - Návrh primerů pro PCR, Přečištění PCR produktu, Stanovení koncentrace PCR produktů pomocí spektrofotometru NanoDrop a gelové elektroforézy 2

21. 6. 2011 SEKVENOVÁNÍ NUKLEOVÝCH KYSELIN A FRAGMENTAČNÍ ANALÝZA 8:00 12:00 dopolední blok; lektor: Mgr. Kristína Civáňová, Ph.D. (Ústav botaniky a zoologie PřF MU v Brně); učebna: N4104 (Výuková laboratoř molekulární genetiky), 4. patro 8:00 9:30 - přednáška Technologie sekvenování - Historie metodických přístupů (radioaktivita vs. fluorescence) a jejich vývoj (Maxam-Gilbert, Sanger, 454 pyrosekvenování); Historie a vývoj přístrojového vybavení a typy sekvenátorů, popis genetického analyzátoru ABI 3100-Avant a jeho funkcí; Princip metodiky (Sanger), popis vybavení přístroje a reakční chemie (sestavy kapilár, separační medium, reagencie), příklady hodnocení (software) a výstupů; Aplikace a využití metody sekvenování 9:30 11:00 - přednáška Technologie fragmentační analýzy - Historie metodiky hodnocení (rodokmen-gel-píky); Mikrosatelity (MS), definice a využití; Typy MS panelů; Možnosti kvantitativní analýzy množství DNA; Princip metodiky (CE) reagencie, PCR a analýza; Příklady hodnocení (software) a výstupů; Využití fragmentační analýzy 11:00 12:00 - přednáška Možnosti genetických analyzátorů a přehled dalších aplikací - Minisekvenování (aplikace SNaPshot); SSCP; AFLP; CSCE, LOH, MLPA; Příklady specializovaných aplikací 12:00 12:30 - přestávka 12:30 17:30 odpolední blok; lektor: Mgr. Kristína Civáňová, Ph.D. (Ústav botaniky a zoologie PřF MU v Brně); učebna: N4104 (Výuková laboratoř molekulární genetiky), 4. patro 12:30 13:00 praktická část 1 Fragmentační analýza vzorků pomocí kapilární elektroforézy (FA-CE) - krátký teoretický úvod k přípravě vzorků; Vlastní příprava vzorků k analýze (PCR-ředění, formamid+standard); Vložení vzorků do přístroje a spuštění analýzy 13:00 17:30 - praktická část 2 Sekvenování PCR produktu - purifikace PCR produktu (Teoretický úvod typy templátů pro sekvenování, proč templát purifikovat, typy postupů přečištění + princip QIAcube a kolonové purifikace) a kvantifikace PCR templátu pro sekvenační reakci (Teoretický úvod možné způsoby kvantifikace, možné aplikace a princip postupu kvantifikace, výpočty množství templátu v reakci) - příprava sekvenační reakce (Teoretický úvod typy sekvenačních kitů, popis reagencií, přístrojového vybavení a postupu přípravy reakční směsi, teplotní profil reakce, možnosti modifikací; Míchání a spuštění sekvenační reakce) - v mezičase vyhodnocení výsledků fragmentační analýzy, exkurze do laboratoře sekvenování (Teoretický úvod možnosti hodnocení výstupů FA; Ukončení analýzy FA a vyhodnocení výstupů analýzy vzorků účastníků; Detailní představení přístrojů dle zájmu účastníků; v případě zájmu diskuze k probíraným aplikacím (např. ukázka práce s analytickými softwary )) - purifikace sekvenační reakce (Teoretický úvod způsoby purifikace sekvenačních směsí (výhody a nevýhody), možné modifikace, způsob přípravy vzorků pro analýzu v sekvenátoru, příprava přístroje před runem přehled postupu; Příprava vzorků k analýze a spuštění sekvenační reakce (poběží přes noc, výsledky budou k vyhodnocení den následující) 3

22. 6. 2011 REAL-TIME PCR 8:00 13:00 teoretická část; Ing. Karel Bílek, Ph.D. (SÚJCHBO, v.v.i., Milín); učebna N4002 (32A), 4. patro - Úvod (princip metody, terminologie, chemismy); Výběr a příprava assay (preanalytická příprava vzorků, výběr vhodné assay); Optimalizace metody (pravidla designu primerů a sond, výpočet efektivity reakce, úpravy podmínek reakce); Validace assay (požadavky, normy, standardy, správná laboratorní praxe, matorlologie, akreditace); Zpracování dat (workflow dat, interpretace dat, využití výsledků); Závěr a diskuse 13:00 13:30 přestávka 13:30 17:30 praktická část; Ing. Karel Bílek, Ph.D. (SÚJCHBO, v.v.i., Milín); učebna N4104 (Výuková laboratoř molekulární genetiky), 4. patro - Úvod do cvičení (seznámení se zadáním); Rozdělení úkolů (dle uvážení budou účastníci kurzu provádět AQ, RQ a AD); Praktické provedení úkolů (nastavení přístroje atd.); Diskuse; Vyhodnocení výsledků; Závěr 4

