Metody v histologii Mikroskop 2013 Vj. 4
Organizace praktických cvičení Příprava histologického preparátu Mikroskop Barvicí metody Práce s mikroskopem (preparáty)
Oraganizace praktických cvičení Prezence Vstupní test (pětiminutovka) Pracovní sešit nutný!!! Prohlížení preparátů v mikroskopu (Opakování- popis elektronogramů nebo preparátů, případně náhrada zrušených praktik)
Zobrazení živých buněk Jednobuněčné organismy Mnohobuněčné organismy: gamety, krvinky, buňky z tkáňových kultur Pozorování buď speciálním mikroskopem (fázový kontrast) nebo po barvení supravitálními barvivy
Zobrazení živých buněk
Odběr Odběr tkání a buněk: Ze živého organismu (BIOPSIE) Z mrtvoly (NEKROPSIE) Je nutno provést fixaci, jinak se tkáň vlivem vlastních enzymů a působením bakterií rozloží (AUTOLÝZA) Blok tkáně pro fixaci ve světelné mikroskopii nemá být větší než 1cm3
Fixace Fixace zastaví metabolické děje v buňce buď jejich zpomalením nebo denaturací enzymů. Fyzikální metody: Teplo (mikrovlnná trouba) Zmražení (tekutý dusík 170 oc) Chemické metody: Imerzní (ponoření do fixační tekutiny) Perfuzní (nástřik cév)
Chemická fixace Aldehydy Formaldehyd, glutaraldehyd Alkoholy Methanol, ethanol Kyseliny Kyselina octová, trichloroctová, pikrová Soli těžkých kovů Chlorid rtuťnatý, oxid osmičelý,dvojchroman draselný
Fixační tekutiny Formaldehyd 4% Bouinova tekutina trinitrofenol, formol, kys.octová Susa chlorid rtuťnatý, chlorid sodný, kys.octová, kys.trichloroctová, formol Zenkerova tekutina chlorid rtuťnatý, dvojchroman draselný,síran sodný, kys. octová Carnoy ethanol, chloroform, kys.octová Methacarn Methanol, chloroform, kys.octová
Zalévání a krájení Pro krájení je nutno tkáň zpevnit zalitím do zalévacích médií (parafin, celloidin). Protože tato media nejsou mísitelná s vodou, je nutno vodu z tkání odstranit vzestupnou řadou alkoholů (odvodnění) a poté prosytit rozpouštědlem zalévacího media (xylen, toluen, aceton), který tkáň projasní.
Zalévání V malém množství se tkáň prosycuje parafinem v kádinkách v termostatu Pro provoz na patologii slouží přístroje na automatické zalévání
Přístroj na zalévání
Krájení Tkáň je třeba nakrájet na řezy o tloušťce jedné vrstvy buněk, tedy m. Tkáň je pak průhledná a dobře čitelná Přístroje, které se k tomu užívají se jmenují mikrotomy. Nakrájené řezy se dávají na podložní sklo, kde se teplem natáhnou. K přilepení se používá bílek-glycerin
Mikrotom
Mikrotomové nože
Barvení Umožňuje rozlišení jednotlivých součástí buněk a tkání. Barviva jsou rozpustná ve vodě, proto je třeba z řezu odstranit parafin. Po obarvení se řez montuje do pryskyřic. Tak vzniká trvalý preparát, který se prohlíží v mikroskopu.
Barvení Z řezů je třeba odstranit parafin a znovu je zavodnit, aby bylo možno tkáně barvit. Většina barviv je rozpustných ve vodě.
Přístroj na barvení
Trvalý preparát Po obarvení se z tkáně znovu odstraní voda Trvalý preparát se připraví přilepením krycího skla pomocí kanadského balzámu ( má stejný lom světla jako sklo) nebo umělých pryskyřic Po zaschnutí vznikne TRVALÝ PREPARÁT
Postup Parafínové řezy Kryostatové řezy Fixace Zmražení při 170 oc Vypírání Odvodnění řadou alkoholů Prosycení rozpouštědlem Zalití do parafínu Krájení Krájení v kryostatu Nalepení řezů na podložní sklo Nalepení řezů na podložní sklo Odparafínování a zavodnění Někdy krátká fixace Převedení do vody Barvení, histochemická reakce Zejména histochemické reakce Odvodnění a projasnění Někdy odvodnění a projasnění Montovací medium zpravidla bezvodé Bezvodé medium nebo glycerin -želatina
Mikroskop Stativ Mikrometrický šroub Optický systém: Okuláry Objektivy Kondenzor Zdroj
Rozlišovací schopnost Rozlišovací schopnost je nejmenší vzdálenost mezi dvěma body, při které je ještě dovedeme rozlišit jako dva samostatné objekty. Rozlišovací schopnost světelného mikroskopu je 0,2 m.
