LRR/BUBCV CVIČENÍ Z BUNĚČNÉ BIOLOGIE 3. TESTY ŽIVOTASCHOPNOSTI A POČÍTÁNÍ BUNĚK

Podobné dokumenty
Téma: Testy životaschopnosti a Počítání buněk

TEORETICKÝ ÚVOD. Počítání buněk

Životaschopnost. (= vitalita = viabilita) počet živých buněk. 100 = [%] počet všech buněk

LRR/BUBCV CVIČENÍ Z BUNĚČNÉ BIOLOGIE 2. PLASMATICKÁ MEMBRÁNA

Ž i v o t n o s t (= životaschopnost = vitalita = viabilita)

Přímé stanovení celkového počtu buněk kvasinek pomocí Bürkerovy komůrky Provedení vitálního testu

Protokol č. 7 Pozorování živých a mrtvých buněk kvasinek Vitální test

Základní pojmy a vztahy: Vlnová délka (λ): vzdálenost dvou nejbližších bodů vlnění kmitajících ve stejné fázi

Určení koncentrace proteinu fluorescenční metodou v mikrotitračních destičkách

POČÍTÁNÍ BUNĚK. Část mřížky Bürkerovy komůrky. Výška prostoru, v němž jsou buňky nad mřížkou počítány, je 0,1 µm

Cvičení 5: VYŠETŘENÍ KRVE Jméno: PŘÍPRAVA TRVALÉHO PREPARÁTU SUCHOU CESTOU - KREVNÍ NÁTĚR

F l u o r e s c e n c e

Fluorescenční mikroskopie

Zoologická mikrotechnika - FLUORESCENČNÍ MIKROSKOPIE

Úloha č. 1 Odměřování objemů, ředění roztoků Strana 1. Úkol 1. Ředění roztoků. Teoretický úvod - viz návod

Cvičení č. 2: Pasážování buněk. 1) Teoretický základ

FYZIOLOGIE ROSTLIN Laboratorní práce č. 3

Řasový test ekotoxicity na mikrotitračních destičkách

Metoda Live/Dead aneb využití fluorescenční mikroskopie v bioaugmentační praxi. Juraj Grígel Inovativní sanační technologie ve výzkumu a praxi

1. Příloha 1 Návod úlohy pro Pokročilé praktikum z biochemie I

Cvičení 4: CHEMICKÉ SLOŽENÍ BUŇKY, PROKARYOTA Jméno: PROKARYOTA PŘÍPRAVA TRVALÉHO PREPARÁTU SUCHOU CESTOU ROZTĚR BAKTERIÍ

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 NÁRODNÍ KOLO. Kategorie E. Zadání praktické části Úloha 2 (30 bodů)

Principy a instrumentace

Stanovení mikroskopického obrazu ve vodě

IZOLACE, SEPARACE A DETEKCE PROTEINŮ I. Vlasta Němcová, Michael Jelínek, Jan Šrámek

POSTUPY PRÁCE. 1.1 Stanovení počtu erytrocytů

Fluorescenční mikroskopie

CHEMIE Pracovní list č.3 žákovská verze Téma: Acidobazická titrace Mgr. Lenka Horutová Student a konkurenceschopnost

Chromoprobe Multiprobe - T System

Fluorescence (luminiscence)

Prezentace navazuje na základní znalosti z biochemie (lipidy, proteiny, sacharidy) Dynamický fluidní model membrány 2008/11

Víme, co vám nabízíme

SpermPack. Oxisperm Halosperm G2 Test na protilátky IgG proti spermiím Test na vitalitu spermií.

RNDr. Ivana Fellnerová, Ph.D. Katedra zoologie PřF UP Olomouc 2008/11. *Ivana FELLNEROVÁ, PřF UP Olomouc*

Stanovení mikroskopického obrazu ve vodě Petr Pumann

VYUŽITÍ PRŮTOKOVÉ CYTOMETRIE PRO DETEKCI ÚČINNOSTI FILTRACE BAKTERIÍ V PROCESECH ČIŠTĚNÍ ODPADNÍCH VOD

Praktické cvičení č. 1.

