Výzkumný ústav rostlinné výroby Praha Ruzyně



Podobné dokumenty
Výzkumný ústav rostlinné výroby Praha Ruzyně

Výzkumný ústav rostlinné výroby Praha Ruzyně

Výzkumný ústav rostlinné výroby Praha Ruzyně. Metodika byla vypracována jako výstup výzkumného záměru MZe č Autor: Ing.

SDS-PAGE elektroforéza

MOŽNOST VYUŽITÍ ELEKTROFORÉZY HLÍZOVÝCH PROTEINŮ A ESTERÁZ K CHARAKTERIZACI REGISTROVANÝCH ODRŮD BRAMBOR

SDS polyakrylamidová gelová elektroforéza (SDS PAGE)

PROTEINOVÁ DENATURUJÍCÍ ELEKTROFORÉZA (SDS PAGE)

Obsah Protein Gel Electrophoresis Kitu a jeho skladování

Elektroforéza v přítomnosti SDS SDS PAGE

Výzkumný ústav rostlinné výroby Praha Ruzyně

TECHNICKÁ SPECIFIKACE Vybavení genetické laboratoře pro projekt EXTEMIT-K část B

CHARAKTERIZACE GENOTYPŮ OVSA S VYUŽITÍM ELEKTROFORÉZY AVENINŮ V POLYAKRYLAMIDOVÉM GELU (A-PAGE)

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU LC-MS - FUMONISIN B 1 A B 2

ELEKTROFORETICKÁ SEPARACE NUKLEOVÝCH KYSELIN

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ AKTIVITY FYTÁZY

(Triticum aestivum L.)

Evropský sociální fond Praha & EU: Investujeme do vaší budoucnosti ELEKTROMIGRAČNÍ METODY

Polymorfismus délky restrikčních fragmentů (RFLP)

Western blotting. 10% APS 20,28 µl 40,56 µl 81,12 µl 20,28 µl 40,56 µl 81,12 µl

Inkubace enzymů se substráty

PROTOKOL WESTERN BLOT

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU HPLC - OCHRATOXIN A

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU 5-VINYL - 2-THIOOXAZOLIDONU (GOITRINU) METODOU GC

ELEKTROFORETICKÉ METODY

Sraz studentů v 8:00 před laboratoří A5/108, s sebou plášť a přezutí PRINCIP. Polyakrylamidová gelová elektroforéza v přítomnosti SDS (SDS-PAGE)

VYUŽITÍ METOD ELEKTROFORÉZY ZÁSOBNÍCH A ENZYMATICKÝCH BÍLKOVIN K ROZLIŠENÍ REGISTROVANÝCH ODRŮD JARNÍHO JEČMENE A JEJICH UPLATNĚNÍ V SEMENÁŘSTVÍ

1. Metodika. Protokol č. F1-4 Metodika: Srovnávací analýza efektivity přípravy rekombinantního proteinu ve fermentoru

1. Příloha 1 Návod úlohy pro Pokročilé praktikum z biochemie I

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU LC-MS - aflatoxin B1, B2, G1 a G2

Protokoly Transformace plasmidu do elektrokompetentních buněk BL21 Pracovní postup:

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU PROBIOTICKÝCH BAKTERIÍ RODU ENTEROCOCCUS

Hmotnostní detekce biologicky významných sloučenin pro biotechnologie část 3 - Provedení štěpení proteinů a následné analýzy,

S filtračními papíry a membránou je nutno manipulovat pinzetou s tupým koncem.

Proteinový fingerprinting vaječného bílku

Inovace bakalářského studijního oboru Aplikovaná chemie CZ.1.07/2.2.00/

IZOLACE DNA (KIT DNeasy Plant Mini)

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU SEMDURAMICINU METODOU HPLC

laktoferin BSA α S2 -CN α S1 -CN Popis: BSA bovinní sérový albumin, CN kasein, LG- laktoglobulin, LA- laktalbumin

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU DEKOCHINÁTU METODOU HPLC

CLP ANALYSIS OF MOLECULAR MARKERS GEL ELECTROPHORESIS OF ISOZYMES AND PROTEINS CZECH VERSION

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MADURAMICINU A SEMDURAMICINU METODOU HPLC

Ústřední kontrolní a zkušební ústav zemědělský. Národní referenční laboratoř. Bulletin Ročník X, číslo 2/ 2006

