Příloha 1: Série chromatogramů vybraných standardů polyfenolických látek zaznamenány pomocí metody HPLC s detekcí UV-DAD.



Podobné dokumenty
Příloha 2. Návod pro laboratorní úlohu

Příprava materiálu byla podpořena projektem OPPA č. CZ.2.17/3.1.00/33253

Identification of selected polyphenols in extracts of medicinal plants

Konfirmace HPLC systému

ROSTLINNÉ FENOLOVÉ LÁTKY A FLAVONOIDY

Příprava materiálu byla podpořena projektem OPPA č. CZ.2.17/3.1.00/33253

Problémy u kapalinové chromatografie

Stanovení sacharidů ve vybraných přírodních matricích pomocí kapalinové chromatografie s odpařovacím detektorem rozptylu světla (UHPLC-ELSD)

VYUŽITÍ TEPELNÉHO ZMLŽOVAČE V AAS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU HPLC - ZEARALENON

Ústav molekulární a translační medicíny LF UP - HPLC

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU VITAMÍNU C METODOU HPLC

P. Martinková, D. Pospíchalová, R. Jobánek, M. Jokešová. Stanovení perfluorovaných organických látek v elektroodpadech

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU VITAMÍNU D METODOU HPLC

Metodický postup pro stanovení PAU v půdách volných hracích ploch metodou HPLC a GC

Problémy v kapalinové chromatografii. Troubleshooting

Analýza směsí, kvantitativní NMR spektroskopie a využití NMR spektroskopie ve forenzní analýze

Mobilní fáze. HPLC mobilní fáze 1

VYUŽITÍ BEZKONTAKTNÍ VODIVOSTNÍ DETEKCE PRO HPLC SEPARACI POLYKARBOXYLÁTOVÝCH DERIVÁTŮ CYKLENU. Anna Hamplová

Stanovení sacharidů ve vybraných přírodních matricích pomocí kapalinové chromatografie s odpařovacím detektorem rozptylu světla (HPLC-ELSD)

L 54/116 CS Úřední věstník Evropské unie

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU SEMDURAMICINU METODOU HPLC

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU NEPOVOLENÝCH DOPLŇKOVÝCH LÁTEK METODOU LC-MS

Evropský sociální fond Praha & EU: Investujeme do vaší budoucnosti LC-NMR 1. Jan Sýkora

SKUPINOVÁ ANALÝZA MOTOROVÝCH NAFT

Metodika 3: uvedení systému Jasco LC 2000 do provozu

Příprava materiálu byla podpořena projektem OPPA č. CZ.2.17/3.1.00/33253

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv Vydání 1 STANOVENÍ OBSAHU KOKCIDIOSTATIK METODOU LC-MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv Vydání 1 STANOVENÍ OBSAHU KOKCIDIOSTATIK METODOU LC-MS

kakao a jeho slo ení okoláda: výroba, slo ení, jakostní po adavky analýza kakaa analýza okolády

Iontové zdroje II. Iontový zdroj. Data. Vzorek. Hmotnostní analyzátor. Zdroj vakua. Iontové zdroje pracující za sníženého tlaku

13/sv. 6 CS (80/891/EHS)

Kapalinová chromatografie s tandemovou hmotnostní detekcí Teoretický úvod

CS Úřední věstník Evropské unie L 54/85

Příprava materiálu byla podpořena projektem OPPA č. CZ.2.17/3.1.00/33253

CRH/NPU I - Systém pro ultraúčinnou kapalinovou chromatografii (UHPLC) ve spojení s tandemovým hmotnostním spektrometrem (MS/MS)

Analýza kofeinu v kávě pomocí kapalinové chromatografie

L 54/80 CS Úřední věstník Evropské unie

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU LC-MS - FUMONISIN B 1 A B 2