FLUORESCENČNÍ MIKROSKOP

Inovace výuky chemie. ph a neutralizace. Ch 8/09

Hodnocení pekařského droždí

BOVINE BLOOD NEUTROPHILS: INFLUENCE OF ISOLATION TECHNIQUES TO SURVIVAL KREVNÍ NEUTROFILY SKOTU: VLIV IZOLAČNÍCH TECHNIK NA ŽIVOTNOST

Praktický kurz Monitorování toxicity vybraných cytostatik pomocí MTT testu a real-time monitoringu xcelligence.

Název práce: Rostlinná buňka a látky v ní obsažené. Odstavce Vzdělávací cíl, Pomůcky a Inovace viz následující strana

Fluorescenční sondy. Fluorescenční sondy. Indikátory pro anorganické ionty. Fluorescenční sondy pro využití v analytické chemii, medicíně a biologii

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU KVASINEK RODU SACCHAROMYCES

Analýza aniontových tenzidů v čisticích prostředcích kapilární elektroforézou

MTI Cvičení č. 2 Pasážování buněk / Jana Horáková

METODY VYŠETŘOVÁNÍ BUNĚČNÉ IMUNITY. Veřejné zdravotnictví

SDS polyakrylamidová gelová elektroforéza (SDS PAGE)

Vitální barvení, rostlinná buňka, buněčné organely

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 KRAJSKÉ KOLO. Kategorie E ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (50 BODŮ)

Cvičení č. 2: Pasážování buněk. 1) Teoretický základ

Protokol PT#V/5/2012 Stanovení mikroskopického obrazu v přírodních koupalištích, stanovení sinic a stanovení chlorofylu-a

Moderní nástroje pro zobrazování biologicky významných molekul pro zajištění zdraví. René Kizek

LABORATORNÍ CVIČENÍ Z BIOLOGIE. Téma: STAVBA A FUNKCE MIKROSKOPU, PŘÍPRAVA DOČASNÝCH PREPARÁTŮ

VAKUOLY - voda v rostlinné buňce

MIKROSKOPIE JAKO NÁSTROJ STUDIA MIKROORGANISMŮ

LRR/BUBCV CVIČENÍ Z BUNĚČNÉ BIOLOGIE 4. BUNĚČNÉ JÁDRO A BUNĚČNÉ KULTURY

Stanovení kritické micelární koncentrace

P + D PRVKY Laboratorní práce Téma: Reakce mědi, stříbra a jejich sloučenin

Cvičení ke kurzu Obecná ekotoxikologie. Úloha A - Stanovení ekotoxicity v testu klíčení rostlin

Rostlinná buňka příprava mikroskopického preparátu (laboratorní práce)

BUNĚČNÁ STĚNA - struktura a role v rostlinné buňce

Stanovení α-amylázy v moči

ROSTLINNÁ FYZIOLOGIE OSMOTICKÉ JEVY

Nové metody v průtokové cytometrii. Vlas T., Holubová M., Lysák D., Panzner P.

Využití a princip fluorescenční mikroskopie

BIOLOGICKÁ MEMBRÁNA Prokaryontní Eukaryontní KOMPARTMENTŮ

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 KRAJSKÉ KOLO. Kategorie A ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (40 BODŮ) Časová náročnost 120 minut

KARBOXYLOVÉ KYSELINY

PRŮTOKOVÁ CYTOMETRIE - PERSPEKTIVNÍ ALTERNATIVA V ANALÝZE MIKROBIOLOGICKÝCH UKAZATELŮ KVALITY VOD

EFFECT OF PLANT DEFENSE ELICITORS ON THE LEVEL OF PHYTOHORMONES VLIV ELICITORŮ OBRANNÉ REAKCE NA HLADINU FYTOHORMONŮ

Stanovení izoelektrického bodu kaseinu

Změny v revidované ČSN Jakost vod Biologický rozbor Stanovení biosestonu

ONLINE BIOSENZORY PŘI HLEDÁNÍ KONTAMINACE PITNÉ VODY

téma: Úvodní praktikum autor: Mgr. Michal Novák cíl praktika: Seznámit žáky s náplní praktika doba trvání: 2 místo: odborná učebna biologie