23. 6. 2011 Celogenomové sekvenování, microarrays, bioinformatika: 1. část 8:00 10:00 přednáška Pokroky v celogenomovém sekvenování; Helena Pětrošová (Biologický ústav LF MU v Brně), učebna N4002 (32A), 4. patro - nové sekvenační metody (454 Pyrosekvenace, Solexa, SOLiD, CGS Comparative Genome Sequencing) charakteristika, výhody a nevýhody; srovnání nových metod přesnost, dostupné modifikace (barcoding, pairedend library), doba trvání sekvenace, vstupní materiál; základní aplikace nových metod sekvenace de novo, resekvenace, detekce strukturálních změn, analýza transkriptomu; vyhodnocení přesnosti sekvenačních metod 454, Solexa a CGS; sekvenace de novo sestavování celogenomové sekvence Treponema pallidum kmene Mexico A pomocí metody Solexa; budoucnost sekvenačních metod 10:00-12:00 přednáška Základy microarray technik; Ing. Pavla Chalupová (ÚMFGZ AF MENDELU v Brně); učebna N4002 (32A), 4. patro 12:00-12:30 přestávka 12:30-14:00 přednáška Praktická bioinformatika; Mgr. Jan Mendel, Ph.D. (Ústav biologie obratlovců AV ČR), učebna N5008 (A416), 5. patro - práce se sekvenčními daty volba vhodného molek. markeru, vyhledávání a vkládání sekvencí do databáze GenBank, identifikace organizmu podle podobnosti (algoritmus BLAST), uchovávání sekvenčních dat různé formáty (.fas,.nex.,.phy,.mas, atd.) a konverze formátů (sw, on-line nástroje), tvorba alignmentu (Clustal, specializovaný sw: MEGA, BioEdit, SeqMan) a jeho interpretace. 14:00 17:30 Bioinformatika praktická část; Mgr. Zuzana Vykoukalová, Ph.D. (ÚMFGZ AF MENDELU v Brně), učebna N5008 (A416), 5. patro - práce s genomickými databázemi (EMBL; DDBJ; NCBI Gene, Genome, OMIM; Ensembl; GeneCard; TIGR; ArkDB, aj.) - vyhodnocení sekvenace z předchozího dne (Sequence Scanner v1.0), sestavení kompletní sekvence PCR produktu (ClustalW), identifikace sekvence gen, organismus (BLAST, GenBank, Ensembl), vyhledání sekvence genu u jiných organismů a určení mezidruhové homologie (GenBank, ClustalW), detekce polymorfismů (ClustalW), nalezení vhodných restrikčních endonukleáz (RE) pro testování nalezených polymorfismů (Webcutter), grafické znázornění elektroforetické analýzy výsledku štěpení daného PCR produktu vybranými RE 5

24. 6. 2011 MOLEKULÁRNÍ TAXONOMIE, BIOINFORMATIKA 2. ČÁST 8:00-9:00 přednáška Úvod do molekulární taxonomie; Doc. RNDr. Michal Tomšovský (ÚOLM LDF MENDELU v Brně), učebna N5008 (A416), 5. patro 9:00 10:30 přednáška Fylogenetika; Mgr. Jan Mendel, Ph.D. (Ústav biologie obratlovců AV ČR), učebna N5008 (A416), 5. patro - Fylogenetický strom a veškerá terminologie (kořen, větev, uzel, topologie, typy stromů, atd.), evoluční modely (Modeltest, ProtTest), metody konstrukce fylog. stromu dle kritéria optimality (MP, ML, BI) a dle výpočetního algoritmu (NJ), hodnocení kvality stromu (bootstrapping), ukázky formátu výstupních dat s ohledem na prezentaci výsledků na konferencích a v časopisech (stromy, haplotypové sítě, atd.). 10:30 11:00 přestávka 11:00 14:00 - Praktická ukázka a seznámení se s vybraným spektrem vyhodnocovacích programů; Mgr. Jan Mendel, Ph.D. (Ústav biologie obratlovců AV ČR), učebna N5008 (A416), 5. patro - MEGA, TCS, DnaSP, ModelTest, ProtTest, PAUP, MrBayes, PhyML, FigTree; demonstrace samotného sw i konkrétní ukázky příkladů. 14:00 16:00 přednáška Příklady aplikace molekulární taxonomie u hub a oomycetů; Doc. RNDr. Michal Tomšovský (ÚOLM LDF MENDELU v Brně), učebna N5008 (A416), 5. patro 16:00 17:00 závěrečný test a předávání certifikátů; učebna N5008 (A416), 5. patro Tento projekt je spolufinancován Evropským sociálním fondem a státním rozpočtem České republiky. 6