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU VITAMÍNU D METODOU LC/MS

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MADURAMICINU A SEMDURAMICINU METODOU HPLC

LABORATOŘ ANALÝZY POTRAVIN A PŘÍRODNÍCH PRODUKTŮ. Stanovení těkavých látek

CS Úřední věstník Evropské unie L 54/89

Vysokoúčinná kapalinová chromatografie. Petr Kozlík Katedra analytické chemie

LABORATOŘ ANALÝZY POTRAVIN A PŘÍRODNÍCH PRODUKTŮ

UNIVERZITA KARLOVA V PRAZE FARMACEUTICKÁ FAKULTA V HRADCI KRÁLOVÉ RIGORÓZNÍ PRÁCE

P. Martinková, R. Jobánek, D. Pospíchalová. Stanovení vybraných léčiv v čistírenském kalu

Hydrofobní chromatografie

ÚSTAV CHEMIE A ANALÝZY POTRAVIN

Inovace bakalářského studijního oboru Aplikovaná chemie CZ.1.07/2.2.00/

Laboratoř Metalomiky a Nanotechnologií

Návod k instalaci a obsluze elektronické oběhové čerpadlo

Principy chromatografie v analýze potravin

No. 1- určete MW, vysvětlení izotopů

ODŮVODNĚNÍ VEŘEJNÉ ZAKÁZKY DLE 156 ZÁKONA 137/2006 Sb., O VEŘEJNÝCH ZAKÁZKÁCH

ÚSTAV ORGANICKÉ TECHNOLOGIE

Repetitorium chemie IX (2016) (teorie a praxe chromatografie)

Vysokoúčinná kapalinová chromatografie. Petr Kozlík Katedra analytické chemie

Možnosti monitorování expozice diisokyanátům. Š. Dušková SZÚ Praha

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MASTNÝCH KYSELIN V OLEJÍCH A TUCÍCH METODOU GC

KAPALINOVÁ CHROMATOGRAFIE A ABSORPČNÍ UV SPEKTROFOTOMETRIE

Příloha 1. Návod pro laboratorní úlohu

Písemná zpráva zadavatele

Zajištění správnosti výsledků analýzy kotininu a kreatininu

Danica Pospíchalová. Stanovení nelegálních drog a jejich metabolitů v odpadních vodách

Inkubace enzymů se substráty

Aplikace elektromigračních technik

ERYTHROMYCINI ETHYLSUCCINAS. Erythromycin-ethylsukcinát

STANOVENÍ TĚKAVÝCH HALOGENOVÝCH UHLOVODÍKŮ VE VODNÉM PROSTŘEDÍ METODOU PLYNOVÉ CHROMATOGRAFIE S DETEKCÍ NA PRINCIPU ELEKTRONOVÉHO ZÁCHYTU (GC/ECD)

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU HPLC - OCHRATOXIN A

Stanovení fenolických látek pomocí kapalinové chromatografie

Hmotnostní spektrometrie

STANOVENÍ AMINOKYSELINOVÉHO SLOŽENÍ BÍLKOVIN. Postup stanovení aminokyselinového složení

Základy interpretace hmotnostních spekter

VYSOKOÚČINNÁ KAPALINOVÁ CHROMATOGRAFIE ZADÁNÍ ÚLOHY

Úloha: Stanovení pálivosti paprik metodou kapalinové chromatografie

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MELAMINU A KYSELINY KYANUROVÉ METODOU LC-MS

Příprava materiálu byla podpořena projektem OPPA č. CZ.2.17/3.1.00/33253

Chromatografické metody základní rozdělení a instrumentace

STANOVENÍ AZOBARVIV VE SMĚSI METODOU RP-HPLC SE SPEKTROFOTOMETRICKOU DETEKCÍ

STANOVENÍ KOFEINU V NÁPOJÍCH METODOU HPLC

CS Úřední věstník Evropské unie L 54/59

Stanovení vitaminu B2 v produktech živočišného původu. Bc. Magda Hábová

Biogenníaminy. pro HPLC. Dny kontroly kvality a speciálních metod HPLC Bio-Rad Lednice Listopadu, 2012

LABORATOŘ ANALÝZY POTRAVIN A PŘÍRODNÍCH PRODUKTŮ. Stanovení těkavých látek

Využití HPLC v analýze potravin

Sekvenční injekční analýza laboratoř na ventilu (SIA-LOV) (Stanovení obsahu heparinu v injekčním roztoku)

Stanovení kyseliny pantotenové v lupíncích Corn flakes pomocí kapilární izotachoforézy

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU MYKOTOXINŮ METODOU LC-MS - aflatoxin B1, B2, G1 a G2

