C V. EXCELLYSE I 100 ml Lysing solution. EXCELLYSE I 30 ml Lysing solution ED7065 ED7064 ENGLISH. 1. Intended use. 2. Introduction

Transkript

1 C V 1. Intended use ENGLISH EXCELLYSE I 100 ml Lysing solution ED7065 h EXCELLYSE I 30 ml Lysing solution ED7064 h Warning: The reagent contains formaldehyde and methanol Harmful The EXCELLYSE I lysing solution is intended for red blood cell lysis following antibody staining of human peripheral blood leukocytes. The lysing solution is appropriate for use with EXBIO single colour monoclonal antibodies and KOMBITEST TM reagents and may be used in both lyse/wash and lyse/no wash protocol. 2. Introduction Leukocyte analysis and detection in peripheral blood requires elimination of interfering cells, mainly erythrocyte. Ficoll density gradient method is usually used to separate leukocytes from whole blood. This method is rather time consuming and may lead to a loss of certain leukocyte subsets. Direct blood sample staining followed by red blood cell lysis therefore takes place in clinical laboratories as a fast and accurate method for whole blood flow cytometry analysis. 3. Reagent provided The content of the vial (100 or 30 ml) is sufficient for or tests, respectively. The lysing solution is ready to use. 4. Storage Store the EXCELLYSE I at 2-25 C. 5. Precautions Intended for In Vitro Diagnostic use in laboratories outside USA and Canada. This CE-IVD reagent is in conformity with the European In Vitro Diagnostic Medical Device Directive 98/79/EC. Do not use after expiration date stamped on vial label. Do not use if any discoloration or precipitation occurs. Do not freeze. Avoid contamination of the reagent. Any non-performance of lysing protocol may produce false results. Blood samples are considered as potentially infectious and must be handled with care. Avoid all contact of the sample with the skin, eyes and mucosa. R-phrases S-phrases Limited evidence of a carcinogenic effect. May cause sensitisation by skin contact. Avoid contact with skin. Wear suitable protective clothing and gloves. 6. Necessary material not supplied Material necessary for collection of peripheral blood, test tubes for blood sample staining (e.g mm), automatic pipettes with disposable tips, vortex mixer, centrifuge, phosphate buffered saline (PBS), deionized water, appropriate fluorescentdye-labeled primary/secondary antibody, flow cytometer. 7. Lyse/no wash lysing protocol 1. Collect peripheral blood in a sterile tube with an anticoagulant (e.g. Heparin, EDTA). 2. Follow instructions for whole blood antibody staining. 3. Add 100 µl of lysing solution per 50 µl of whole blood. Mix the tube with a vortex mixer. 4. Incubate for about 2-5 minutes at room temperature. 5. Add 1 ml of deionized water to the tube, mix well, and incubate for about 5-10 minutes, until the blurry blood sample solution becomes clear. 6. Analyze the sample immediately using flow cytometer or store the sample at 2-8 C in the dark and analyze within 24 hours. No further cell fixation is required. See figures 1 and 2 for example data. 8. Lyse/wash lysing protocol 1. Collect peripheral blood in a sterile tube with an anticoagulant (e.g. Heparin, EDTA). 2. Follow manufacturer s instructions for whole blood antibody staining. 3. Add 100 µl of lysing solution per 50 µl of whole blood. Mix the tube with a vortex mixer. 4. Incubate for about 2-5 minutes at room temperature. 5. Add 2-3 ml of deionized water to the tube, mix well, and incubate for about 5-10 minutes, until the blurry blood sample solution becomes clear. 6. Centrifuge the tube for 5 minutes at 300 g. 1/5

