Optické a elektroforetické metody v biochemii 1

Podobné dokumenty
Příklady biochemických metod turbidimetrie, nefelometrie. Miroslav Průcha

Základy fotometrie, využití v klinické biochemii

kvantitativní stanovení proteinurie (biuretová reakce)

Evropský sociální fond Praha & EU: Investujeme do vaší budoucnosti ELEKTROMIGRAČNÍ METODY

Elektromigrační metody

Proteiny krevní plazmy SFST - 194

SPEKTROSKOPICKÉ VLASTNOSTI LÁTEK (ZÁKLADY SPEKTROSKOPIE)

IMUNOCHEMICKÉ METODY

Katedra laboratorních metod LF MU Mgr. Jana Gottwaldová

Elektroforéza. Rozdělení proteinů na základě pohyblivosti v el. poli

Metody testování humorální imunity

Elektroforéza. Rozdělení proteinů na základě pohyblivosti v el. poli

laktoferin BSA α S2 -CN α S1 -CN Popis: BSA bovinní sérový albumin, CN kasein, LG- laktoglobulin, LA- laktalbumin

E = h ν = h c / λ. kde h je Planckova konstanta, ν frekvence absorbovaného záření, c rychlost světla ve vakuu, λ vlnová délka absorbovaného záření.

Stanovení biochemicky významných flavinů pomocí kapilární elektroforézy s fluorescenční detekcí

13. Spektroskopie základní pojmy

Úvod do spektrálních metod pro analýzu léčiv

VYŠETŘENÍ BÍLKOVIN V KREVNÍM SÉRUA V MOČI.ELEKTROFORÉZA PROTEINŮ

1. Příloha 1 Návod úlohy pro Pokročilé praktikum z biochemie I

Biochemická laboratoř

Humorální imunita. Nespecifické složky M. Průcha

nano.tul.cz Inovace a rozvoj studia nanomateriálů na TUL

IMUNOANALÝZA elektroforetické separační metody. 3. ročník Klinická biologie a chemie

STŘEDNÍ ODBORNÁ ŠKOLA a STŘEDNÍ ODBORNÉ UČILIŠTĚ, Česká Lípa, 28. října 2707, příspěvková organizace

Úloha 1 Stanovení katalytické koncentrace aspartátaminotransferázy (AST)

Klinicko-biochemická diagnostika

ZÁKLADY OBECNÉ A KLINICKÉ BIOCHEMIE

Analýza proteinů. Stanovení bílkovin. Elektroforéza plazmatických bílkovin

Refraktometrie, interferometrie, polarimetrie, nefelometrie, turbidimetrie

Diagnostické metody v analýze potravin. Matej Pospiech, FVHE Brno

Optické metody. Mgr. Jana Gottwaldová

Metody testování humorální imunity

Precipitace, radioimunodifúze (RID), nefelometrie, turbidimetrie

12. seminář. Nefelometrie a turbidimetrie Chiroptická aktivita (Polarimetrie) Interferometrie Fotoluminiscenční spektroskopie

Krevní plazma organické a anorganické součásti, význam minerálů a bílkovin krevní plazmy. Somatologie Mgr. Naděžda Procházková

2. Fluorimetrie princip, konstrukce fluorimetru, hlavní součásti a jejich funkce (zdroj záření, primární a sekundární záření, detektor)

Precipitační a aglutinační reakce

Bílkoviny. Miroslava Beňovská OKB FN Brno a KLM LF MU

Kurz 1 Úvod k biochemickému praktiku

Parametry metod automatické fotometrické analýzy

Proteiny v plazmě. Vladimíra Kvasnicová

Úvod k biochemickému praktiku. Pavel Jirásek

KATALOG DIAGNOSTICKÝCH SETŮ S K A L A B 2018

Průtokové metody (Kontinuální měření v proudu kapaliny)

Optické metody Absorpční fotometrie

APLIKOVANÉ ELEKTROMIGRAČNÍ METODY

Laboratorní cvičení 9

Vizualizace DNA ETHIDIUM BROMID. fluorescenční barva interkalační činidlo. do gelu do pufru barvení po elfu SYBR GREEN

Stanovení hemoglobinu v krvi

VYŠETŘENÍ BÍLKOVIN V KREVNÍM SÉRU A V MOČI. STANOVENÍ DUSÍ KATÝCH LÁTEK.