LABORATOŘ ANALÝZY POTRAVIN A PŘÍRODNÍCH PRODUKTŮ

UNIVERZITA PARDUBICE FAKULTA CHEMICKO-TECHNOLOGICKÁ BAKALÁŘSKÁ PRÁCE Jan Němec

Vývoj a validace HPLC metody pro stanovení vybraných biologicky aktivních látek v potravinových doplňcích

Univerzita Karlova v Praze Farmaceutická Fakulta v Hradci Králové Katedra analytické chemie

Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ OBSAHU DEKOCHINÁTU METODOU HPLC

Uvod. Chem. Listy 91, (1997) STANOVENI 1-HYDROXYPYRENU VYSOKOÚČINNOU KAPALINOVOU CHROMATOGRAFIÍ S ELEKTROCHEMICKOU DETEKCÍ

Petr Greguš, Lucie Nováková. Farmaceutická fakulta v Hradci Králové, UK Praha Heyrovského 1203, Hradec Králové gregp4aa@faf.cuni.

KOMBINACE CHROMATOGRAFICKÝCH A SPEKTRÁLNÍCH METOD

PÍSTOVÁ ČERPADLA. Jan Kurčík 3DT

Vysokoúčinná kapalinová chromatografie

Analýzy v Sekci aplikovaného výzkumu zelenin a speciálních plodin VÚRV, v.v.i. Marie Nosálková Sandra Benická Přemysl Indrák

Transkript:

PŘÍLOHY 1-3

Seznam příloh Příloha 1: Série chromatogramů vybraných standardů polyfenolických látek zaznamenány pomocí metody HPLC s detekcí UV-DAD. Obr. 1.1: Série chromatogramů standardů polyfenolických látek zaznamenány metodou RP-HPLC s detekcí UV-DAD. Identifikace píků: 1. kyselina gallová, 2. kyselina skořicová, 3. kyselina ferulová, 4. kyselina kumarová, 5. rutin, 6. morin, 7. hesperetin, 8. vanilin, 9. quercitrin, 10. chrysin, 11. naringin, 12. quercetin, 13. resveratrol, 14. 4-methylumbelliferon, 15. hesperidin Obr. 1.2: Chromatogramy standardů polyfenolických látek zaznamenány metodou RP-HPLC s detekcí UV-DAD. Identifikace píků: 1. flavon, 2. 3-hydroxyflavon, 3. morin, 4. dihydromyricetin, 5. naringin, 6. rutin, 7.baicalin, 8. resveratrol, 9. kyselina ferulová, 10. hesperetin, 11. kyselina kumarová, 12. kyselina gallová, 13. chrysin, 14. hesperidin, 15. quercetin Příloha 2: Série UV spekter vybraných standardů změřená pomocí UV-DAD. Obr 2.1: UV spektrum flavonu Obr. 2.2: UV spektrum 3-hydroxyflavonu Obr. 2.3: UV spektrum morinu Obr. 2.4: UV spektrum dihydromyricetinu. Obr. 2.5: UV spektrum quercetinu Obr. 2.6: UV spektrum naringinu Obr. 2.7: UV spektrum rutinu Obr. 2.8: UV spektrum baicalinu Obr. 2.9: UV spektrum resveratrolu Obr. 2.10: UV spektrum kyseliny ferulové Obr. 2.11: UV spektrum hesperetinu 2

Obr. 2.12: UV spektrum kyseliny p-kumarové Obr. 2.13: UV spektrum flavonu kyseliny gallové Obr. 2.14: UV spektrum chrysinu Obr. 2.15: UV spektrum hesperidinu Obr. 2.16: UV spektrum vanilinu Obr. 2.17: UV spektrum quercitrinu Obr. 2.18: UV spektrum kyseliny skořicové Obr. 2.19: UV spektrum kurkuminu Obr. 2.20: UV spektrum 4-methylumbelliferonu Příloha 3: Série hmotnostních ionizačních a fragmentačních spekter vybraných standardů polyfenolických látek v negativním nebo v pozitivním módu. Obr. 3.1: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum 3-hydroxyflavonu v pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum 3-hydroxyflavonu v pozitivním módu. Sken:Product Ion. Kolizní energie: 30 V Obr. 3.2: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum baicalinu v negativním i pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum baicalinu v negativním i pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 10 V. Obr. 3.3: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum chrysinu v negativním i pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum chrysinu v pozitvním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 30 V. Obr. 3.4: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum dihydromyricetinu v pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum dihydromyricetinu v pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 10 V. Obr. 3.5: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum kyseliny ferulové v pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum kyseliny ferulové v pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 10 V. 3

