METODA RLB (REVERSE LINE BLOT) V DETEKCI ARBOVIRŮ

Podobné dokumenty
Konečná zpráva hodnocení různých způsobů přípravy vzorků pro AMPLICOR HPV test firmy Roche

MagPurix Blood DNA Extraction Kit 200

Hybridizace nukleových kyselin

Výzkumné centrum genomiky a proteomiky. Ústav experimentální medicíny AV ČR, v.v.i.

Specifická izolace microrna pomocí magnetizovatelných mikročástic

Metody studia exprese mrna. jádro a genová exprese 2007

Seminář izolačních technologií

MagPurix Viral/Pathogen Nucleic Acids Extraction Kit B

DIAGNOSTICKÝ KIT PRO DETEKCI MINIMÁLNÍ REZIDUÁLNÍ CHOROBY U KOLOREKTÁLNÍHO KARCINOMU

EGFR XL StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

DIAGNOSTICKÝ KIT PRO DETEKCI MINIMÁLNÍ REZIDUÁLNÍ CHOROBY U KARCINOMU PANKREATU

Implementace laboratorní medicíny do systému vzdělávání na Univerzitě Palackého v Olomouci. reg. č.: CZ.1.07/2.2.00/

Diagnostika infekce Chlamydia trachomatis pomocí molekulárně genetické metody real time PCR nejen u pacientek z gynekologických zařízení

Ověřená technologie 4940/2018

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv

Braf 600/601 StripAssay

IZOLACE DNA (KIT DNeasy Plant Mini)

MagPurix Viral Nucleic Acid Extraction Kit

DIAGNOSTICKÝ KIT PRO DETEKCI MINIMÁLNÍ REZIUDÁLNÍ CHOROBY MRD EGFR

NÁVOD K POUŽITÍ PRO HER2 DNA QUANTIFICATION KIT

West Nile Virus, aneb je třeba být připraven

DIAGNOSTIKA A MONITOROVÁNÍ INFEKCÍ ZPŮSOBENÉ LIDSKÝMI PAPILLOMAVIRY VYSOCE RIZIKOVÉHO TYPU POMOCÍ REAL TIME PCR

Magnetické částice, izolace a detekce chřipky (hemaglutininu)

Aplikace molekulárně biologických postupů v časné detekci sepse

Hybridizace. doc. RNDr. Milan Bartoš, Ph.D.

S filtračními papíry a membránou je nutno manipulovat pinzetou s tupým koncem.

Laboratorní diagnostika klíšťové encefalitidy a dalších

Braf V600E StripAssay

Mendelova univerzita v Brně Agronomická fakulta Ústav biologie rostlin

Zkušenosti s laboratorní diagnostikou infekcí virem Zika. Hana Zelená NRL pro arboviry Zdravotní ústav se sídlem v Ostravě

GENOTOXICITA A ZMĚNY V GENOVÉ EXPRESI

Western blotting. 10% APS 20,28 µl 40,56 µl 81,12 µl 20,28 µl 40,56 µl 81,12 µl

NRAS StripAssay. Kat. číslo testů 2-8 C

Virus klíšťové encefalitidy (TBEV)

Určeno pro obecné laboratorní užití. Není určeno pro použití v diagnostických postupech. POUZE PRO POUŽITÍ IN VITRO.

IMUNOENZYMATICKÉ SOUPRAVY K DIAGNOSTICE KLÍŠŤOVÉ ENCEFALITIDY

cdna synthesis kit First-Strand cdna Synthesis System Verze 1.2

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

4. Souhrny výsledků. LEGENDA chyba detekce - test neumožňuje stanovení LR HPV typů laboratoř získala certifikát

VÝZNAM NĚKTERÝCH FAKTORŮ PREANALYTICKÉ FÁZE V MOLEKULÁRNÍ BIOLOGII

Mikročipy v mikrobiologii

Izolace RNA. doc. RNDr. Jan Vondráček, PhD..