Optické metody. Denzitometrie Vertikální fotometrie Reflexní fotometrie

1. Proteiny. relativní. proteinu. Tento. České republiky.

Fakultní nemocnice u sv. Anny v Brně Laboratoře Oddělení klinické biochemie Pekařská 53, Brno

MMN, a.s. Oddělení laboratoře Metyšova 465, Jilemnice

ZÁSADY SPRÁVNÉ LABORATORNÍ PRAXE VYBRANÁ USTANOVENÍ PRAKTICKÉ APLIKACE

Přístroje v hematologické laboratoři

Glukóza, glykovaný hemoglobin, glykované proteiny. Glykované proteiny mechanismus glykace, stanovení ve formě formazanů.

Fluorescence (luminiscence)

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 NÁRODNÍ KOLO. Kategorie E. Zadání praktické části Úloha 2 (30 bodů)

Izolace genomové DNA ze savčích buněk, stanovení koncentrace DNA pomocí absorpční spektrofotometrie

Chemické výpočty II. Vladimíra Kvasnicová

synlab czech, s.r.o. Laboratoř Plzeň, Majerova 2525/7 Majerova 2525/7, Plzeň

ÚSTAV LÉKAŘSKÉ BIOCHEMIE 1.LF UK. Elektroforesa. v biochemii. Jan Pláteník. (grafická úprava obrázků Richard Buchal)

VYŠETŘENÍ META BOLISM U LIPIDŮ A

Proteiny krevní plazmy. Tereza Popelková, Bruno Sopko

Úvod k biochemickému. mu praktiku. Vladimíra Kvasnicová

1. Laboratoř klinické biochemie a hematologie Zahradníkova 494/2, Brno 2. Odběrové místo Jugoslávská 13, Brno. Identifikace postupu vyšetření

Molekulová spektroskopie 1. Chemická vazba, UV/VIS

SPEKTROSKOPICKÉ VLASTNOSTI LÁTEK

Příloha je nedílnou součástí osvědčení o akreditaci č.: 146/2017 ze dne:

Molekulárně biologické metody v mikrobiologii. Mgr. Martina Sittová Jaro 2014

Spektroskopie v UV-VIS oblasti. UV-VIS spektroskopie. Roztok KMnO 4. pracuje nejčastěji v oblasti nm

BÍLKOVINY V LIDSKÉM ORGANISMU

Imunochemické metody. na principu vazby antigenu a protilátky

Endokrinologický ústav Laboratorní komplement Endokrinologického ústavu Národní 8, Praha 1

Stanovení paracetamolu, kofeinu a propyfenazonu v tabletách Valetol

Jana Fauknerová Matějčková

ABSORPČNÍ A EMISNÍ SPEKTRÁLNÍ METODY

Biofyzika laboratorní cvičení

Distribuce. Doc. PharmDr. František Štaud, Ph.D. Katedra farmakologie a toxikologie Univerzita Karlova v Praze Farmaceutická fakulta v Hradci Králové

Rozdělení imunologických laboratorních metod

Biochemické vyšetření

Spektroskopické é techniky a mikroskopie. Spektroskopie. Typy spektroskopických metod. Cirkulární dichroismus. Fluorescence UV-VIS

Biochemické vyšetření mozkomíšního moku. MUDr. Zdeňka Čermáková OKB FN Brno

SPEKTRÁLNÍ METODY. Ing. David MILDE, Ph.D. Katedra analytické chemie Tel.: ; (c) David MILDE,

Evropský sociální fond Praha & EU: Investujeme do vaší budoucnosti IMUNOCHEMICKÉ METODY

Anizotropie fluorescence

2) Připravte si 3 sady po šesti zkumavkách. Do všech zkumavek pipetujte 0.2 ml roztoku BAPNA o různé koncentraci podle tabulky.