2 7. Remove supernatant and resuspend the pellet with ml of PBS. 8. Analyze the sample immediately using flow cytometer or store the sample at 2-8 C in the dark and analyze within 24 hours. No further cell fixation is required. See figures 3 and 4 for example data. 9. Limitations Red blood cells from abnormal patients may be resistant to lysis using lysing solutions. Flow cytometer may produce false results if the device has not been aligned and maintained appropriately. Data may be incorrectly interpreted if fluorescent signals were compensated wrongly or if gates were positioned inaccurately. Blood samples from abnormal patients may exhibit abnormal values of positive cells. 1. Použití ČESKY Lyzační roztok EXCELLYSE I umožňuje lyzi červených krvinek po značení leukocytů v lidské periferní krvi. Tento lyzační roztok je vhodný pro použití se značenými protilátkami EXBIO včetně reagencií produktové řady KOMBITEST TM. Lyzační činidlo může být použito v rámci promývacího (lyse/wash) a nepromývacího (lyse/no wash) protokolu. 2. Úvod Analýza a detekce leukocytů v lidské periferní krvi pomocí průtokové cytometrie vyžaduje odstranění červených krvinek erytrocytů. Alternativně používaná metoda Ficollového dělení na základě hustoty, umožňující separaci leukocytů z plné krve, je časově náročná a dochází při ní ke ztrátám určitých populací leukocytů. V klinických laboratořích nahrazuje tuto metodu přímé značení plné krve protilátkami, následované lyzí červených krvinek, které přináší rychlé a přesné výsledky. 3. Popis reagencie Obsah balení (100 nebo 30 ml) postačuje na provedení přibližně respektive testů. Lyzační roztok je dodáván připravený k okamžitému použití. 4. Skladování Lyzační roztok EXCELLYSE I skladujte při teplotě 2-25 C. 5. Upozornění Reagencie je určena pro In vitro diagnostiku a vyhovuje požadavkům NV 453/2004 Sb., které je harmonizováno s evropskou směrnicí pro In vitro diagnostické zdravotnické prostředky 98/79/EC. Nepoužívejte reagencii po uplynutí doby použitelnosti vyznačené na štítku lahvičky. Nepoužívejte reagencii v případě, že změní barvu, nebo se v jejím obsahu objeví precipitát. Obsah lahvičky nesmí zmrznout. Chraňte obsah lahvičky před kontaminací. Nedodržení postupu měření může ovlivnit výsledky testu. Krevní vzorky jsou považovány za potenciálně infekční materiál, a proto s nimi musí být náležitě nakládáno. Vyvarujte se kontaktu vzorků s pokožkou, očima a sliznicemi. Varování: Lyzační roztok obsahuje formaldehyd a metanol. Zdraví škodlivý R-věty S-věty Podezření na karcinogenní účinky. Může vyvolat senzibilizaci při styku s kůží. Zamezte styku s kůží. Používejte vhodný ochranný oděv a ochranné rukavice. 2/5

3 6. Potřebné vybavení a materiál, který není dodáván Nezbytný materiál pro odběr periferní krve, vhodné zkumavky pro barvení buněk (např mm), sada pipet s jednorázovými špičkami, centrifuga, vortex, pufr PBS, deionizovaná voda, vhodné protilátky, průtokový cytometr. 7. Lyzační protokol Lyse/no wash 1. Odeberte periferní krev do sterilní odběrové zkumavky obsahující antikoagulant (např. Heparin, EDTA). 2. Proveďte značení plné krve protilátkou podle doporučení výrobce protilátky. 3. Přidejte 100 l lyzačního roztoku na 50 l plné krve a zkumavku promíchejte vortexem. 4. Inkubujte vzorek 2-5 minut při laboratorní teplotě. 5. Do zkumavky přidejte 1 ml demineralizované vody, promíchejte a vyčkejte přibližně 5-10 minut, dokud se vzorek nevyčeří. 6. Ihned po obarvení analyzujte vzorek pomocí průtokového cytometru, případně do 24 hod za předpokladu, že je uskladněn v temnu při 2-8 C. Buňky není potřeba dále fixovat. Vzorová data jsou zobrazena na obrázcích 1 a Lyzační protokol Lyse/wash 1. Odeberte periferní krev do sterilní odběrové zkumavky obsahující antikoagulant (např. Heparin, EDTA). 