V C KOMBITEST CD45 FITC / CD14 PE. Cat. No. / Kat. č.: ED Precautions ENGLISH. 1. Specification. 2. Intended use. 3.

Transkript

1 V C Cat. No. / Kat. č.: ED Specification ENGLISH Content 50 tests, 1 ml Usage 20 l per test (100 l PBL) Specificity CD45 CD14 Clone MEM-28 MEM-15 Isotype (mouse) IgG1 IgG1 Fluorochrome FITC PE excitation 488 nm 488 nm Emission maximum 525 nm 575 nm 2. Intended use The is designed for establishing an optimal lymphocyte gate for immunophenotyping of erythrocyte-lysed whole blood. 3. Principle This test is based on the specific binding of monoclonal antibodies to the antigenic determinants expressed on the surface of leukocytes. The monoclonal antibodies are labeled with different fluorochromes which are excited via laser beam from a flow cytometer during analysis. Subsequent emissions of light from the fluorochromes of each cell are collected and analyzed by a flow cytometer. The fluorescence intensity differences enable the separation of cell subsets based on the expression of analyzed antigens. The specific staining of blood cells is performed by the incubation of blood samples with the reagent followed by a lysis of red blood cells. Afterwards, unaffected leukocytes are subjected to analysis by a flow cytometer. 4. Reagent provided The reagent contains a premixed combination of mouse monoclonal antibody against human CD45 antigen (clone MEM-28) labeled with Fluorescein isothiocyanate (FITC), and mouse monoclonal antibody against human CD14 antigen (clone MEM-15) labeled with R-phycoerythrin (PE). Labeled antibodies are diluted at optimum concentration in stabilizing phosphate buffered saline (PBS) solution containing 15mM sodium azide. The content of a vial (1 ml) is sufficient for 50 tests. 5. Storage Store vial in the dark at 2-8 C. Do not freeze. 6. Precautions Intended for In Vitro Diagnostic use in laboratories outside USA and Canada. This CE-IVD reagent is in conformity with the European In Vitro Diagnostic Medical Device Directive 98/79/EC. Do not use after expiration date stamped on vial label. Avoid prolonged exposure to light. The content of the vial must not freeze. Avoid contamination of the reagent. The flow cytometer should be calibrated on a routine basis using fluorescent microbeads to ensure stable sensitivity of detectors. Any non-performance of the staining protocol may produce false results. The reagent contains sodium azide (NaN3) which is highly toxic in pure form. However, the concentration in the reagent (15mM) is not considered as hazardous. When disposing the reagent, flush the sink with a large volume of water. Blood samples are considered as potentially infectious and must be handled with care. Avoid all contact of the sample with the skin, eyes and mucosa. 7. Necessary material not supplied Test tubes for staining of blood samples (e.g mm), automatic pipettes with disposable tips, vortex mixer, commercial lysing solution, PBS buffer, flow cytometer. 8. Blood specimen The peripheral blood in a sterile tube with an anticoagulant (Heparin or EDTA) must be stored at room temperature and stained within 48 hours of drawing. 9. Staining protocol 1. Add 20 l of reagent to a test tube. 2. Add 100 l of blood sample to the tube. Vortex the tube. 3. Incubate the tube for minutes at room temperature in the dark. 4. Perform lysis of red cells using lysing solution. It is recommended to use a commercial lysing solution containing formaldehyde as a fixative. Follow the instructions of the lysing solution manufacturer. 5. Centrifuge tubes for 5 minutes at 300 g. 6. Remove supernatant and resuspend pellet with 3-4 ml of PBS. 7. Centrifuge tubes for 5 minutes at 300 g. 8. Remove supernatant and resuspend pellet with ml of PBS. 1/7