Metodika stanovení kyselinové neutralizační kapacity v pevných odpadech

ANALYTICKÝ SYSTÉM PHOTOCHEM

Polymorfismus délky restrikčních fragmentů

Protokol 04. pšeničná bílkovina. masné výrobky. zkrácená verze

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MELAMINU A KYSELINY KYANUROVÉ METODOU LC-MS

Aplikace elektromigračních technik Laboratorní úlohy

Gelová elektroforéza - úvod, demonstrační sada pro učitele Kat. číslo

Jednotné pracovní postupy testování odrůd STANOVENÍ OBSAHU TANINŮ V ČIROKU SPEKTROFOTOMETRICKY

Návody pro praktikum Analýza struktury chromatinu Petra Procházková Schrumpfová, Miloslava Fojtová

Kurz 1 Úvod k biochemickému praktiku

Pufry, pufrační kapacita. Oxidoredukce, elektrodové děje.

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv Stanovení obsahu celkového a volného tryptofanu metodou HPLC

CS Úřední věstník Evropské unie L 54/89

Spektrofotometrické stanovení fosforečnanů ve vodách

Výzkumný ústav rostlinné výroby, v.v.i., Praha 6 - Ruzyně, 2011 ISBN

Obr. 1. Schematické znázornění 2D-PAGE (převzato z Lodish, H. a kol.: Molecular Cell Biology, 3. vyd., Freeman 1996)

STANOVENÍ MYKOTOXINŮ V OBILOVINÁCH METODOU ELISA

Určení koncentrace proteinu fluorescenční metodou v mikrotitračních destičkách

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU VITAMÍNU D METODOU HPLC

Elektromigrační metody

Možnosti využití elektromigračních technik při studiu vlastností mikroorganismů. Anna Kubesová

PROTOKOL NORTHERNOVA HYBRIDIZACE

LABORATOŘ OBORU I. Příprava diagnostického testu na bázi lateral flow immunoassay ÚSTAV ORGANICKÉ TECHNOLOGIE (111)

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU KOBALTU METODOU ICP-MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU VÁPNÍKU MANGANOMETRICKY

STANOVENÍ VLIVU CHEMIKÁLIÍ NA KRÁTKODOBOU NITRIFIKAČNÍ AKTIVITU

Vizualizace DNA ETHIDIUM BROMID. fluorescenční barva interkalační činidlo. do gelu do pufru barvení po elfu SYBR GREEN

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv

Jana Fauknerová Matějčková

13/sv. 6 CS (80/891/EHS)

MagPurix Viral Nucleic Acid Extraction Kit

IZOLACE, SEPARACE A DETEKCE PROTEINŮ I. Vlasta Němcová, Michael Jelínek, Jan Šrámek

IZOLACE DNA POMOCÍ CTAB PRO STANOVENÍ GMO METODOU PCR

STANOVENÍ ANTIOXIDAČNÍ KAPACITY METODOU FOTOCHEMILUMINISCENCE NA PŘÍSTROJI PHOTOCHEM

L 54/116 CS Úřední věstník Evropské unie

Jazykové gymnázium Pavla Tigrida, Ostrava-Poruba Název projektu: Podpora rozvoje praktické výchovy ve fyzice a chemii

CLP ANALYSIS OF MOLECULAR MARKERS ISOZYME AND PROTEIN MARKERS CZECH VERSION

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv Vydání 1 STANOVENÍ OBSAHU KOKCIDIOSTATIK METODOU LC-MS

RNA Blue REAGENS PRO RYCHLOU PŘÍPRAVU ČISTÉ A NEDEGRADOVANÉ RNA (katalogové číslo R011, R012, R013)

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU NEPOVOLENÝCH DOPLŇKOVÝCH LÁTEK METODOU LC-MS

Příprava půd pro diskovou difuzní metodu EUCAST a pro vyšetření hodnot MIC bujonovou mikrodiluční metodou. Změny proti předchozí verzi (v. 4.