UNIVERZITA KARLOVA V PRAZE FARMACEUTICKÁ FAKULTA V HRADCI KRÁLOVÉ Katedra biochemických věd ELEKTROFORÉZA BÍLKOVIN

1. Biochemická a hematologická laboratoř MZ-BIOCHEM Poliklinika sv. Alžběty, Vodní 13, Uherské Hradiště

Precipitace, radioimunodifúze (RID), nefelometrie, turbidimetrie

vysoká schopnost regenerace (ze zachovalých buněk)

IMMUNOGLOBULINUM HUMANUM NORMALE AD USUM INTRAVENOSUM. Imunoglobulin lidský normální pro intravenózní podání

Příloha č.: 1 ze dne: je nedílnou součástí osvědčení o akreditaci č.: 121/2011 ze dne:

Afinitní kapilární elektroforéza

CENÍK PRO SAMOPLÁTCE ze zemí EU a smluvních států, jejichž péče není hrazena českou zdravotní pojišťovnou (kód 888)

Imunoblot, imunoelektroforéza

Ústřední komise Chemické olympiády. 55. ročník 2018/2019 TEST ŠKOLNÍHO KOLA. Kategorie E ZADÁNÍ (60 BODŮ) časová náročnost: 120 minut

Transkript:

Optické a elektroforetické metody v biochemii 1 Spektrofotometrie absorbance, transmitance, Lambertův-Beerův zákon. Zákalové metody nefelometrie, turbidimetrie. Elektroforéza princip, elektroforetická pohyblivost, základní typy. Spektrofotometrie Homogenní Monochromatické záření 0 Transmitance T T = Absorbance A 1 A = log = ε c l 0 T 1. Vymezte vlnové délky odpovídající viditelné a ultrafialové oblasti světla. 2. Formulujte a vysvětlete Lambertův-Beerův zákon. Uveďte, za jakých podmínek zákon platí (druh světla, koncentrace). 3. Co je to ε, jakou má jednotku. 4. Vypočítejte odpovídající absorbance, je-li propustnost světla T = 10, 50 a 100 %. 5. Za jakých podmínek platí vztah: A 1 = c 1 A c 2 2 6. Co je to absorpční křivka určité látky? Které charakteristické hodnoty jsou na absorpční křivce určovány? 7. Které látky lze stanovovat fotometricky? Lze fotometricky stanovit i koncentraci nebarevných látek? 8. Jakou roli má při fotometrickém stanovení standardní? 9. Co je to tzv. slepý pokus (blank)? 10. Pokud chceme fotometricky stanovit koncentraci látky, můžeme v principu použít tři postupy. Vysvětlete podrobněji postup u všech tří metod a uveďte příslušné vztahy pro zjištění koncentrace: a) změřit absorbanci látky a koncentraci spočítat pomocí molárního absorpčního koeficientu b) změřit absorbanci látky a absorbanci série standardních ů o různé koncentraci c) změřit absorbanci látky a absorbanci jednoho standardu 11. Vzorek nitrofenolu má při vlnové délce 420 nm absorbanci A = 0,54. Jaká je koncentrace nitrofenolu, je-li jeho molární absorpční koeficient ε = 13 900 l.mol 1.cm 1? (0,038 mmol.l 1 ) 1

12. Vypočtěte molární absorpční koeficient látky, která v kyvetě o tloušťce l cm vykazuje při dané vlnové délce absorbanci A = 0,805 a jejíž koncentrace je 0,5 mmol.l 1. (1610 l.mol 1.cm 1 ) 13. Molární absorpční koeficient NADH má hodnotu 6220 l.mol 1.cm 1. Uveďte, jakou absorbanci by měl mít NADH o koncentraci 50 µmol.l 1. (0,311) 14. Vypočtěte koncentraci cholesterolu v séru, jestliže bylo zjištěno: 0,1 ml standardního u cholesterolu (5 mmol.l 1 ) smíchaného s 3 ml činidla má při 580 nm absorbanci A STD = 0,39 (proti destilované vodě). Za stejných podmínek má 0,1 ml vzorku séra s 3 ml činidla absorbanci A VZ = 0,54. Absorbance u činidla proti destilované vodě je 0,1. (7,6 mmol.l 1 ) 15. Reakční směs pro měření aktivity laktátdehydrogenasy v séru má obsahovat pyruvát (1,5 mmol.l 1 ) a NADH (0,22 mmol.l 1 ). Před zahájením enzymové reakce byla změřena absorbance reakční směsi A 340 = 0,84. Molární absorpční koeficient NADH má pro danou vlnovou délku hodnotu 6 220 l.mol 1.cm 1. Rozhodněte, zda koncentrace NADH v reakční směsi dosahuje požadované hodnoty. Pokud ne, spočítejte aktuální koncentraci NADH. (0,135 mmol.l 1 ) 16. Při měření koncentrace glukosy v plazmě bylo zjištěno: absorbance vzorku A vz = 0,75. Absorbance u standardního u glukosy (5 mmol.l 1 ) byla A STD = 0,50. Standard i vzorky byly měřeny proti slepému pokusu obsahujícím všechny reagencie kromě glukosy při 495 nm. Jaká je koncentrace glukosy v plazmě? (7,5 mmol.l 17. Při měření koncentrace kreatininu v moči bylo zjištěno: absorbance vzorku A vz = 0,103 ; absorbance u standardu A st = 0,083 ; koncentrace standardu c kreatinin = 150 μmol/l. Moč byla zředěna 50x, diuréza 1,35 litru. Vypočítejte látkovou koncentraci kreatininu v moči, a dále vypočítejte exkreci kreatininu v mmol/den a g/den. (M r (kreatinin) =113) (12,56mmol/den; 1,42g/den) Fluorimetrie Homogenní Monochromatické záření λ EXCT λ EXCT < λ EMT λ EMT ntenzita fluorescence Φ F Přístroje: fluorimetry Využití: např. stanovení vitaminů, hormonů, využití ve fluorescenčních optických elektrodách (po 2, ph, Na +, K +, Cl ), průtoková cytometrie. 18. Uveďte, která ze dvou optických metod absorpční spektrofotometrie nebo fluorimetrie je citlivější a která specifičtější. 2