PAROTITIDA VRACEJÍCÍ SE ONEMOCNĚNÍ. Vlasta Štěpánová 1, Miroslav Fajfr 1,2, Lenka Plíšková 3

Plíšková L. Ústav klinické biochemie a diagnostiky LF a FN Hradec Králové

Izolace nukleových kyselin

- Dynex 407 0,37. 0,23 4 hc2 HR HPV Test Qiagen, - - Dynex 528 9,13. 1,85/1,22 8 hc2 HR HPV Test Qiagen, - - Dynex 696

Enterotoxiny Staphylococcus aureus. Jana Kotschwarová Andrea Koťová

Metody testování humorální imunity

Inovace studia molekulární a buněčné biologie reg. č. CZ.1.07/2.2.00/

Změny sazebníku výkonů pro mikrobiologické obory

KLÍŠŤOVÁ ENCEFALITIDA pohledem epidemiologa

Inovace studia molekulární a buněčné biologie

Pokročilé biofyzikální metody v experimentální biologii

PROTOKOL NORTHERNOVA HYBRIDIZACE

Molekulárně biologické metody v mikrobiologii. Mgr. Martina Sittová Jaro 2014


α-globin StripAssay Kat. číslo testů 2-8 C

MOLEKULÁRNĚ BIOLOGICKÉ METODY V ENVIRONMENTÁLNÍ MIKROBIOLOGII. Martina Nováková, VŠCHT Praha

Column DNA Lego Kit UNIVERZÁLNÍ SOUPRAVY PRO RYCHLOU IZOLACI ČISTÉ DNA (Katalogové číslo D201 + D202)

Polymerázová řetězová reakce. Základní technika molekulární diagnostiky.

MagPurix Bacterial DNA Extraction Kit

Funkční vzorek 5473/2017

Stanovení Ct hodnoty. Stanovení míry variability na úrovni izolace RNA, reverzní transkripce a real-time PCR

PRO MOLEKULÁRNÍ BIOLOGII REAGENCIE. SLEVA 10 % na nákup nad , bez DPH. Polymerázy a mastermixy GENEDIREX Nejlepší poměr cena/výkon

Amplifikační metody umožňují detekovat. k dispozici minimálně kopií DNA,

Diagnostika retrovirů Lentiviry - HIV. Vladislava Růžičková

1. Metodika. Protokol č. F1-4 Metodika: Srovnávací analýza efektivity přípravy rekombinantního proteinu ve fermentoru

NAT testování dárců krve v ÚVN Praha

NEKOPÍROVAT. Eva Hamšíková NRL pro papillomaviry Oddělení imunologie ÚHKT

MagPurix Forensic DNA Extraction Kit

Vzdělávání zdravotních laborantek v oblasti molekulární biologie

Příprava vektoru IZOLACE PLASMIDU ALKALICKÁ LYZE, KOLONKOVÁ IZOLACE DNA GELOVÁ ELEKTROFORÉZA RESTRIKČNÍ ŠTĚPENÍ. E. coli. lyze buňky.

DY D NE N X Hana Vlastníková

Sada artus HBV QS-RGQ

Havarijní plán PřF UP

Infekce virem západonilské horečky

Vizualizace DNA ETHIDIUM BROMID. fluorescenční barva interkalační činidlo. do gelu do pufru barvení po elfu SYBR GREEN

Lékařská mikrobiologie II

Nákazová situace u zvířat v Ústeckém kraji

laboratorní technologie

Problematika molekulárněmikrobiologické diagnostiky

Mendelova univerzita v Brně Agronomická fakulta Ústav biologie rostlin

VÝSKYT PROTILÁTEK TŘÍDY IgM PO VAKCINACI PROTI VIROVÉ HEPATITIDĚ A

Interakce viru klíšťové encefalitidy s hostitelským organismem a patogeneze infekce

2. Srovnání postupů izolace DNA kolonky vs. paramagnetické částice

VÝVOJ DNA ČIPŮ PRO DETEKCI GENETICKY MODIFIKOVANÝCH ORGANISMŮ

ZDRAVOTNÍ NEZÁVADNOST POTRAVIN

Tkáňový homogenizátor MagNA Lyser od společnosti Roche

Průkaz viru influenzy u vakcinovaných koní v ČR v roce 2008 Souhrn Úvod

Funkční vzorek 5456/2017. Set ke stanovení minimálních inhibičních koncentrací antimikrobiálních. látek u Enterococcus spp.