Základy mikroskopování

Sešit pro laboratorní práci z chemie

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 NÁRODNÍ KOLO. Kategorie E. Zadání praktické části Úloha 1 (20 bodů)

Elektrické vlastnosti tkání

PARAZITÉ Z BLÍZKA LARVY MOTOLIC (PRACOVNÍ LIST)

Přístroje v hematologické laboratoři

N Laboratoř hydrobiologie a mikrobiologie

PRÁCE S MIKROSKOPEM Praktická příprava mikroskopického preparátu

ODDĚLOVÁNÍ SLOŽEK SMĚSÍ, PŘÍPRAVA ROZTOKU URČITÉHO SLOŽENÍ

fenanthrolinem Příprava

Podstata krápníkových jevů. Ch 8/07

Všeobecné lékařství 2014/15

Chromoprobe Multiprobe - CLL

TRVALÝ PREPARÁT. Zhotovení roztěru

MOLEKULÁRNÍ METODY V EKOLOGII MIKROORGANIZMŮ

Ústřední komise Chemické olympiády. 53. ročník 2016/2017. KRAJSKÉ KOLO kategorie C. ZADÁNÍ PRAKTICKÉ ČÁSTI (40 BODŮ) časová náročnost: 120 minut

2) Připravte si 3 sady po šesti zkumavkách. Do všech zkumavek pipetujte 0.2 ml roztoku BAPNA o různé koncentraci podle tabulky.

TUKY. Autor: Mgr. Stanislava Bubíková. Datum (období) tvorby: Ročník: devátý

IZOLACE DNA (KIT DNeasy Plant Mini)

Metody testování humorální imunity

Buňka buňka je základní stavební a funkční jednotka živých organismů

3) Kvalitativní chemická analýza

MOLEKULÁRNÍ METODY V EKOLOGII MIKROORGANIZMŮ

Transkript:

LRR/BUBCV CVIČEÍ Z BUĚČÉ BILGIE 3. TESTY ŽIVTASCHPSTI A PČÍTÁÍ BUĚK TERETICKÝ ÚVD: Při práci s buňkami je jedním ze základních sledovaných parametrů stanovení jejich životaschopnosti (viability). Tímto termínem se rozumí určení poměru živých buněk ku celkovému počtu buněk v populaci. Testování životaschopnosti je běžné při práci s buněčnými kulturami a metody studia viability jsou rovněž nezbytné například při určování cytotoxického účinku látek. První skupina metod používaných pro studium viability je založena na neporušenosti a selektivní propustnosti plazmatické membrány živé buňky. Tyto metody využívají barviv s nízkou molekulovou hmotností nesoucích kladný nebo záporný náboj. Tyto sloučeniny mohou procházet pouze přes porušenou membránu mrtvých buněk, zatímco živé buňky zůstávají nezbarvené, neboť jejich intaktní membrána barvivo nepropustí. Tuto skupinu metod můžeme rozdělit na testy kolorimetrické a fluorescenční. Příkladem barviva využívaného pro kolorimetrické stanovení buněčné viability může být například trypanová nebo methylenová modř (br. 1A, B). Zástupcem barviv využívaných pro fluorescenční stanovení životaschopnosti je propidium jodid (br. 1C). A) a + S 3 H 2 H S 3 a + H S 3 a + H 2 a + S 3 H 2 B) C) H 3 C S + CH 3 + + H 2 CH 3 Cl CH 3 I I br. 1: Chemická struktura trypanové modři (A), methylenové modři (B) a propidium jodidu (C).

