RESPIRAČNÍ ONEMOCNĚNÍ SKOTU

Podobné dokumenty
PRŮJMOVÁ ONEMOCNĚNÍ SKOTU

MIKROBIOLOGICKÁ LABORATOŘ NEMOCNICE ŠUMPERK

Odběr a transport biologického materiálu do mikrobiologické laboratoře. Jana Juránková OKM FN Brno

V lednici (2 8 C) Do 24 hod dní BK - 50 dnů. Uricult Při pokojové teplotě Do hod dní. Při pokojové teplotě

Příloha č.5 Seznam PCR vyšetření

Diagnostická laboratoř Praha. Laboratorní příručka Příloha č.1. Přehled vyšetření prováděných v Laboratoři klinické mikrobiologie

Odběr a transport biologického materiálu do mikrobiologické laboratoře. Jana Juránková OKM FN Brno

REPRODUKČNÍ ONEMOCNĚNÍ PRASAT

Speciální odběrové soupravy krácená verze pro tisk. Odběrové soupravy pro odběr žilní krve

Kontakt Telefon: Služba : ATB :

prezentace OKMP 1

Interpretace výsledků bakteriologických vyšetření

Fakultní nemocnice Brno Laboratoře Oddělení klinické mikrobiologie Jihlavská 20, Brno

Odběry vzorků u pacientů s podezřením na infekci krevního řečiště

Původce Metoda Cena [Kč]

NÁRODNÍ PROGRAM SLEDOVÁNÍ REZISTENCÍ K ANTIMIKROBIKŮM U VETERINÁRNĚ VÝZNAMNÝCH PATOGENŮ. část I. za rok 2017

SARS - Severe Acute Respiratory Syndrome (těžký akutní respirační syndrom).

Sérologická diagnostika chřipky možnosti a diagnostická úskalí

EUC Laboratoře s.r.o. EUC Laboratoře Praha Palackého 720/5, Nové Město, Praha 1

C 16 Zásady odběrů biologického materiálu

VÝZNAM NĚKTERÝCH FAKTORŮ PREANALYTICKÉ FÁZE V MOLEKULÁRNÍ BIOLOGII

PERTUSE diagnostika a klinické projevy. Vilma Marešová I.infekční klinika UK 2.LF a IPVZ FN Na Bulovce, Praha

Diagnostika ostatních střevních patogenů. V. IBD pracovní dny, Hořovice 2019 Jana Matějková

Odbor ochrany zdraví a pohody zvířat. Národní program sledování rezistencí k antimikrobikům u veterinárně významných patogenů

Respirační infekce a jejich původci. MUDr. Černohorská Lenka, Ph.D.

Základní pokyny pro odběry biologických vzorků na mikrobiologické vyšetření

Praktické využití serologických metod

Paratuberkulóza u masného skotu

Původce Metoda Cena Gastrointestinální soustava Escherichia coli Kultivace 90 Identifikace 300 Stanovení patogenních faktorů

EUC Laboratoře s.r.o. EUC Laboratoře Praha Palackého 720/5, Praha 1

Cíle: Obecné zásady při odběru vzorků pro bakteriologické vyšetření

IMUNOENZYMATICKÉ SOUPRAVY K DIAGNOSTICE CYTOMEGALOVIROVÉ INFEKCE

Možnosti diagnostiky chorob u kanců a v inseminačních dávkách MVDr. Petr Václavek, Ph.D. Státní veterinární ústav Jihlava

Rapid-VIDITEST RSV. (Jednokrokový kazetový test pro in vitro diagnostiku Respiračního syncytiálního viru z nosních výtěrů, výplachů a aspirátů)

Lékařská mikrobiologie II

synlab czech s.r.o. U Vojenské nemocnice 1200, Praha 6

Diagnostika infekce Chlamydia trachomatis pomocí molekulárně genetické metody real time PCR nejen u pacientek z gynekologických zařízení

Implementace laboratorní medicíny do systému vzdělávání na Univerzitě Palackého v Olomouci. reg. č.: CZ.1.07/2.2.00/

OBSAH DG. MIKROSKOPICKÁ /4/ NATIVNÍ PREPARÁTY BARVENÉ PREPARÁTY FLUORESCENČNÍ MIKROSKOPIE DG. MYKOLOGICKÁ /5/ DG.