DYNEX nabízí komplexní řešení v oblasti zpracování a analýzy biologických materiálů pomocí molekulárně biologických metod.

2 Inkompatibilita v systému Rhesus. Upraveno z A.D.A.M.'s health encyclopedia

Praktický kurz Pokročilé biofyzikální přístupy v genomice a proteomice května 2010

Veronika Janů Šárka Kopelentová Petr Kučera. Oddělení alergologie a klinické imunologie FNKV Praha

Imunochemické metody. na principu vazby antigenu a protilátky

Praktický kurz Příprava buněčného lyzátu, izolace celkové RNA pomocí kolonek/tripure reagent, stanovení koncentrace RNA

Analýza DNA. Co zjišťujeme u DNA DNA. PCR polymerase chain reaction. Princip PCR PRINCIP METODY PCR

Sure-MeDIP II. with agarose beads and Mse I.

Funkční vzorek 5454/2017. Set ke stanovení minimálních inhibičních koncentrací antimikrobiálních. látek u Pseudomonas spp.

Transkript:

METODA RLB (REVERSE LINE BLOT) V DETEKCI ARBOVIRŮ MVDr. Petra Drzewnioková; MVDr. Tomáš Csank, PhD.; prof. MVDr. Juraj Pistl, PhD. Katedra mikrobiológie a imunológie Univerzita veterinárskeho lekárstva a farmácie v Košiciach Komenského 73, 04181 Košice, Slovensko

Úvod Název arbovirus je akronymem anglického ARthropod BOrne VIRus členovci přenášený virus. Po celém světě je známo více než 500 arbovirů, které většinou způsobují zoonózy. Některé infikují člověka pouze příležitostně, nebo způsobují mírné onemocnění, zatímco jiné mají velký medicínský význam a způsobují rozsáhlé epidemie se závažnou mortalitou. Mezi nejvýznamnější zástupce arbovirů ve střední Evropě patří viry z čeledě Flaviviridae, avšak v Evropě se zaznamenal výskyt i dalších, mnohdy opomíjených arbovirů. V naši práci jsme se zaměřili na flaviviry vyskytující se ve střední Evropě, a to na virus klíšťové encefalitidy (Tick-borne encephalitis virus; TBEV), virus západonilské horečky (West Nile virus; WNV) a Usutu virus (USUV). Reverse Line Blot (RLB) neboli reverzní hybridizace je hybridizační metoda, která umožňuje detekovat v relativně krátkém časovém úseku poměrně velké množství vzorků najednou na přítomnost hned několika virů, respektive jejich genů.

Materiál a metody V metodě reverzní hybridizace (RLB) jsou nezbytné tyto kroky: IZOLACE RNA Reverzní transkripce PCR. RLB

Vzorky Při standardizaci metody RLB nám posloužili tyto 3 referenční kmeny: kmen WNV 578/10 (Dr. Bakonyi Tamás; Oddělení mikrobiologie a infekčních onemocnění, Univerzita Szent István, Maďarsko) kmen TBEV Hypr (RNDr. Boris Klempa, DrSc., Virologický ústav BMC SAV, Slovensko) kmen USUV 939/01 (Prof. Nowotny Norbert, Dr.phil. Virologický ústav, UVM, Vídeň)

Izolace RNA Izolace RNA byla provedena za pomocí komerčně vyráběné soupravy QIAamp cador Pathogen Mini Kit (QIAGEN) dle manuálu výrobce. Koncentrace RNA byla změřena na Nanodropu ND 8000. Celý NS5 gen referenčních kmenů WNV, USUV a TBEV byl amplifikovaný, vyřezaný z gelu, izolovaný a naředěný na koncentrace 10 7-10 0 kopií/µl.

Reverzní transkripce a PCR Maximálně 5µg extrahované RNA bylo použito na reverzní transkripci, která proběhla dle podmínek udaných výrobcem. Z výsledné cdna jsme použili 1 µl, který nám sloužil jako templát do PCR reakce. Biotinylované primery označují úsek 599 bp, který je konzervativní pro rod Flavivirus a nachází se v rámci jeho genu NS5.