CLP ANALYSIS OF MOLECULAR MARKERS DIGITAL IMAGE ANALYSIS OF ELECTROPHOEROGRAMS CZECH VERSION

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU HPLC - ZEARALENON

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv Vydání 1 STANOVENÍ OBSAHU MADURAMICINU METODOU HPLC

TESTOVÁNÍ GMO Praktikum fyziologie rostlin

L 54/80 CS Úřední věstník Evropské unie

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU VITAMÍNU D METODOU LC/MS

Zápis o rozboru. E skleněné ISE závislé na ph roztoku, lze pomocí kombinované skleněné ISE sestrojit závislost ph na přidávaném

MagPurix Viral/Pathogen Nucleic Acids Extraction Kit B

Úloha č. 1 Odměřování objemů, ředění roztoků Strana 1. Úkol 1. Ředění roztoků. Teoretický úvod - viz návod

LABORATOŘE OBORU. Znaky kompozitní mouky na bázi pšenično-ječné kompozitní mouky

Komplement fixační antigen Influenza A (KF Ag Influenza A)

Návod k laboratornímu cvičení. Vitamíny

SLEDOVÁNÍ VZTAHU MEZI OBSAHEM ENZYMU RUBISCO A KONCENTRACÍ CO 2 V CHLOROPLASTU

Tkáňový homogenizátor MagNA Lyser od společnosti Roche

Vybraná vyšetření u pacientů s diabetes mellitus

Praktické cvičení: Izolace a purifikace rekombinantního proteinu

Transkript:

Výzkumný ústav rostlinné výroby Praha Ruzyně Optimalizovaná metodika PAGE pro analýzu esteráz v hlízách brambor (Solanum tuberosum L.) Vypracovaná jako výstup projektu 1B 44011 VÝVOJ A TESTOVÁNÍ SYSTÉMU ANALYTICKÝCH METOD PRO PRAKTICKOU CHARAKTERIZACI ODRŮD BRAMBOR REGISTROVANÝCH V ČR Autoři: Mgr. Světlana Sýkorová, CSc. & kol. Srpen 2006

OPTIMALIZOVANÁ METODIKA PAGE PRO ANALÝZU ESTERÁZ V HLÍZÁCH BRAMBOR (SOLANUM TUBEROSUM L.) Vypracovaná jako výstup projektu 1B 44011 VÝVOJ A TESTOVÁNÍ SYSTÉMU ANALYTICKÝCH METOD PRO PRAKTICKOU CHARAKTERIZACI ODRŮD BRAMBOR REGISTROVANÝCH V ČR Světlana Sýkorová a kol. sykorova@vurv.vz Vydal: Výzkumný ústav rostlinné výroby, Praha 2006 http://www.vurv.cz Text: 2006 S. Sýkorová, E. Matějová, M. Berová Foto: 2006 S. Sýkorová, J. Bradová Grafická úprava: 2006 M. Sýkora, L. Štočková Vydáno bez jazykové úpravy ISBN: 80-86555-90-9

Optimalizovaná metodika PAGE pro analýzu esteráz v hlízách brambor (UPOV 2002) obsahující vlastní modifikace řešitelů Obsah: 1. Počet hlíz na test. 4 2. Přístroje a zařízení. 4 3. Chemikálie.. 4 3. 1. Chemikálie pro extrakci proteinů 3. 2. Chemikálie pro elektroforézu 3. 3. Chemikálie pro detekci esteráz 4. Roztoky... 5 4. 1. Extrakční roztoky 4. 2. Pufry a gelové roztoky 4. 3. Barvicí roztoky pro esterázy 5. Pracovní postup. 6 5. 1. Příprava vzorků 5. 2. Příprava gelů 5. 2. 1. Příprava gelů pro PAGE ph 7,9 pro esterázy 5. 3. Nanášení vzorků 5. 4. Elektroforéza 5. 4. 1. Podmínky PAGE ph 7,9 pro esterázy 5. 5. Barvení 5. 5. 1. Barvení esteráz (vlastní modifikace) 6. Identifikace alel.. 7 6. 1. Identifikace alel esterázových lokusů 6. 1. 1. Obrázek genotypů Est 2 6. 1. 2. Obrázek genotypů Est 3 6. 1. 3. Stanovení hodnot REM pro jednotlivé alely lokusů Est 2 a Est 3 (vlastní modifikace) S. Sýkorová & kol. VÚRV Praha