Seznam vyšetření Pracoviště virologie

Seznam vyšetření Pracoviště virologie

LABORATOŘE EUROMEDIC s.r.o. Oddělení klinické mikrobiologie a autovakcín

Odběr, zpracování a uchování klinických vzorků

DY D NE N X Hana Vlastníková

Serologické vyšetřovací metody

Odběry biologického materiálu. Markéta Vojtová VOŠZ a SZŠ Hradec Králové

Zkušenosti s laboratorní diagnostikou infekcí virem Zika. Hana Zelená NRL pro arboviry Zdravotní ústav se sídlem v Ostravě

Přínos metody ELISPOT v diagnostice lymeské boreliózy

synlab czech s.r.o. U Vojenské nemocnice 1200, Praha 6

Seznam vyšetření Pracoviště virologie

Rapid-VIDITEST RSV. (Jednokrokový kazetový test pro in vitro diagnostiku Respiračního syncytiálního viru z nosních výtěrů, výplachů a aspirátů)

G-2 Pokyny pro uchování a transport materiálu odebraného na mikrobiologická vyšetření

Poslední trendy krevních odběrů. Mgr. Tomáš Grim Mgr. Zuzana Kučerová

Současné možnosti a úskalí diagnostiky pertuse

Syfilis přehledně. MUDr.Hana Zákoucká Odd. STI, NRL pro syfilis, Státní zdravotní ústav ROCHE

Příručka k odběru biologického materiálu pro vyšetření prováděná na OKM

Laboratorní diagnostika spalniček. A. Vinciková, E. Jílková Zdravotní ústav se sídlem v Ústí nad Labem

Mikrobiologické vyšetření jako podklad pro racionální cílenou antibiotickou terapii. Význam správné indikace vyšetření a dodržování

Rapid-VIDITEST RSV-Adenovirus Resp.

Rapid-VIDITEST Adenovirus Resp.

Suchá krevní skvrna (Suchá krevní kapka, Dried Blood Spot)

MUDr. Wezdenková Kateřina Laboratoře Mikrochem a.s., Šumperk

VYŠETŘENÍ TĚL ULOVENÉ ZVĚŘE. Inovace předmětu Registrační číslo projektu

PREGRADUÁLNÍ VZDĚLÁVÁNÍ V LÉKAŘSKÉ MIKROBIOLOGII

Tisková zpráva závěrečné zprávy projektu

LABORATOŘ MIKROBIOLOGIE II ROD STREPTOCOCCUS ROD ENTEROCOCCUS

Diagnostické metody v lékařské mikrobiologii

Rapid-VIDITEST Influenza A+B

Komplexní pohled na laboratorní diagnostiku Chlamydia pneumoniae

Výskyt a význam infekce Borna disease virem u pacientů léčených

A37 Dávivý kašel pertussis

MVDr. Zbyněk Semerád

synlab czech s.r.o. U Vojenské nemocnice 1200, Praha 6

Molekulárně biologické metody v mikrobiologii. Mgr. Martina Sittová Jaro 2014

A, B, AB, 0. Interpretace dle návodu k diagnostiku.

1. Indráková Vanda Změna č.1 na listech č. 1, 3, 4,

Rapid-VIDITEST Adenovirus Resp.

CZ.1.07/1.5.00/

Atypické pneumonie - moderní diagnostika. MUDr. Pavel Adamec Sang Lab klinická laboratoř, s.r.o.

MagPurix Viral/Pathogen Nucleic Acids Extraction Kit B

Implementace laboratorní medicíny do systému vzdělávání na Univerzitě Palackého v Olomouci. reg. č.: CZ.1.07/2.2.00/

Ústřední veterinární správa Státní veterinární správy. Nákazová situace u volně žijících zvířat v České republice a ve střední Evropě

Aplikace molekulárně biologických postupů v časné detekci sepse

PAROTITIDA VRACEJÍCÍ SE ONEMOCNĚNÍ. Vlasta Štěpánová 1, Miroslav Fajfr 1,2, Lenka Plíšková 3

Příloha č.3. název specifikace druh odebrané odběrové podmínky skladování poznámky frekvence zpracování

kultivační tampon v TPA pokojová teplota, 24 hod. 3 dny sterilní zkumavka, sterilní 2-8ºC, 18 hod. pokojová teplota, 1 hod. pokojová teplota, 24 hod.