Výsledek jsme si ověřili na 1,5% agarozovém gelu La W5 W0 U5 U0 T5 T0 100 bp lader WNV 10 5-10 0 kopií/µl USUV 10 5-10 0 kopií/µl TBEV 10 5-10 0 kopií/µl Vyhodnocení: Senzitivita PCR reakce je 10 3 kopií/µl pro USUV a WNV a 10 4 kopií/µl pro TBEV.

Reverzní hybridizace (RLB) 1. Aktivace membrány a navazování sond Nylonovou membránu Biodyne C jsme aktivovali 16% roztokem EDAC a následně ji opláchli v deionizované vodě. Námi navrhnuté sondy WNVinNS5-Probe4, USUVinNS5-Probe1 a TBEVinNS5-Probe1 byly navrhnuté jako specifické sondy pro detekci jednotlivých flavivirů v rámci vymezeného úseku genu NS5. Sondy, které jsou 5 konci modifikované s C6 aminolinkerem, jsme naředili v 0,5 M NaHCO 3 na koncentraci 5, 2.5 a 1.25 µm a následně jsme je navázali na aktivovanou membránu duplicitně v klesajících koncentracích. Do první a poslední jamky jsme napipetovali čistý roztok 0,5 M NaHCO 3. Membránu s napipetovanými sondami jsme nechali inkubovat. Následovali promývací kroky pomocí roztoků v následujícím pořadí: 0,1 M NaOH, 2x SSPE a na závěr 2x SSPE/0,1% SDS.

Reverzní hybridizace (RLB) 2. Hybridizace K 20µl z každého PCR produktu značeného biotinem jsme přidali 150µl 2x SSPE/0,1% SDS a následně jsme je dali denaturovat. Takto denaturované PCR produkty jsme navázali na membránu, kolmo na navázané sondy. Do první jamky a posledních jamek jsme navázali čisté 2x SSPE/0,1% SDS, do ostatních vzorky a kontroly. Následně jsme nechali inkubovat. Po hybridizaci následovalo dvojí promývání s 2x SSPE/0,5% SDS. Po promývání se membrána inkubovala se streptavidínem značeným peroxidázou, který má silnou afinitu k biotinu navázanému na PCR produktech. Následovalo promývání s 2x SSPE/0,5% SDS a s 2x SSPE.

Reverzní hybridizace (RLB) 2. Vizualizace Reakce se vizualizovala pomocí chemiluminiscenčního roztoku Amersham ECL Western Blotting Detection Reagent (GE Healthcare Life Sciences), který byl přidaný k membráně. Vizualizačný roztok se vylil, membránu jsme vložili do plastikového sáčku a přenesli do tmavé komory, kde jsme jiumístili do kazety s fotocitlivým RTG filmem. Po expozici se film v tmavé komoře vybral a vyvolal za pomocí vývojky (Fomadon P, FOMA) a ustalovače (Fomafix P, FOMA).

Reverzní hybridizace (RLB) 3. Výsledek Název sondy Konc. Sond (µm) A-G: WNV 10 7-10 1 kopií/µl; H-N: USUV 10 7-10 1 kopií/µl; O-U: TBEV 10 7-10 1 kopií/µl; V: Negativní kontrola 1,2 5 7,8 5 13,14 5 3,4 WNVinNS5- Probe4 2,5 5,6 1 9,10 USUVinNS5- Probe1 2,5 11,12 1 15,16 TBEVinNS5- Probe1 2,5 17,18 1

Reverzní hybridizace (RLB) 3. Závěr Slabší signál v případě WNV 10 7-10 6 kopií/µl byl pravděpodobně způsobený zlým navázáním vizualizačního roztoku nebo přesycením vazebných míst vysokým množstvím PCR produktu. Citlivost PCR reakce a metody reverzní hybridizace na základě NS5 genu je pro WNV a USUV 1 10 3 kopií/µl a pro TBEV 1 10 4 kopií/µl. Nespecifické skvrny (malé tečky mimo místa navázaných sond) vznikly pravděpodobně nevhodným vymýváním. Jako vhodná koncentrace sondy byla vybraná koncentrace 2.5 µm. Sonda WNVinNS5-Probe4 zachytí jak WNV tak i USUV, ale na základě sondy USUVinNS5-Probe1 jsme schopni tyto dva viry odlišit.