Obr. 3.6: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum flavonu v pozitivním módu.. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum flavonu v pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 30 V. Obr. 3.7: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum kyseliny gallové v negativním i v pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum kyseliny gallové v negativním i v pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 10 V. Obr. 3.8: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum hesperetinu v negativním i v pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum hesperetinu v negativním i v pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 20 V. Obr. 3.9: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum hesperidinu v negativním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum hesperidinu v negativním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 20 V. Obr. 3.10: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum kyseliny kumarové v negativním i v pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum kyseliny kumarové v pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 10 V. Obr. 3.11: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum morinu v negativním i pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum morinu v negativním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 20 V. Obr. 3.12: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum naringinu v negativním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum naringinu v pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 10 V. Obr. 3.13: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum resveratrolu v negativním a pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum resveratrolu v negativním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 20 V. Obr. 3.14: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum rutinu v negativním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum rutinu v negativním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 30 V. 4

Příloha 1 Série chromatogramů vybraných standardů polyfenolických látek zaznamenány pomocí metody HPLC s detekcí UV-DAD. (1. gradient) Mobilní fáze: 10-60 % acetonitrilu; 0,1 % kyseliny mravenči; voda. Průtok mob. fáze: 0,32 ml/min. Objem nástřiku vzorku: 20 µl. Teplota kolony: 40 C. Teplota autosampleru: 4 C. Tlak: 160 barr. Čas analýzy: 30 min. Detekce: 290 nm. 5

6

7

8

9

Obr. 1.1. Chromatogramy standardů polyfenolických látek metodou RP-HPLC s detekcí DAD. Identifikace píků: 1. kyselina gallová, 2. kyselina skořicová, 3. kyselina ferulová, 4. kyselina kumarová, 5. rutin, 6. morin, 7. hesperetin, 8. vanilin, 9. quercitrin, 10. chrysin, 11. neidentifikovaný pík, 12. naringin, 13. quercetin, 14. resveratrol, 15. 4-methylumbelliferon, 16. hesperidin. Mobilní fáze: 10-60 % acetonitrilu; 0,1 % kyseliny mravenčí; voda. Průtok mob. fáze: 0,32 ml/min. Objem nástřiku vzorku: 20 µl. Teplota kolony: 40 C. Teplota autosampleru: 4 C. Tlak: 160 barr. Čas analýzy: 30 min. Detekce: 290 nm. Malé píky zaznamenané na chromatogramech mohou být důsledky nečistot v roztocích standardů. První dva neočíslované píky na chromatogramech odpovídají kyselině mravenčí a methanolu. 10

Série chromatogramů vybraných standardů polyfenolických látek zaznamenány pomocí metody HPLC s detekcí UV-DAD. (2. gradient) Mobilní fáze: 35-90 % acetonitrilu; 0,1 % kyseliny mravenčí; voda. Průtok mob. fáze: 0,25 ml/min. Objem nástřiku vzorku: 20 µl. Teplota kolony: 40 C. Teplota autosampleru: 4 C. Tlak: 240 barr. Čas analýzy: 38 min. Detekce: 290 nm. 11

12

13

14

15

16

Obr. 1.2. Chromatogramy standardů polyfenolických látek metodou RP-HPLC s detekcí UV- DAD. Identifikace píků: 1. flavon, 2. 3-hydroxyflavon, 3. morin, 4. dihydromyricetin, 5. naringin, 6. rutin, 7.baicalin, 8. resveratrol, 9. kyselina ferulová, 10. hesperetin, 11. kyselina kumarová, 12. kyselina gallová, 13. chrysin, 14. hesperidin, 15. quercetin. Mobilní fáze: 35-90 % acetonitrilu; 0,1 % kyseliny mravenčí; voda. Průtok mob. fáze: 0,25 ml/min. Objem nástřiku vzorku: 20 µl. Teplota kolony: 40 C. Teplota autosampleru: 4 C. Tlak: 240 barr. Čas analýzy: 38 min. Detekce: 290 nm. 17