Lékařská mikrobiologie současné možnosti oboru v AČR

Virus klíšťové encefalitidy (TBEV)

Interpretace dle návodu k diagnostiku.

Laboratorní manuál Transfuzního oddělení FNOL

Laboratorní manuál Transfuzního oddělení FNOL

Suchá krevní skvrna (Suchá krevní kapka, Dried Blood Spot)

1. Cíl metodiky. 2. Materiálové vybavení. 3. Metoda odběru vzorků

Laboratorní di agnostik HBV HCV a Vratislav Němeček Státní zdravotní stav ústav

Zdravotní ústav se sídlem v Ústí nad Labem Moskevská 1531/15, Ústí nad Labem

Validace a verifikace v oboru lékařské mikrobiologie Dokument VV v.1

Nabídka služeb. Mikrobiologie a serologie. RNDr.Zdeněk Čecháček s.r.o. Člen klinických laboratoří IFCOR Spektrum nabízených služeb

Zkušenosti s diagnostikou sepse pomocí testu SeptiFast Test M GRADE. Zdeňka Doubková Klinická mikrobiologie a ATB centrum VFN Praha

Podaří se zkvalitněním diagnostiky a očkováním adolescentů a dospělých snížit pertusi u dětí?

ŠKOLENÍ KKCTN dle čl. 12 pohotovostního plánu SVS

Transkript:

RESPIRAČNÍ ONEMOCNĚNÍ SKOTU ODBĚR VZORKŮ, ULOŽENÍ, TRANSPORT, VYŠETŘENÍ Biologický materiál k vyšetření: 1. nosní výtěr 2. výplašek (aspirát) dolních cest dýchacích (TTA, BAL) 3. sekční materiál 4. stěr z oropharyngu 5. sputum 6. krev/sérum 7. krev pro hemokulturu 8. odběr vzorků pro detekci Mycoplasma bovis a Mycoplasma sp. STÁTNÍ VETERINÁRNÍ ÚSTAV JIHLAVA

1) NOSNÍ VÝTĚR JAK? Odběr nosních výtěrů provádíme po zevní očistě nosních otvorů. Při použití pinzety nebo peanu, do které se uchopí tyčinka tamponu, se provede hlubší výtěr z kaudální části nosní dutiny, kde je větší pravděpodobnost záchytu respiračních patogenů. Pokud se odebere výtěr pouze z krajních částí nosních otvorů, vykultivuje se často stájová mikroflóra či komenzálové sliznice dutiny nosní. To vše pak přerůstá hledané patogeny a úspěšnost kultivačního vyšetření se komplikuje. Nosní výtěr je metoda nejméně technicky náročná a nejlevnější, ale s vysokým procentem kontaminace (komenzálové, stájová mikroflóra) či falešně negativních výsledků (nižší úspěšnost izolace respiračních patogenů). Nosní výtěry obecně často nevypovídají o infekci, která probíhá v dolních cestách dýchacích. KDY? Odběr vzorků z nemocných zvířat v jaké fázi onemocnění? na počátku nebo během respiračních obtíží v období bakteriémie/virémie, tzn. během horečky před léčbou antimikrobiky (antibiotiky a chemoterapeutiky) V pozdějších fázích onemocnění mohou být výsledky významně zkresleny sekundární bakteriální infekcí. KOLIK? Počet odebraných vzorků by se měl odvíjet od prevalence onemocnění v chovu, stadia onemocnění popř. dle již použité terapie, která může snížit citlivost diagnostických metod. Vyšší počet vzorků zvyšuje pravděpodobnost záchytu patogenů a následnou interpretaci výsledků. Obecně se při respiračních onemocněních skotu odebírá min. 3-5 vzorků výtěru. Vzhledem k nižšímu záchytu patogenů z nosních výtěrů je doporučován pro větší jistotu detekce vyšší počet vzorků (5-10). PRO JAKÉ VYŠETŘENÍ? Přímý průkaz patogenů se z výtěrů provádí různými laboratorními metodami: izolace a kultivace, MALDI-TOF, PCR, RT PCR, Real-time PCR, ELISA apod. Nosní výtěry jsou vhodné pro následující původce respiračních onemocnění u skotu: bakteriální původce respiračních onemocnění: Pasteurella multocida, Mannheimia haemolytica, Histophilus (Haemophilus) somni, a jiné např. Morganella morganii, Avibacterium anatis, Trueperella pyogenes (syn. Arcanobacterium pyogenes), Mycoplasma sp. apod. virové původce respiračních onemocnění (PCR, popř. izolace viru): BRSV, PI3, BVD-MD, IBR, adenoviry, bovinní coronavirus, rhinoviry apod. DO ČEHO? Výtěry se provádí nejčastěji do těchto odběrových souprav: A) AMIES Agar Gel Medium Transport Swab - with charcoal bakteriologické vyšetření B) Eswab - Copan Eswab Collection Kit - bakteriologické i virologické vyšetření 2