Optimalizovaná metodika PAGE pro analýzu esteráz v hlízách brambor (UPOV 2002) obsahující vlastní modifikace řešitelů 1. Počet hlíz na test: - pro DUS ( odlišnost, uniformitu a stálost) : 10 hlíz - pro kontrolu identity: 4 hlízy Hlízy by měly být zralé, přednostně sklizené po zaschnutí listů. Hlízy skladované v rozmezí teplot 4 10 C mohou být použity nezávisle na sezóně, dokud nezačnou klíčit. 2. Přístroj a zařízení: centrifuga kryostat zdroj stejnosměrného proudu alespoň na 400 V a 150 ma třepačka (kývačka) na ploché gely vertikální elektroforetický přístroj pro 2 gely Může být použit jakýkoli vhodný přístroj pro elfo, jestliže umožňuje udržování konstantní teploty gelů. Tloušťka gelu by neměla být vyšší než 1,5 mm. Zdroj proudu by měl mít možnost nastavení konstantního proudu nebo konstantního napětí. 3. Chemikálie: Všechny chemikálie stupně analytical reagent (p.a.) nebo lepší 3. 1. Chemikálie pro extrakci proteinů Amidočerň 10 B Siřičitan sodný Na 2 SO 3 Disiřičitan sodný Na 2 S 2 O 5 Sacharóza 3. 2. Chemikálie pro elektroforézu Akrylamid roztok (velmi toxický!!) (AA) Persíran amonný (APS) Bisakrylamid roztok (BIS) Kyselina boritá TRIS - Tris- (hydroxymethyl) - aminomethan Bromfenolová modř (BPB) 3- (Dimethylamino) propionitril (DMAPN) S. Sýkorová & kol. VÚRV Praha 4

3. 3. Chemikálie pro detekci esteráz Dimethylformamid Hydrogenfosforečnan dvojsodný dodekahydrát (Na 2 HPO 4. 12 H 2 O) Fast Blue RR Salt 1-Naftylacetát Dihydrogenfosforečnan sodný monohydrát (NaH 2 PO 4. 1 H 2 O) Glycerol 4. Roztoky 4. 1. Extrakční roztoky č. Roztok Složky Množství Poznámka Siřičitan sodný Na 2 SO 3 5,00 g 4.1.1. Extrakční roztok A Disiřičitan sodný Na 2 S 2 O 5 3,75 g 100 ml 4.1.2. Extrakční roztok B 4.1.3. Extrakční roztok C Sacharóza Amidočerň 10B Extrakční roztok A Extrakční roztok B 500 g 0,3 g do 1000 ml 10 ml 100 ml lze skladovat při 6 C lze skladovat při 6 C denně čerstvý 4. 2. Pufry a gelové roztoky č. Roztok Složky Množství Poznámka TRIS 30,26 g Skladovatelný v Zásobní pufr 4.2.1.1 Kys.boritá 36,6 g lednici (Pufr 1) do 1000 ml 4.2.1.2 40% roztok AA AA 40 g do 100 ml Pro bezpečnost by měl být používán komerční roztok 4.2.1.3 2 % roztok BIS BIS 2 g do 100 ml Pro bezpečnost by měl být používán komerční roztok 4.2.1.4 2 % roztok APS 4.2.1.5 4.2.1.6 Elektrodový pufr (Pufr 2) Gelový pufr (Pufr 3) APS Pufr 4.2.1.1 Pufr 4.2.1.1 1 g do 50 ml 100 ml 700 ml 15,8 ml do 100 ml Denně čerstvý Denně čerstvý Denně čerstvý S. Sýkorová & kol. VÚRV Praha 5