Zákalové metody Turbidimetrie Koloidní Monochromatické záření 0 Turbidance A T 0 A T = log ~ konst. c Přístroje: turbidimetry, absorpční fotometry Nefelometrie Koloidní He-Ne laser 0 (λ > 600 nm) 1 ~ ~ konst. c 4 λ Přístroje: nefelometry Využití zákalových metod: imunochemická stanovení proteinů 17. Co je společné pro turbidimetrii a nefelometrii, čím se od sebe tyto metody odlišují? 18. Při imunoprecipitačních reakcích dochází k vzájemné reakci mezi antigenem a protilátkou za vzniku imunokomplexů. Tvorba imunokomplexů je často provázena tzv. sekundárními jevy. Mezi ně patří zejména precipitace a aglutinace. Pokud reakce probíhá v u, důsledkem sekundárních jevů je vznik zákalu, jehož intenzitu lze měřit nefelometricky nebo turbidimetricky. Navrhněte způsob stanovení velmi nízkých koncentrací albuminu v moči pomocí zákalových metod. Jaké by bylo složení reakční směsi? V klinicko-biochemických laboratořích jsou výše uvedené optické metody uplatněny v automatických biochemických analyzátorech. (viz Videozáznam Biochemické analyzátory) 3

Elektroforetické metody Princip: dělení nabitých částic na základě různé pohyblivosti v elektrickém poli Elektroforetická pohyblivost: v μ = = konst. E Q η r kde v rychlost částice, E potenciálový spád (V/cm), Q celkový náboj, η viskozita prostředí, r poloměr částice Hlavní faktory ovlivňující dělení: potenciálový spád velikost náboje částic velikost molekul ph prostředí vlastnosti nosiče (elektroendoosmóza pohyb hydratovaných H + ke katodě), adsorpce, molekulově síťový efekt) teplota 18. Co určuje celkový náboj proteinu? 19. Jakým způsobem ovlivňují elektroforetickou mobilitu výše uvedené faktory? Schématické znázornění horizontální elektroforézy nosič elektrolyt + Příklady nosičů používaných při elektroforéze Nejběžnější typy nosičů Dělení v závislosti na Počet frakcí proteinů krevního séra Celulosa (papír) Q 5 6 Acetylcelulosa Q 5 7 Agar, agarosa Q + (M r ) 7 8 Polyakrylamidový gel (PAG) Q + M r 25 30 4