Ad A) AMIES Agar Gel Medium Transport Swab with charcoal Cat. No. 114C (COPAN Italia) souprava obsahuje: odběrový tampon (plastová tyčinka se smotkem syntetické bavlny) a zkumavku s médiem obsahující aktivní uhlí nebo bez aktivního uhlí. Tampon se se po odběru vloží do transportního media, kterým je Amiesova nebo Stuartova půda. Jedná se o universální transportní půdy zaručující přežití odebraných mikroorganismů (aerobních i anaerobních bakterií) po dobu nejméně 48 hodin, včetně náročných druhů. Tato media udržují mikroorganismy vitální při jejich sníženém metabolismu, nepomnožují se. Tampon a zkumavka s mediem jsou zataveny v obalu jako set a zevně na obalu je popsán způsob použití ve třech krocích vč. obrázků. Použití je velmi snadné. Vhodný pro bakteriologii. Nevhodný pro virologickou diagnostiku, neboť médium může způsobit inhibici při PCR testu. Ad B) Eswab - Copan Eswab Collection Kit Cat. No 480CE (COPAN Italia) souprava obsahuje: odběrový tampon zalamovací tyčinkou a zkumavku s 1 ml tekutého čirého Amiesova media ve zkumavce. Tampon je tzv. flokovaný, vyrobený nástřikem nylonových vláken na tyčinku, čímž se zvyšuje objem odebraného vzorku a nedochází k odmotávání vláken pohybem tamponu v kapalině v tekutém mediu, což je ideální pro extrakci vzorků. Používá se pro odběr vzorků pro molekulární a kultivační analýzu. Vzorek se z tamponu extrahuje do tekutého media a stává se tak homogenním pro vyšetření, lze jej takto v laboratoři použít i pro zamrazení a archivaci. Nevýhodou je krátká tyčinka tamponu. Doporučujeme pro použití pro výtěr z bronchů a plic např. při pitvě na farmě či na jatkách, tj. tam, kde nevadí, že je tampon krátký (primárně určený pro humánní medicínu). Tekutý objem je možné dávkovat pipetovat pro jednotlivé analýzy, tzn. jeden vzorek je vhodný na bakteriologickou izolaci i PCR testy. Z Eswab tamponu lze provést i nátěr pro mikroskopický preparát nebo použít homogenní tekutý materiál v laboratoři v automatizovaných systémech. 3

Eswab je vhodný pro bakteriologické i virologické vyšetření. Kapalné médium Eswabu uchovává jak nukleové kyseliny, tak antigeny bakterií, virů i chlamydií. Umožňuje přežití aerobních, anaerobních i jiných kultivačně náročných bakterií. JAK UCHOVÁVAT A TRANSPORTOVAT VZORKY? AMIES Agar Gel Medium Transport Swab - pro bakteriologické vyšetření - transport a uchování při teplotě 5-25 0 C - transport do laboratoře do 48 hodin Eswab Collection Kit - pro virologické i bakteriologické vyšetření - transport a uchování při teplotě 2-8 0 C - transport do laboratoře ideálně do 48 hodin Pozn. některé respiratorní patogeny, zvláště viry, Histophillus sp. a Haemophillus sp. jsou citlivé a náročnější na kultivaci. Po odběru vzorek doručte co nejdříve do laboratoře! Nutno počítat s časovou rezervou (např. dodání vzorků ve večerních hodinách, před víkendem nebo před svátky) tak, aby se 48 hodinový interval zbytečně neprodlužoval. Správný odběr a transport ovlivňuje výsledek bakteriologického a virologického vyšetření. 2) VÝPLAŠEK ASPIRÁT dolních cest dýchacích Odběr vzorku aspirátu je nejnáročnější, ale diagnosticky nejvhodnější. Je zde vysoká pravděpodobnost záchytu patogenů z dolních cest dýchacích bez další kontaminace, což usnadňuje diagnostiku a interpretaci výsledků popř. volbu následné léčby zvířat. JAK? Existují různé postupy odběru výplašku/aspirátu z dolních cest dýchacích jako např. transtracheální aspirát (TTA) bronchoalveolární laváž (BAL) tracheobronchiální aspirát S odebraným vzorkem se ovšem zachází vždy stejně. Postup odběru TTA viz instruktáž MSD - WEB Farmářské fórum diagnostický průvodce http://www.msd-farmarske-forum.cz/diagnosticky-pruvodce/skot-diagnoza/respiratornionemocneni/vyplasek-aspirat-dolnich-cest-dychacich/ KDY? Odběr vzorků z nemocných zvířat v jaké fázi onemocnění? na počátku nebo během respiračních obtíží v období bakteriémie/virémie, tzn. během horečky před léčbou antimikrobiky (antibiotiky a chemoterapeutiky) 4