2. Proveďte značení plné krve protilátkou podle doporučení výrobce protilátky. 3. Přidejte 100 l lyzačního roztoku na 50 l plné krve a zkumavku promíchejte vortexem. 4. Inkubujte vzorek 2-5 minut při laboratorní teplotě. 5. Do zkumavky přidejte 2-3 ml demineralizované vody, promíchejte a vyčkejte přibližně 5-10 minut, dokud se vzorek nevyčeří. 6. Centrifugujte zkumavku 5 minut při 300 g. 7. Odstraňte supernatant a resuspendujte sediment pomocí 0,2-0,5 ml PBS. 8. Ihned po obarvení analyzujte vzorek pomocí průtokového cytometru, případně do 24 hod za předpokladu, že je uskladněn v temnu při 2-8 C. Buňky není potřeba dále fixovat. Vzorová data jsou zobrazena na obrázcích 3 a Omezení metody Červené krvinky některých abnormálních pacientů mohou být rezistentní k lyzi pomocí lyzačních roztoků. Průtokový cytometr může poskytovat špatné hodnoty, pokud není dobře seřízen a udržován. Data mohou být špatně interpretována, pokud jsou fluorescenční signály špatně kompenzované, případně pokud jsou regiony buněk špatně umístěné. Krevní vzorky od abnormálních pacientů mohou vykazovat abnormální hodnoty procent pozitivních buněk. 1. Použitie SLOVENSKY EXCELLYSE I lyzačný roztok umožňuje lýzu červených krviniek po označení leukocytov protilátkou v ľudskej periférnej krvi. Tento lyzačný roztok je vhodný pre použitie s EXBIO označenými monoklonovými protilátkami vrátane produktovej rady KOMBITEST TM reagencií. Môže byť použitý v oboch procesoch lyzovania: protokol lýza/premytie (lyse/wash) a lýza/bez premytia (lyse/no wash). 2. Úvod Analýza a detekcia leukocytov v ľudskej periférnej krvi si vyžaduje odstránenie neanalyzovaných buniek - erytrocytov. Alternatívne používaná metóda Ficollového oddeľovania na základe hustoty, umožňujúca separáciu leukocytov z plnej krvi, je časovo náročná a dochádza pri nej ku stratám buniek určitých populácií leukocytov. V klinických laboratóriách nahrádza túto metódu priame značenie krvi protilátkou, nasledované lýzou červených krviniek a analýzou na prietokovom cytometri, ktorá je rýchla a presná. 3. Popis reagencie Obsah balenia (100 nebo 30 ml) postačuje približne pre respektíve testov. Lyzačný roztok sa dodáva pripravený k okamžitému použitiu. 4. Skladovanie Lyzačný roztok EXCELLYSE I skladujte pri teplote 2-25 C. 5. Upozornenie Reagencia je určená pre In vitro diagnostiku a vyhovuje požiadavkám európskej smernice pre In vitro diagnostické zdravotnícke prostriedky 98/79/EC. Nepoužívajte po uplynutí doby použiteľnosti vyznačenej na štítku fľaštičky. Roztok nepoužívajte v prípade, že zmení farbu alebo sa v jeho obsahu objaví precipitát. Obsah fľaštičky nesmie zmrznúť Zabráňte kontaminácii roztoku. Nedodržanie postupu merania môže ovplyvniť výsledky testu. Krvné vzorky sú považované za potenciálne infekčný materiál a preto sa s nimi musí zaobchádzať opatrne. Vyvarujte sa kontaktu vzoriek s pokožkou, očami a sliznicami. Varovanie: Lyzačný roztok obsahuje formaldehyd, metanol. R-vety Zdraviu škodlivý Podozrenie na karcinogénne účinky. Môže vyvolať senzibilizáciu pri styku s kožou. 3/5

4 S-vety Vyvarujte sa kontaktu s kožou. Používajte vhodný ochranný odev a ochranné rukavice. ENGLISH / ČESKY / SLOVENSKY 10. Explanation of symbols / Vysvětlení symbolů / Vysvetlenie symbolov 6. Potrebné vybavenie a materiál, ktorý nie je dodávaný Materiál potrebný na odber periférnej krvi, vhodné skúmavky pre značenie buniek (napr mm), sada pipiet s jednorázovými špičkami, centrifúga, vortex, PBS tlmivý roztok, deionizovaná voda, vhodné protilátky, prietokový cytometer. 7. Lyse/no wash lyzačný protokol 1. Odoberte periférnu krv do sterilnej odberovej skúmavky obsahujúcej antikoagulant (napr. Heparín, EDTA). 2. Pokračujte značením plnej krvi protilátkou podľa návodu od výrobcu protilátky. 