Elektroforéza proteinů krevního séra (videozáznam) Elektroforeogram a densitogram proteinů lidského séra na acetylcelulose při ph 8,6 + albumin α α 2 β γ Charakteristika frakcí při elektroforéze proteinů krevní plazmy na celulose nebo agarose Frakce Charakteristika Příklad proteinů Albumin výrazný pás v čele Prealbumin (transthyretin), albumin α 1 -Globuliny nevýrazný úzký pás α 1 -Kyselý glykoprotein, α 1 -antitrypsin, α 1 -fetoprotein, α 1 - mikroglobulin, α-lipoprotein (HDL) α 2 -Globuliny difúzní pás Ceruloplasmin, haptoglobin, ferritin, α 2 -makroglobulin β-globuliny často rozděleny na β 1 a β 2 Hemopexin, transferrin, fibrinogen, β-lipoprotein (LDL), složky C3 a C4 komplementu, C-reaktivní protein γ-globuliny velmi široký pás gm, ga, ge, gd, gg 20. Na obrázku je popsán typický elektroforeogram proteinů krevní plazmy při akutním zánětu v porovnání s standardním. Které frakce jsou zvýšeny? Pokuste se vysvětlit proč. (vezměte v úvahu, že při zánětu se zvyšuje plazmatická koncentrace proteinů akutní fáze, což jsou zejména ceruloplasmin, C3, C4, α 1 -antitrypsin, α 1 -antichymotrypsin, haptoglobin, hemopexin, fibrinogen, C-reaktivní protein a další). 5

Detergentová elektroforéza (SDS-elektroforéza) Princip: anionty SDS (dodecylsulfátu sodného) vazbou na proteiny, udílí proteinům stejnoměrný záporný měrný náboj; dělení podle velikosti molekul (μ ~ 1 / log M r ) S S S S SDS R-SH SH SH SH SH + R-S-S-R nativní protein komplexy SDS-protein Využití: separace DNA, proteinů Využití SDS-elektroforézy při určení typu proteinurie: Elektroforéza proteinů v moči je významný ukazatel poškození ledvin. Podle molekulové hmotnosti (velikosti molekul) je možné odlišit tubulární proteinurii od glomerulární a smíšené (identifikovat poškození tubulů nebo glomerulů). Elektroforeogram proteinů (SDS-PAGE) ga, gg transferrin albumin α1-antitrypsin α1-kyselý glykoprotein hemoglobin (dimer) retinol vázající protein hemoglobin (monomer) β2-mikroglobulin - + M r. 10 3 150 89 67 54 44 32 22 16 12 glomerulární proteinurie tubulární proteinurie selektivní prerenální proteinurie neselektivní proteinurie smíšené (glomerulotubulární) a postrenální Typ proteinurie Glomerulární Tubulární Smíšená Typický nález Exkrece proteinů s M r > 70 000, vč. albuminu (transferrin, gg, ga, α 2 -makroglobulin, haptoglobin). Exkrecí proteinů s M r < 70 000 (β 2 -mikroglobulin, lysozym, retinolvázající protein, α 1 -mikroglobulin, volné lehké řetězce imunoglobulinů (tzv. Bence Jonesova bílkovina) a jejich dimery. Exkrece nízko- i vysoko-molekulárních proteinů. 6

21. V moči byl SDS-elektroforézou prokázán albumin a transferrin. Nízkomolekulární proteiny (β 2 -mikroglobulin a retinol-vázající protein nebyly prokázány. O jaký typ proteinurie se jedná? Dvojrozměrná elektroforéza (2D-elektroforéza) 1. dělení podle p 2. dělení podle Q nebo M r + + Využití: separace komplexní směsi proteinů na jednotlivé proteiny, katalogizace proteinů v buňce/organismu ve vztahu k fyziologickým/patofyziologickým procesům (proteomika) Kapilární elektroforéza (CE) Vyžívá elektrokinetických principů elektroforézy a elektroosmózy k separaci látek uvnitř křemenné kapiláry. Vzhledem k vysokému poměru povrchu kapiláry k jejímu objemu dochází k rychlému odvodu tepla, vznikajícího při průchodu elektrického proudu kapilárou. To umožňuje použít mnohonásobně vyššího proudu než u klasické gelové elektroforézy s velmi rychlou separací proteinů. Doba dělení se pohybuje mezi 5 15 minutami. Malý objem dělící kapiláry dovoluje použít objem vzorku řádově v nanolitrech. K detekci rozdělených frakcí proteinů se používá UV, fluorescenční a elektrochemický detektor. Metoda slouží doposud hlavně k výzkumným účelům, její aplikace však jsou zaváděny i do rutinních aplikací ve větších klinicko-biochemických laboratořích. 7