V pozdějších fázích onemocnění mohou být výsledky významně zkresleny sekundární bakteriální infekcí. PRO JAKÉ VYŠETŘENÍ? Přímý průkaz patogenů se z výplašků provádí různými laboratorními metodami: izolace a kultivace, MALDI-TOF, PCR, RT PCR, Real-time PCR, ELISA apod. Výplašky jsou vhodné pro následující původce respiračních onemocnění u skotu: bakteriální původce respiračních onemocnění: Pasteurella multocida, Mannheimia haemolytica, Histophilus (Haemophilus) somni, a jiné např. Morganella morganii, Avibacterium anatis, Trueperella pyogenes (syn. Arcanobacterium pyogenes), Mycoplasma sp. apod. virové původce respiračních onemocnění (PCR, popř. izolace viru): BRSV, PI3, BVD-MD, IBR, adenoviry, bovinní coronavirus, rhinoviry apod. DO ČEHO? Transportní sterilní zkumavka bez média. JAK UCHOVÁVAT A TRANSPORTOVAT VZORKY? Vzorek TTA přelijte do sterilní transportní zkumavky. Není nutno používat zkumavky s transportním médiem, ale možné to je (např. Eswab). Vzorek TTA zchladit (2-8 C) a doručit do laboratoře do 24 hodin. Vzorek je pak vhodný na bakteriologické i virologické vyšetření. Pokud nemohu vzorek TTA doručit do laboratoře do 24 hod. pak je vhodné vzorek zamrazit (transport stačí opět v chladu - při transportu může rozmrznout). Zamrazený vzorek je méně vhodný pro bakteriologické kultivační vyšetření resp. snižuje jeho citlivost. Vysoká teplota (i opakované zamrazování) degraduje ve vzorku TTA patogen (zejména viry) a snižuje tak pravděpodobnost úspěšné diagnostiky. 3) SEKČNÍ MATERIÁL, KADAVER JAK? Zásadní je pokud možno aseptický odběr vzorků sekčního materiálu z čerstvého kadáveru. Vzorky odebíráme z utracených zvířat a čerstvě uhynulých kusů. Postmortální změny mohou silně ovlivnit výsledek laboratorní diagnostiky. Ideální je tedy utracení nemocného zvířete s klinickým obrazem a následný aseptický odběr vzorků sekčního materiálu a stěrů ihned po utracení nebo zaslání celého kadáveru. Pokud situace nedovoluje pitvu a odběr vzorků přímo v chovu, je nutné čerstvě uhynulá či utracená zvířata neprodleně doručit do laboratoře a to nejlépe do 2-3 hodin. V případě uhynutí zvířete v nočních hodinách je třeba zvážit vhodnost vzorku k vyšetření. 5