Příloha 2 Série UV spekter vybraných standardů změřená pomocí UV-DAD. Obr. 2.1. UV spektrum flavonu změřené detekcí UV-DAD. 18

Obr. 2.2. UV spektrum 3-hydroxyflavonu změřené detekcí UV-DAD. 19

Obr. 2.3. UV spektrum morinu změřené detekcí UV-DAD. Obr. 2.4. UV spektrum dihydromyricetinu změřené detekcí UV-DAD. 20

Obr. 2.5. UV spektrum quercetinu změřené detekcí UV-DAD. 21

Obr. 2.6. UV spektrum naringinu změřené detekcí UV-DAD. Obr. 2.7: UV spektrum rutinu změřené detekcí UV-DAD. 22

Obr. 2.8: UV spektrum baicalinu změřené detekcí UV-DAD. 23

Obr. 2.9: UV spektrum resveratrolu změřené detekcí UV-DAD. Obr. 2.10: UV spektrum kyseliny ferulové změřené detekcí UV-DAD. 24

Obr. 2.11: UV spektrum hesperetinu změřené detekcí UV-DAD. Obr. 2.12: UV spektrum kyseliny p-kumarové změřené detekcí UV-DAD. 25

Obr. 2.13: UV spektrum kyseliny gallové změřené detekcí UV-DAD. 26

Obr. 2.14: UV spektrum chrysinu změřené detekcí UV-DAD. Obr. 2.15: UV spektrum hesperidinu změřené detekcí UV-DAD. 27

Obr. 2.16: UV spektrum vanilinu změřené detekcí UV-DAD. 28

Obr. 2.17: UV spektrum quercitrinu změřené detekcí UV-DAD. Obr. 2.18: UV spektrum kyseliny skořicové změřené detekcí UV-DAD. Obr. 2.19: UV spektrum kurkuminu změřené detekcí UV-DAD. 29

Obr. 2.20: UV spektrum 4-methyumbelliferonu změřené detekcí UV-DAD. 30

Příloha 3 Série hmotnostních ionizačních a fragmentačních spekter vybraných standardů polyfenolických látek v negativním nebo v pozitivním módu. Obr. 3.1: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum 3-hydroxyflavonu v pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum 3-hydroxyflavonu v pozitivním módu. Sken:Product Ion. Kolizní energie: 30 V. 31

Obr. 3.2: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum baicalinu v negativním i pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum baicalinu v negativním i pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 10 V.. 32

Obr. 3.3: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum chrysinu v negativním i pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum chrysinu v pozitvním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 30 V. 33

Obr. 3.4: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum dihydromyricetinu v pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum dihydromyricetinu v pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 10 V. Obr. 3.5: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum kyseliny ferulové v pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum kyseliny ferulové v pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 10 V. 34

Obr. 3.6: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum flavonu v pozitivním módu.. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum flavonu v pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 30 V. 35

Obr. 3.7: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum kyseliny gallové v negativním i v pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum kyseliny gallové v negativním i v pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 10 V. 36

Obr. 3.8: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum hesperetinu v negativním i v pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum hesperetinu v negativním i v pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 20 V. 37

Obr. 3.9: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum hesperidinu v negativním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum hesperidinu v negativním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 20 V. Obr. 3.10: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum kyseliny kumarové v negativním i v pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum kyseliny kumarové v pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 10 V. 38

Obr. 3.11: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum morinu v negativním i pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum morinu v negativním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 20 V. 39

Obr. 3.12: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum naringinu v negativním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum naringinu v pozitivním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 10 V. 40

Obr. 3.13: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum resveratrolu v negativním a pozitivním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum resveratrolu v negativním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 20 V. 41

Obr. 3.14: Nahoře: Hmotnostní ionizační spektrum rutinu v negativním módu. Sken: SIM. Dole: Hmotnostní fragmentační spektrum rutinu v negativním módu. Sken: Product Ion. Kolizní energie: 30 V. 42