Vyšetření klinických vzorek metodou reverzní hybridizace Stejný postup byl zopakovaný na klinických vzorcích použitých bylo 16 klinických vzorek (ptačí výtěry), kontrola izolace (WNV) a kontrola PCR (USUV). Pro kontrolu správně provedené reverzní hybridizace a snadnější orientaci na membráně byly použité všechny 3 referenční kmeny v koncentraci 10 6 kopií/µl (WNV, USUV a TBEV). 2.5 µm sondy byly na membránu navázané duplicitně, do prvních linií a mezi sondy bylo pipetované NaHCO 3. Abychom se zbavili nespecifických skvrn byly přidané promývací kroky a prodloužený čas v případě některých promývání.

Výsledek Vzorky vyšli negativně. Sonda WNVinNS5-Probe4 zachytila kontroly WNV 10 6 kopií/µl, USUV 10 6 kopií/µl, WNV (kontrola izolace) a USUV (kontrola PCR). Pomocí sondy USUVinNS5-Probe1 jsme zachytili USUV 10 6 kopií/µl a USUV (kontrola PCR). Sondou TBEVinNS5-Probe1 jsme detekovali pouze kontrolu TBEV 10 6 kopií/µl. Negativní kontroly vyšli negativně. 1 2xSSPE/ 2 2xSSPE/ 3 WNV 10 6 4 2xSSPE/ 5 USUV 10 6 6 2xSSPE/ 7 TBEV 10 6 8 2xSSPE/ 9 Vzorka 1 10 Vzorka 2 11 Vzorka 3 12 Vzorka 4 13 Vzorka 5 14 Vzorka 6 15 Vzorka 7 16 Vzorka 8 17 Vzorka 9 18 Vzorka 10 19 Vzorka 11 20 Vzorka 12 21 Vzorka 13 22 Vzorka 14 23 Vzorka 15 24 2xSSPE/ 26 PK izol. - WNV 27 2xSSPE/ 28 PK PCR - USUV 29 2xSSPE/ 30 NK (izol) 31 2xSSPE/ 32 NTC (RT) 33 2xSSPE/ 34 NK PCR 35-38 2xSSPE/

Závěr Metoda RLB je vhodnou metodou k vyšetření většího množství patogenů najednou na přítomnost nukleové sekvence několika vybraných virů. My jsme se zaměřili na detekci flavivirů vyskytujících se ve střední Evropě a podařilo se nám navrhnout specifické sondy pro WNV, USUV a TBEV. Citlivost PCR reakce a metody reverzní hybridizace na základě NS5 genu je pro WNV a USUV 1 10 3 kopií/µl a pro TBEV 1 10 4 kopií/µl. Zvýšení citlivosti máme v plánu pomocí nested PCR.

Závěr Na počátku standardizace metody RLB jsme měli problém s nečistotami na membráně, avšak přidáním promývacích kroků a prodloužením některých promývacích časů jsme dosáhli lepší čistoty membrány. Vyšetřené vzorky vyšli negativně, avšak k definitivnímu vyhodnocení (ne)přítomnosti virů ve vzorkách nebylo doposud vyšetřené dostatečné množství vzorek.

Následující kroky 1. Stanovení senzitivity metody vyjádřené v TCID 50, anebo PFU počínající od izolace RNA. 2. Druhově specifické sondy nacházející se v jiném genu jsou již navrženy a budou otestovány. 3. Navrhnout sondy, za pomocí kterých bychom byli schopni odlišit jednotlivé podtypy, resp. linie. 4. Navrhnout sondy vhodné na detekci ostatních arbovirů vyskytující se ve střední Evropě.

Děkuji za pozornost! Studie byla podpořena grantem VEGA 1/0729/16 a ITMS 26220120002 (INFEKTZOON).