Možno odebrat: celý kadáver - vhodné pro patologicko-anatomické vyšetření a další laboratorní vyšetření (PCR, virologické, bakteriologické aj.) nutný okamžitý transport do laboratoře celé plíce a pulmonální mízní uzliny část plic (cca 15 x 15 cm) - odstřihnout část s přechodem zdravé a změněné tkáně. Důležité je nechat sekční materiál vychladnout (nebalit teplé), jinak dochází k znehodnocení materiálu vlivem rychle probíhajících autolytických procesů. Po vychladnutí zabalit do nepropustného obalu a zajistit před prosáknutím a uvolnění obsahu. výtěry z bronchů kadáveru, oropharyngeální výtěr, popř. výtěr změněné plicní tkáně (AMIES Agar gel Swab, nebo Eswab). KDY? pro bakteriologické vyšetření upřednostnit neléčené zvíře předchozí terapie není překážkou pro vyšetření respiračních patogenů metodou PCR (detekce nukleové kyseliny) PRO JAKÉ VYŠETŘENÍ? Sekční materiál: Přímý průkaz patogenů se ze sekčního materiálu se provádí různými laboratorními metodami: izolace a kultivace, MALDI-TOF, PCR, RT-PCR, Real-time PCR, ELISA, IFA (imunofluorescence), IHC (imunohistochemie), histologie apod. Nosní výtěry jsou vhodné pro následující původce respiračních onemocnění u skotu: bakteriální původce respiračních onemocnění: Pasteurella multocida, Mannheimia haemolytica, Histophilus (Haemophilus) somni, a jiné např. Morganella morganii, Avibacterium anatis, Trueperella pyogenes (syn. Arcanobacterium pyogenes), Mycoplasma sp. apod. virové původce respiračních onemocnění (PCR, popř. izolace viru): BRSV, PI3, BVD-MD, IBR, adenoviry, bovinní coronavirus, rhinoviry apod. Patologicko anatomická pitva patolog posoudí nález s ohledem na infekční a neinfekční příčiny úhynu, zdravotních potíží na základě pato-anatomického nálezu (a požadavku zákazníka) a odborného posouzení provede odběr vzorků - tkání, orgánů, tělních tekutin pro následná vyšetření: bakteriologické, virologické, mykologické, sérologické, parazitologické,molekulárně biologické,histologické, mikroskopické, imunohistochemické, chemické, toxikologické apod. patolog po ukončení dílčích laboratorních analýz (viz výše) vyhodnocuje souhrnně všechny výsledky a stanovuje závěrečnou diagnózu. DO ČEHO? Řádně zabalený sekční materiál tak, aby nedošlo k úniku tekutin ze vzorku, tzn. trojitý obal = nepropustný obal např. igelit, savý materiál, nepropustný obal igelit. Každý vzorek orgánu musí být zabalen individuálně (uzavřený igelitový sáček). 6

JAK UCHOVÁVAT A TRANSPORTOVAT VZORKY? Dodržet chladící řetězec (2-8 C) a doručit do laboratoře nejlépe do 24 hodin po odběru. Pokud nemohu vzorky sekčního materiálu doručit do laboratoře do 48 hod. pak je vhodné vzorky zamrazit (zejména pro PCR vyšetření). Zamrazený vzorek je méně vhodný pro bakteriologické kultivační vyšetření resp. snižuje jeho citlivost. 4) STĚR Z OROPHARYNGU Technicky náročnější než odběr nosních výtěrů, ale s lepšími výsledky průkazu patogenů a nižší kontaminací než u nosních výtěrů. Je zde nutnost použití rozvěrače dutiny ústní a fixace zvířete. Větší shoda výsledků s diagnostikou provedenou ze vzorků z dolních cest dýchacích (aspiráty, sekční materiál apod.) Odběrový materiál, uchování i transport jsou shodné s nosním výtěrem. 5) SPUTUM Technicky náročná metoda s použitím lapače sputa a relativně vysokou kontaminací. Metoda s vyšším stresem pro zvířata, nutnou fixací a s potřebou sedace. Odběrový materiál, uchování i transport jsou shodné s TTA. 6) KREV/SÉRUM PROČ a JAK? Vzorek krve/séra skotu používáme pro nepřímý průkaz (sérologie) některých původců respiračních onemocnění. Ze séra lez rovněž provést přímý průkaz viru BVD (izolace, ELISA Ag, PCR). Při nepřímém průkazu detekujeme specifické protilátky proti danému patogenu a to buď kvalitativními testy (ELISA) nebo kvantitativními testy prokazujícími titr protilátek (IPMA, NPLA, VNT, semikvantitativní ELISA apod.). Samotná kvantita protilátek recentní infekci neprokazuje. Z hlediska výšky titru neexistuje něco jako postinfekční titr protilátek, který by prokazoval recentní, právě probíhající, infekci. Na potvrzení recentní infekce např. BRSV či PI3 je doporučen průkaz sérokonverze a to z párových vzorků ze stejných zvířat odebraných v intervalu min. 3-4 týdnů (sledování dynamiky titrů protilátek). Cílem je tedy zachycení sérokonverze při právě probíhajícím onemocnění (v klinické fázi), kdy bývá jasný nárůst titrů protilátek. Signifikantní sérokonverze je potvrzena rozdílem v titrech mezi párovými vzorky a to minimálně o dva řády (např. 20 80, nebo 80 320, apod.). Párové vzorky je nutné testovat najednou za stejných podmínek a se stejnou šarží testu. Při odesílání prvního odběru, prosím upozorněte na žádance, že k těmto vzorkům přijdou časem další párové vzorky. Z prvního odběru pak séra zamrazí a archivují v laboratoři a vyšetřují se až současně se séry z druhého odběru. KDY? První odběr v akutní fázi onemocnění, nejlépe ve stádiu virémie/horečky, druhý odběr za 3-4 týdny, tzv. párové vzorky. 7