3. Pridajte 100 l lyzačného roztoku k 50 l plnej krvi a skúmavku premiešajte na vortexe. 4. Inkubujte vzorku 2-5 minút pri laboratórnej teplote. 5. Do skúmavky so vzorkou pridajte 1 ml demineralizovanej vody, premiešajte a inkubujte 5-10 minút, kým sa krvná zmes nevyčíri. 6. Vzorku analyzujte na prietokovom cytometri ihneď po označení, najneskôr však do 24 hodín za predpokladu, že sú skladované v temne pri 2-8 C. Fixácia buniek nie je potrebná. Vzorové dáta sú zobrazené na obr. 1 a Lyse/wash lyzačný protokol 1. Odoberte periférnu krv do sterilnej odberovej skúmavky obsahujúcej antikoagulant (napr. Heparín, EDTA). 2. Pokračujte značením plnej krvi protilátkou podľa návodu od výrobcu protilátky. 3. Pridejte 100 l lyzačného roztoku k 50 l plnej krvi a skúmavku premiešajte na vortexe. 4. Inkubujte vzorku 2-5 minút pri laboratórnej teplote. 5. Do skúmavky so vzorkou pridajte 2-3 ml demineralizovanej vody, premiešajte a inkubujte 5-10 minút, kým sa krvná zmes nevyčíri 6. Centrifugujte skúmavku 5 minút pri 300 g. 7. Odstráňte supernatant a resuspendujte sediment pomocou 0,2-0,5 ml PBS. 8. Vzorku analyzujte na prietokovom cytometri ihneď po označení, najneskôr však do 24 hodín za predpokladu, že sú skladované v temne pri 2-8 C. Fixácia buniek nie je potrebná. Vzorové dáta sú zobrazené na obr. 3 a Manufacturer / Výrobce / Výrobca EXBIO Praha, a.s. Nad Safinou II Vestec, Czech Republic Tel: Fax: orders@exbio.cz 9. Obmedzenia metódy Červené krvinky niektorých abnormálnych pacientov môžu byť rezistentné voči lýze pomocou lyzačných roztokov. Prietokový cytometer môže poskytovať nepresné výsledky, ak nie je dobre nastavený a udržiavaný. Dáta môžu byť zle interpretované, ak sú fluorescenčné signály nedostatočne kompenzované alebo ak sú regióny buniek zle umiestnené. Krvné vzorky od abnormálnych pacientov môžu vykazovať abnormálne percentuálne hodnoty pozitívnych buniek. 4/5

5 12. Example data / Vzorová data / Vzorové dáta Granulocytes Debris Monocytes Fig. 1: Peripheral blood leukocytes dot-plot from lysed/non-washed whole blood, analyzed on BD FACSCanto cytometer. Obr. 1: Vyobrazení leukocytů periferní krve ve FSC vs. SSC dot-plotu lyzované pomocí protokolu Lyse/no wash. Analyzováno pomocí Obr. 1: Vyobrazenie leukocytov periférnej krvi lyzovanej pomocou protokolu Lyse/no wash do FSC vs. SSC dot-plotu. Analýza na prietokovom cytometri BD FACSCanto. Fig. 2: Identification of CD45+ lymphocyte population in lysed/nonwashed whole blood stained with anti-cd45 antibody, analyzed on BD FACSCanto cytometer. Obr. 2: Identifikace lymfocytů v krvi značené protilátkou proti CD45, lyzované pomocí protokolu Lyse/no wash. Analyzováno pomocí Obr. 2: Identifikácia lymfocytov v krvi značenej protilátkou proti CD45, lýza pomocou protokolu Lyse/no wash. Analýza na prietokovom cytometri BD FACSCanto. Granulocytes Debris Monocytes Fig. 3: Peripheral blood leukocytes dot-plot from lysed/washed whole blood, analyzed on BD FACSCanto cytometer. Obr. 3: Vyobrazení leukocytů periferní krve ve FSC vs. SSC dot-plotu lyzované pomocí protokolu Lyse/wash. Analyzováno pomocí Obr. 3: Vyobrazenie leukocytov periférnej krvi lyzovanej pomocou protokolu Lyse/wash do FSC vs. SSC dot-plotu. Analýza na prietokovom cytometri BD FACSCanto. Fig. 4: Identification of CD45+ lymphocyte population in lysed/washed whole blood stained with anti-cd45 antibody, analyzed on BD FACSCanto cytometer. Obr. 4: Identifikace lymfocytů v krvi značené protilátkou proti CD45, lyzované pomocí protokolu Lyse/wash. Analyzováno pomocí Obr. 4: Identifikácia lymfocytov v krvi značenej protilátkou proti CD45, lýza pomocou protokolu Lyse/wash. Analýza na prietokovom cytometri BD FACSCanto. 5/5