Další skupinu pak mohou tvořit metody studia životaschopnosti buněk založené na detekci funkčního metabolismu. Principem těchto metod je schopnost živé buňky metabolizovat určitý substrát na derivát, který je následně možné detekovat. a tomto principu je postaven například testování životaschopnosti buněk pomocí fluorescein diacetátu (FDA; br. 2A). FDA je nepolární látka, která snadno prostupuje plazmatickou membránou. V živých buňkách je poté FDA metabolizován na vysoce polární fluorescein (br. 2B), pro který je již membrána dále nepropustná, a proto dochází k jeho hromadění uvnitř buňky. Molekula fluoresceinu se vyznačuje fluorescencí, kterou je možné následně detekovat. Excitační vlnová délka záření pro fluorescein je 490 nm, po ozáření světlem o této vlnové délce dochází k emisi záření o vlnové délce 513 nm. A) B) CH C H 3 H C H 3 br. 2: Chemická struktura fluorescein diacetátu (A) a fluoresceinu (B). a podobném principu je založeno také testování viability za pomoci acetomethoxy derivátu calceinu (calcein AM). Calcein AM je hydrofobní sloučenina, která snadno prochází přes membránu živých, intaktních buněk. Hydrolýzou calceinu AM intracelulárními esterasami vzniká calcein, hydrofilní silně fluorescenční sloučenina (Excitační/emisní vlnová délka calceinu je 495/515 nm). Další nezbytnou dovedností při práci v biologických a medicínských oborech je přesné stanovení počtu buněk ve vzorku. Své nezastupitelné místo nachází například v hematologii při stanovování zastoupení jednotlivých krevních elementů ve vzorku krve. Pro určení koncentrace buněk v suspenzi se využívají dva základní přístupy. První využívá speciálních počítacích komůrek ve spojení se světelnou mikroskopií, druhý přístup využívá automatizovaného počítání za pomoci speciálních přístrojů. Počítací komůrky jsou tvořeny

silným podložním sklem se dvěma vyrytými počítacími sítěmi s přesně danou plochou a hloubkou. Jednou z nejčastěji využívaných počítacích komůrek je Bürkerova komůrka. Počítací síť Bürkerovy komůrky je tvořena 9 velkými čtverci (každý o ploše 1 mm 2 ), které jsou dále rozděleny do 16 menších čtverců (jejich plocha je 0,04 mm 2 ) (br. 3 a Tab. 1). Při počítání buněk pomocí počítací komůrky je nejprve nanesen malý objem testované suspenze mezi krycí a podložní sklo. Takto připravená počítací komůrka se vloží do zorného pole světelného mikroskopu a po zaostření se může přistoupit k samotnému počítání částic. Při počítání mikroskopických částic pomocí počítacích komůrek se započítávají pouze ty, které se nacházejí uvnitř čtverce a částice, které se z vnitřní nebo vnější strany dotýkají dvou stanovených stran (např. horní a levá). Tím se zabrání dvojímu počítání částic. Pro stanovení koncentrace částic v 1 ml suspenze se používá výpočet: X = a. 1000 n. V X koncentrace buněk v 1 ml suspenze a stanovený počet buněk n počet opakování (počet spočítaných čtverců) V objem počítaného útvaru br. 2. Počítací síť Bürkerovy komůrky.

Tab. 1: Velikost útvarů v počítací síti Bürkerovy komůrky. Rozměry Plocha Hloubka bjem Velký čtverec 1 x 1 mm 1 mm 2 0,1 mm 0,1 mm 3 Čtverec A 0,2 x 0,2 mm 0,04 mm 2 0,1 mm 0,004 mm 3 bdélník B 0,05 x 0,2 mm 0,01 mm 2 0,1 mm 0,001 mm 3 Čtverec C 0,05 x 0,05 mm 0,0025 mm 2 0,1 mm 0,00025 mm 3 Při automatizované analýze koncentrace buněk v suspenzi jsou využívány specializované přístroje. Princip měření buněk se u jednotlivých typů přístrojů liší. Příkladem může být elektronické počítání částic, které je založeno na nasávání přesného objemu buněčné suspenze ve slabém elektrolytu úzkou štěrbinou mezi dvěma elektrodami. Průchod buňky způsobí zvýšení odporu, což vyvolá elektrický impuls, který je přístrojem zaznamenán. Úkol č. 1: Stanovení životaschopnosti barvením trypanovou modří Materiál: kultura hmyzích buněk Sf9 (Spodoptera frugiperda) Chemikálie: 0,4% vodný roztok trypanové modři Pomůcky: vortex, automatické pipety + špičky, světelný mikroskop + mikroskopické pomůcky Postup: 1. a vortexu zhomogenizujte buněčnou kulturu. 2. a podložní sklo napipetujte 20 μl buněčné kultury a smíchejte ji s 5 μl trypanové modři. 3. echte inkubovat po dobu 2 min a poté přikryjte krycím sklíčkem. 4. Pozorujte pod mikroskopem. Spočítejte počet živých a mrtvých buněk v 5ti zorných polích při zvětšení objektivu 40x, zapište do tabulky a stanovte viabilitu buněk.