KOLIK? Pokud má mít výsledek relevantní informaci aplikovatelnou na celé stádo, je důležité odebrat reprezentativní počet vzorků. Správný počet vzorků se odvíjí od velikosti chovu (počet zvířat v hale), prevalence onemocnění v chovu, sensitivity diagnostických testů a požadované jistoty detekce (konfidence). Důležitý je rovněž důvod vyšetření (podezření z infekce, běžný monitoring, zařazení do plemenitby apod.). Vyšší počet vzorků zvyšuje pravděpodobnost detekce infekce a následnou interpretaci výsledků. Obecně se při monitoringu respiračních onemocněních skotu odebírá min. 10 vzorků krve. PRO JAKÉ VYŠETŘENÍ? Průkaz specifických protilátek ze séra se provádí různými laboratorními metodami: kvalitativními testy (ELISA) nebo kvantitativními testy prokazujícími titr protilátek (IPMA, NPLA, VNT, semikvantitativní ELISA apod.). Přímý průkaz patogena ze séra se provádí metodami: PCR, Realtime PCR, izolace, ELISA Ag pod. Sérologické vyšetření na průkaz protilátek proti virům: BRSV, PI3, BVD-MD, IBR, adenoviry, bovinní coronavirus apod. Krev není v případě respiračních onemocnění skotu využívána na průkaz protilátek proti bakteriálním infekcím ani na přímý průkaz viru či bakterií způsobujících respirační onemocnění. Virologické vyšetření na průkaz viru ze séra: BVD-MD DO ČEHO? HEMOS zkumavka. JAK UCHOVÁVAT A TRANSPORTOVAT VZORKY? Krev lze v HEMOS zkumavkách skladovat při pokojové teplotě (18-22 C) max. do 24 hodin. V chladničce (2-8 C) lze krve skladovat max. 3 dny. Krve ve zkumavkách HEMOS nikdy nezamrazovat! Nejlépe doručit krve do laboratoře do 72 hodin se zachováním chladícího řetězce. Sérum lze v chladničce ( 2-8 C) skladovat 7 dní. Na delší skladování je nutné sérum zamrazit. 7) KREV NA HEMOKULTURU JAK? odběr se provádí v akutní fázi onemocnění do speciální odběrovky s médiem určeným pro okamžitou kultivaci aerobních i anaerobních bakterií nutný sterilní odběr - desinfekce před odběrem krve (vždy se vyvarovat kontaminaci z kůže - nutno zohlednit při interpretaci výsledku) JAK UCHOVÁVAT A TRANSPORTOVAT VZORKY? nechladit bezprostředně po odběru doručit ihned do laboratoře k inkubaci v termostatu soupravy OXOID SIGNAL BLOOD CULTURE SYSTEM (code: BC0100) k dodání po dohodě s laboratoří 8