4. 3. Barvicí roztoky pro esterázy č. Roztok Složky Množství Poznámka 4.3.3. Fosfátový barvicí pufr pro esterázy ph 6,4 Na 2 HPO 4 x 12 H 2 O NaH 2 PO 4 x 1 H 2 O deionizovaná voda 12,1 g 9,1 g do 1000 ml 4.3.4. 4.3.5. substrát pro esterázy kopulační barvivo pro esterázy 4.3.6. 2% glycerin α-naftylacetát dimethylformamid Fast Blue RR pro histo dimethylformamid Glycerol deionizovaná voda 100 mg 1 ml 200 mg 1 ml 20 ml do 1000 ml vlastní modifikace připravit těsně před použitím připravit těsně před použitím skladovatelný v lednici 5. Pracovní postup 5. 1. Příprava vzorků Hlízy zmrazit na -20 C a pak nechat rozmrazit při pokojové teplotě. Pro analýzu každé hlízy je potřebná 2 ml centrifugační kyveta obsahující 0,4 ml extrakčního roztoku C (4.1.3). Rozmrzlé hlízy se rozříznou a vymáčknou. 1,5 ml šťávy se zachytí do výše uvedené kyvety a promíchá s extrakčním roztokem C (třepání). Dále se centrifuguje 15 minut při 3 000 ot.min -1 a 10 C. Supernatanty se přenesou do nové prázdné centrifugační kyvety a zmrazí se pro pozdější provedení elfo. Před začátkem elfo se extrakty rozmrazí a promíchají. 5.2. Příprava gelů 5. 2. 1. Příprava gelů pro PAGE ph 7,9 pro esterázy - Sestavit suché a čisté gelové kazety - Připravit cca 100 ml gel. roztoku (T: 4,9%; C: 4,7%) Postupuje se tak, že se smíchá pufr, akrylamid a BIS-akrylamid, přimíchá se siřičitan, který se nechá dokonale rozpustit. Promíchá se a polymerace se nastartuje přidáním DMAPN a APS. složky Objem gelu 40 ml 80 ml 100 ml 120 ml 150 ml 200 ml pufr 4.2.1.6. 30,32 ml 60,64 ml 75,8 ml 90,96 ml 113,7 ml 151,6 ml AA 40% 4,68 ml 9,36 ml 11,7 ml 14,04 ml 17,55 ml 23,4 ml BIS 2% 4,96 ml 9,92 ml 12,4 ml 14,88 ml 18,6 ml 24,8 ml Na 2 SO 3 0,0165 g 0,033 g 0,042 g 0,05 g 0,063 g 0,084 g DMAPN 0,2 ml 0,4 ml 0,5 ml 0,6 ml 0,75 ml 1,0 ml APS 2% 0,76 ml 1,52 ml 1,9 ml 2,28 ml 2,85 ml 3,8 ml S. Sýkorová & kol. VÚRV Praha 6

- Po zamíchání se gely pečlivě, ale rychle, nalijí tak, aby se zabránilo tvorbě bublinek vzduchu. Hřebeny pro vytvoření vzorkových jamek se vloží do kapalného gelu a polymerace probíhá při pokojové teplotě alespoň 15 minut. Hřebeny se potom vyjmou. Vzniklé jamky se promyjí a naplní elektrodovým pufrem (4.2.1.5). 5. 3. Nanášení vzorků - Pro elektroforézu esteráz se nanáší do každé jamky 10 μl extraktu pomocí mikrostříkačky Hamilton 5. 4. Elektroforéza 5.4.1. Podmínky PAGE ph 7,9 pro esterázy Elektrodový pufr 4.2.1.5 Proud /2 gely (11 cm šířka, 1 mm tloušťka) na začátku 10* minut 78 ma Napětí pokračovat nastavením 400 V na 30** minut Teplota 10 C Směr migrace od katody (-) k anodě (+) Celkový čas elektroforézy 10* + 30** minut 5.5. Barvení: 5. 5.1. Barvení esteráz (vlastní modifikace): Gely se označí, např. odříznutím růžku. Potom se přenesou do skleněných barvicích misek, v nichž je v každé 100 ml fosfátového pufru (4.3.3) smíchaného těsně před použitím s roztoky substrátu (4.3.4) a barviva (4.3.5). Na kývací třepačce se inkubuje při laboratorní teplotě 15 20 minut, kdy jsou již patrné hnědě zbarvené pruhy esteráz. Ztmavlý a vysrážený barvicí roztok se potom slije a gely se inkubují na třepačce 2 x 30 minut s deionizovanou vodou a dále na třepačce v 2% roztoku glycerolu (4.3.6.) po dobu 30 minut. Po této inkubaci se gely usuší mezi dvěma vrstvami celofánu, namočeného v 2% glycerolu. 6. Identifikace alel: 6. 1. Identifikace alel esterázových lokusů Pozice jednotlivých esterázových isoenzymů jsou kalibrovány odrůdou Sieglinde. Odrůda Sieglinde vykazuje 3 pruhy s vysokou enzymatickou aktivitou v následujících pozicích: 75 + 77 + 88. Esterázové ieoenzymy bramborových hlíz jsou vysoce polymorfní. Pro jasnou interpretaci byly zymogramy rozděleny do čtyř bloků pruhů. Bloky pruhů Est 1 a Est 4 mají jen nízkou enzymatickou aktivitu. Bloky pruhů Est 2 a Est 3 mají naopak vysokou enzymatickou aktivitu. Pro stanovení odlišnosti, jednotnosti a stálosti (DUS) jsou používány pouze bloky Est 2 a Est 3. S. Sýkorová & kol. VÚRV Praha 7