Barvení Přehledná Hematoxylin eosin Massonovy trichromy Weigert van Gieson Heidenhainův železitý hematoxylin Selektivní Weigert resorcin fuchsin Impregnace stříbrem
Hematoxylin - eosin Hematoxylin barví kyselé součásti buňky (bazofilní struktury) DNA, RNA, tj. jádro, jadérko, ribozomy a granulární endoplasmatické retikulum Eosin barví zásadité struktury buňky (acidofilní, eosinofilní) což jsou hlavně proteiny, tj. cytoplasmu, mitochondrie, hladké endoplasmatické retikulum,a kolagen v mezibuněčné hmotě
Hematoxylin - eosin
AZAN Azokarmín barví jadra červeně Anilínová modř barví kolagenní vlákna a mucin modře Oranž G barví cytoplasmu buněk a svaly oranžově Erytrocyty jsou červené
AZAN
Weigert van Gieson Weigertův hematoxylin barví jádra šedě Saturnová červeň (nebo kyselý fuchsin) barví kolagenní vlákna červeně Kyselina pikrová barví cytoplasmu buněk a svalovinu žlutě
Weigert van Gieson Nalepení řezů na podložní sklo
Weigert - van Gieson
Hematoxylin - eosin
Weigert-van Gieson
Zelený Massonův trichrom Hematoxylin barví jádra modře až černě Kyselý fuchsin barví svalovinu červeně Světlá zeleň barví kolagenní vlákna zeleně. Erytrocyty jsou červené
Zelený Massonův trichrom
AZAN
Žlutý Massonův trichrom Hematoxylin barví jádra modře až černě Erythrosin barví svalovinu červeně Šafrán (Tuchechtgelb) barví kolagenní vlákna žlutě Erytrocyty jsou červené
Žlutý Massonův trichrom
Weigert resorcin - fuchsin Resorcin fuchsin barví elastická vlákna fialově Selektivní barvení na elastiku
Weigert resorcin - fuchsin
Heidenhainův železitý hematoxylin Heidenhainův železitý hematoxylin barví nejen jádra ale i cytoplasmu šedo-černě. Používá se pro barvení svalů a v parazitologii na průkaz parazitů (červů) v tkáních
Heidenhainův železitý hematoxylin
Impregnace stříbrem Stříbro barví kolagenní a retikulární vlákna hnědě až černě. Impregnace stříbrem se používá i pro barvení neuronů a glie v neurohistologii.
Impregnace stříbrem
Kresylvioleť Kresyl violeť barví DNA a RNA v buňce fialově. Znázorní tedy jádro, jadérko, granulární endoplasmatické retikulum (Nisslovu substanci) v neuronech
Kresylvioleť
Kresylvioleť
Výsledky barvicích metod Barvení Barvivo Jádro Kolagen Elastika Svaly Poznámka Hematoxylin-eosin Hematoxylin Eosin modré až černé růžový růžové Weigert van Gieson Weigertův hematoxylin Saturnová červeň Trinitrofenol hnědé červený žluté místo Saturnové červeni se používá také kyselý fuchsin, žluté -vše kromě kolagenu AZAN Azokarmín Anilínová modř Oranž G červené modrý oranžově červené červené - erytrocyty modrý - mucin Modrý Massonův trichrom Hematoxylin Kyselý fuchsin Anilínová modř modré až černé modrý červené červené - erytrocyty modrý - mucin Žlutý Massonův trichrom Hematoxylin Erytrosin Šafrán modré až černé žlutý červené červené erytrocyty možno použít i kyselý fuchsin a Tuchecht gelb Zelený Massonův trichrom Hematoxylin Kyselý fuchsin Světlá zeleň modré až černé zelená červené červené - erytrocyty Weigertův resorcinfuchsin Resorcin Fuchsin Impregnace Ag AgNO3 šedo-černé retikulární vlákna - černá Heidenhainův železitý hematoxylin HŽH Heidenhainův železitý hematoxylin fialová hnědý hnědé až černé šedo-černé
Co je třeba umět? Co je to fixace? Proč a jak se dělá. Jak se připraví preparát přehled. Základní barvení. Jak se co obarví. Proč se používají různá barvení? Barvení hematoxylinem eosinem. Rozlišovací schopnost světelného mikroskopu