8) Specifický odběr vzorků pro detekci Mycoplasma bovis a Mycoplasma sp. Vhodné vzorky pro vyšetření jsou hluboký nasální výtěr, sekční materiál (plíce) anebo vzorek TTA (trans-tracheální aspirát). DO ČEHO? Souprava pro nasální výtěr obsahuje: sterilní zkumavka se speciálním médiem (TGP médium) a odběrový flokovaný tampon - COPAN FLOQSwab. Připraveno na SVÚ Jihlava a uchovává se před použitím v lednici (2-8 C). Exspirace je 1 měsíc. Vhodné pro kultivační vyšetření na Mycoplasma sp. a pro předkultivaci vzorků na PCR. JAK? Proveďte hluboký nasální výtěr nebo použijte tampon ze vzorku TTA. Vložte tampon do média a max. do 24 hodin doručte do laboratoře. Vzorek TTA přelijte do sterilní transportní zkumavky. Vzorek TTA zchladit (2-8 C) a doručit do laboratoře v den odebrání vzorku. Vzorek je pak vhodný na kultivační i molekulárně biologické vyšetření. Vzorky jsou citlivé, a proto je důležité domluvit s laboratoří nejen poskytnutí odběrové soupravy, odběr a dopravu vzorků, ale i příjem vzorku. RESPIRAČNÍ ONEMOCNĚNÍ SKOTU - vyšetření v laboratořích SVÚ JIHLAVA Nákaza / původce Vhodné diagnostické vzorky NEPŘÍMÝ PRŮKAZ PŮVODCE - sérologie - detekce specifických protilátek Laboratorní metoda PŘÍMÝ PRŮKAZ PŮVODCE - detekce antigenu / NK / genomu /původce bovinní adenovirus sérum, sekční materiál (plíce) ELISA Ab imunofluorescenční test (IF) bovinní coronavirus TTA (BAL), sekční materiál (plíce), nosní výtěr, sérum ELISA Ab - (kvalitativní vyš. nebo.titrace) RT-PCR, imunofluorescenční test (IF) bovinní respiratorní a syncytiální virus (BRSV) TTA (BAL), sekční materiál (plíce), nosní výtěr, sérum imunoperoxidázový test (IPMA), ELISA Ab RT - PCR /Real-time RT - PCR bovinní reovirus sekční materiál (plíce) - imunofluorescenční test (IF) bovinní virová diarrhoea (BVD-MD) Histophilus somni (Haemophilus somnus) sérum, TTA (BAL), sekční materiál, ušní štěp, mléko, trus ELISA Ab, neutralizační imunoperoxidázový test (NPLA) RT - PCR / Real-time RT - PCR, ELISA Ag, izolace viru TTA (BAL), sekční materiál (plíce), nosní výtěr - PCR, izolace, kultivace, MALDI TOF infekční bovinní rhinotracheitida (IBR) sérum, mléko, TTA (BAL), sekční materiál (plíce) ELISA Ab, virus neutralizační test (VNT) PCR, izolace viru Mannheimia haemolytica TTA (BAL), sekční materiál (plíce), nosní výtěr - PCR, izolace, kultivace, MALDI TOF Mycoplasma bovis TTA (BAL), sekční materiál (plíce), nosní výtěr ELISA Ab PCR parainfluenza 3 (PI-3) TTA (BAL), sekční materiál (plíce), nosní výtěr, sérum ELISA Ab, hemaglutinačně-inhibiční test (HIT) RT - PCR/Real-time RT - PCR Pasteurella multocida TTA (BAL), sekční materiál (plíce), nosní výtěr - PCR, izolace, kultivace, MALDI TOF screening původců respiratorních nákaz: PI3, BRSV, BCov, M. bovis, Mannheimia haemolytica, P. multocida, H. somni jiné: např. Morganella morganii, Avibacterium anatis, Trueperella pyogenes (syn. Arcanobacterium pyogenes) apod. TTA (BAL), sekční materiál (plíce), nosní výtěr - 7 x Real-time RT-PCR/PCR TTA (BAL), sekční materiál (plíce), nosní výtěr - izolace, kultivace, MALDI TOF stanovení hladiny gamaglobulinů krev/sérum telat stáří 2-6 dní Turbidimetrické stanovení celkových imunoglobulinů - U ZST (g/l) 9

STÁTNÍ VETERINÁRNÍ ÚSTAV JIHLAVA Rantířovská 93 586 05 Jihlava Česká republika Tel.: +420 567 143 111 Fax: +420 567 310 592 E-mail: info@svujihlava.cz Dat. schránka: wwkdthw Web: www.svujihlava.cz PRACOVIŠTĚ ČESKÉ BUDĚJOVICE Dolní 2 370 04 České Budějovice Česká republika Tel.: +420 387 001 570 Fax: +420 387 319 040 E-mail: info-cb@svujihlava.cz 10