Brambory jsou vegetativně množený tetraploidní druh. Proto je třeba očekávat mnoho heterozygotních genotypů. Jednotlivé genotypy mohou být rozlišeny pouze podle genové dávky. Takové genotypy se často nacházejí v Est 2 a Est 3. Kombinace mezi null- alelou a aktivními alelami a genotypy majícími plnou dávku genu vykazují identické pruhy. Proto jsou vyhodnoceny jako identické. Est 2 Est 3 Př. odrůdy Znač. Est 2 Est 3 Př. odrůdy Znač Est 2 Est 3 Př. odrůdy Znač. a o Desirée 4 b o Cleopatra 18 c o Obelix 22 d o Achat 5 d b Vital 23 d c Krometa 19 e o Sibu 20 f o Wali 12 g b Premiere 26 h o Jetta 6 i o Renate 8 i b Selma 7 i c Karakter 15 j o Hansa 1 j b Ute 9 j c Karolin 3 k o Belita 13 k d Junior 17 l o Roxy 16 l c Sieglinde 2 o o Ulla 11 S. Sýkorová & kol. VÚRV Praha 8

6.1.1. Obrázek schémat genotypů Est 2 V Est 2 vykazuje většina genotypů 2 pruhy (označené a-1). Byly detekovány genotypy s více než 2 pruhy. Tyto typy mohou být interpretovány jako kombinace dvou genotypů obsahujících dva pruhy. Genotyp Genotyp Př. odrůdy Pozn. Znač. Est 2 Est 3 dl o Leyla nerozlišitelný od genotypu Est 2:d + 5 Est 3: o dl c Aiko nerozlišitelný od genotypu Est 2:d + 19 Est 3: c jf o Protea 27 Existuje překrytí genových produktů 75 a 77 náležejícím genotypu Est 2: l s genovým produktem náležejícím genotypu Est 1. Proto není možné získat jasnou separaci mezi hybridy typu Est2: l x d a genotypy Est 2:d. Proto genotyp dl a genotyp l nebudou vyhodnoceny jako rozdílné. 6.1.2. Obrázek schemat genotypů Est 3 Obrázek (typy a,b, c, d, o) podle mobility stoupá od a k d, typ o žádný pruh S. Sýkorová & kol. VÚRV Praha 9

6.1.3.Stanovení hodnot REM pro jednotlivé alely lokusů Est 2 a Est 3 (vlastní modifikace) Měřením a kalibrací podle odrůdy pruhu definovaného jako 75 etalonové odrůdy Sieglinde byly vypočteny hodnoty REM jednotlivých pruhů alel Est 2 a Est 3. V elektroforetickém spektru jednotlivých odrůd se vyskytují ještě další pruhy s různou intenzitou, které pravděpodobně náležejí lokusům Est 1 a Est 4, případně heterozygotním projevům esterázových alel. Alely Est 2 a jejich hodnoty REM a e d c k j i h g f l o 65 84 75 67 84 79 75 73 71 68 75 (73) 79 90 84 75 88 84 79 77 76 74 77 (76) (79) (84) (86) Hodnoty REM uvedené v závorce představují velmi nízkou, až stopovou intenzitu enzymatické aktivity Alely Est 3 a jejich hodnoty REM a b c d o 83 85 88 93 --- S. Sýkorová & kol. VÚRV Praha 10