Stanovení procentuální viability buněk: % životaschopnost = (počet živých buněk/celkový počet buněk) x 100 5. Zjištěné hodnoty porovnejte s hodnotami svých spolužáků a srovnání uveďte do protokolu. Stanovení životaschopnosti buněk Sf9 za fyziologických podmínek Zorné pole 1. 2. 3. 4. 5. Celkem Počet živých b. Počet mrtvých b. Výpočet % životaschopnosti Úkol č. 2: Stanovení vlivu vysokých a nízkých teplot na životaschopnost buněk Sf9 Materiál: kultura hmyzích buněk Sf9 (Spodoptera frugiperda) Chemikálie: 0,4% vodný roztok trypanové modři, tekutý dusík Pomůcky: vortex, automatické pipety + špičky, světelný mikroskop + mikroskopické pomůcky, termoblok, kádinka, zkumavky Postup: 1. Připravte si 2 zkumavky eppendorf a popište je svými iniciálami. 2. a vortexu zhomogenizujte buněčnou kulturu a do každé zkumavky napipetujte 40 μl buněčné suspenze. 3. Jednu zkumavku ponořte do nádoby s tekutým dusíkem po dobu 20 min, druhou zkumavku do vodní lázně předehřáté na 90 C po dobu 15 min. 4. Poté napipetujte 20 μl buněčné kultury a smíchejte ji s 5 μl trypanové modři. 5. echte inkubovat po dobu 2 min a poté přikryjte krycím sklíčkem.

6. Pozorujte pod mikroskopem. Spočítejte počet živých a mrtvých buněk v 5ti zorných polích při zvětšení objektivu 40x, zapište do tabulky a stanovte viabilitu buněk. 7. Zjištěné hodnoty porovnejte s hodnotami svých spolužáků a srovnání uveďte do protokolu. Stanovení životaschopnosti buněk Sf9 po působení tekutého dusíku Zorné pole 1. 2. 3. 4. 5. Celkem Počet živých b. Počet mrtvých b. Výpočet % životaschopnosti Stanovení životaschopnosti buněk Sf9 po působení 90 C Zorné pole 1. 2. 3. 4. 5. Celkem Počet živých b. Počet mrtvých b. Výpočet % životaschopnosti Úkol č. 2: Stanovení počtu buněk v suspenzi Materiál: kultura hmyzích buněk Sf9 (Spodoptera frugiperda) Chemikálie: PBS Pomůcky: vortex, automatické pipety + špičky, světelný mikroskop + mikroskopické pomůcky, zkumavky, Bürkerova komůrka Postup: 1. a vortexu zhomogenizujte buněčnou kulturu

2. apipetujte 15 μl suspenze na hranu krycího skla Bürkerovy komůrky tak, aby suspenze rovnoměrně pokrývala celou počítací plochu komůrky. 3. ejprve při malém zvětšení objektivu (4x) najděte počítací síť a poté při větším zvětšení objektivu (10x) spočítejte buňky ve 3 velkých čtvercích ohraničených trojitou čarou, tj. čtverec o ploše 16x (A+2B+C). 4. Stanovte počet buněk v 1 ml suspenze a ze tří hodnot vypočítejte průměr. 5. Poté buněčnou suspenzi zřeďte 3x v roztoku PBS a stejným způsobem stanovte počet buněk v 1 ml suspenze. nezředěná suspenze zředěná suspenze Čtverec Bürkerovy komůrky 1. 2. 3. 1. 2. 3. Počet buněk Počet buněk v 1 ml suspenze Průměr tázky: 1. Vysvětlete rozdíly mezi principy při určování viability buněk pomocí barvení trypanovou modří a FDA. Vysvětlete, která z použitých metod barví živé a která neživé buňky a proč. 2. Jaké další typy počítacích komůrek znáte? Uveďte několik příkladů.