2 9. Analyze the sample immediately using a flow cytometer or store sample at 2-8 C in the dark and analyze within 24 hours provided that cells were fixed. 10. Flow cytometry Analyze stained samples using a flow cytometer equipped with excitation laser 488 nm and proper filters. Compensate fluorescent signals prior to or after data acquisition. 11. Lymphocyte gate assessment procedure Following procedure is recommended. However, any other lymphocyte gate assessment procedure may be successful provided that nonlymphocytes (debris, monocytes, granulocytes, etc.) are eliminated using the same principle. Figure 1 shows ungated cell subsets on the CD45 FITC versus CD14 PE dot-plot. 1. Visualize ungated data in a Side Scatter (SSC) versus Forward Scatter (FSC) dot-plot and set gate A including all lymphocytes as shown in figure Visualize events gated on the region A as a CD45 FITC versus CD14 PE dot-plot and create a gate B around lymphocytes (figure 3). The gate B discriminates all nonlymphocytes (debris, monocytes, granulocytes, etc.). 3. Visualize events gated on the region B as a Side Scatter (SSC) versus Forward Scatter (FSC) dot-plot as shown in figure 4. Establish an optimal gate for lymphocytes (gate C). Please note that the optimal lymphocyte gate is valid only for data acquired under the same experimental conditions and with the same blood specimen. 12. Performance characteristics Specificity The antibody MEM-28 reacts with all alternative forms of human CD45 phosphotyrosine phosphatase (Leukocyte Common Antigen), a kda single chain type I transmembrane protein expressed at high level on all cells of hematopoietic origin, except from erythrocytes and platelets. The monoclonal antibody MEM-28 was assigned to CD45 during the Human Leukocyte Differentiation Antigen workshop (HLDA3 WS Code: NL 833a). The antibody MEM-15 reacts with CD14, a kda GPI (glycosylphosphatidylinositol) linked membrane glycoprotein expressed on monocytes, macrophages and weakly on granulocytes; it is expressed by most tissue macrophages. This antibody also reacts with soluble forms of CD14 found in serum and in the urine of some nephrotic patients. The monoclonal antibody MEM-15 was assigned to CD14 during the Human Leukocyte Differentiation Antigen workshop (HLDA3 WS Code: M 252). 13. Limitations Flow cytometer may produce false results if the device has not been aligned and maintained appropriately. Data may be incorrectly interpreted if fluorescent signals were compensated wrongly or if gates were positioned inaccurately. Blood samples from abnormal patients may exhibit abnormal values of positive cells. In case of a hyperleukocytose sample, it is recommended to dilute the blood sample with PBS to obtain leukocyte density approximately leukocytes/ml. 1. Specifikace produktu Obsah ČESKY 50 testů, 1 ml Použití 20 l na test (100 l krve) Specificita CD45 CD14 Klon MEM-28 MEM-15 Izotyp (myší) IgG1 IgG1 Fluorochrom FITC PE excitace 488 nm 488 nm Emisní maximum 525 nm 575 nm 2. Použití je In vitro diagnostický zdravotnický prostředek, který je určený pro nastavení optimálního ohraničení lymfocytů (lymphocyte gate) při imunofenotypizaci lymfocytů v lidské periferní krvi pomocí průtokové cytometrie. 3. Princip Tento test je založen na specifické vazbě monoklonálních protilátek na antigeny, které jsou exprimovány na povrchu leukocytů. Monoklonální protilátky jsou značené odlišnými fluorescenčními značkami, které jsou excitovatelné zdrojem záření. Během analýzy vzorku průtokovým cytometrem je detekována emise fluorescence jednotlivých buněk. Rozdíly v emisi záření fluorochromů umožňují separovat skupiny leukocytů na základě rozdílné exprese analyzovaných antigenů. Specifické barvení leukocytů probíhá v periferní krvi. Po inkubaci vzorku se značenými protilátkami jsou červené krvinky odstraněny pomocí lyze a leukocyty jsou analyzovány průtokovým cytometrem. 4. Popis reagencie Reagencie obsahuje směs dvou myších monoklonálních protilátek: protilátka proti lidskému antigenu CD45 (klon MEM- 28) je značená fluorescein isothiokyanátem (FITC) a protilátka proti lidskému antigenu CD14 (klon MEM-15) je značená R-phycoerythrinem (PE). Značené protilátky byly naředěny na optimální koncentrace do stabilizačního roztoku, který obsahuje PBS a 15mM azid sodný. Obsah vialky (1 ml reagencie) odpovídá provedení 50 testů. 5. Skladování Vialku s reagencií uchovávejte v temnu při teplotě 2-8 C. Doba použitelnosti reagencie je vyznačena na štítku vialky. 6. Upozornění Reagencie je určena pro In vitro diagnostiku a vyhovuje požadavkům NV 56/2015 Sb., které je harmonizováno s evropskou směrnicí pro In vitro diagnostické zdravotnické prostředky 98/79/EC. Nepoužívejte reagencii po uplynutí doby použitelnosti. Reagencii nevystavujte dlouhodobému působení světla. Obsah vialky nesmí zmrznout. Chraňte obsah vialky před kontaminací. Průtokový cytometr pravidelně kalibrujte pomocí fluorescenčních kuliček, aby byla zajištěna stabilní citlivost detektorů. Nedodržení postupu měření může ovlivnit výsledky testu. Reagencie obsahuje azid sodný (NaN3), který je v čistém stavu vysoce toxický, avšak koncentrace, která je v této 2/7

3 reagencii (15 mm), není již považována za nebezpečnou. Při likvidaci reagencie obsahující azid splachujte velkým množstvím vody. Krevní vzorky jsou považovány za potenciálně infekční materiál, a proto s nimi musí být náležitě nakládáno. Vyvarujte se kontaktu vzorků s pokožkou, očima a sliznicemi. 7. Potřebné vybavení a materiál, který není dodáván Vhodné zkumavky pro barvení buněk (např mm), sada pipet s jednorázovými špičkami, centrifuga, vortex, lyzační roztok, pufr PBS, průtokový cytometr. 8. Vzorek krve Vzorek periferní krve odebraný do sterilní zkumavky s antikoagulantem (heparin nebo EDTA) skladujte před obarvením za laboratorní teploty na kývačce. Krev musí být obarvena do 48 hod od odběru. 9. Postup barvení 1. Pipetujte 20 l reagencie KOMBITEST CD45 FITC / CD14 PE do zkumavky. 2. Přidejte 100 l promíchané periferní krve a směs promíchejte pomocí vortexu. 3. Inkubujte zkumavku minut v temnu za laboratorní teploty. 4. Proveďte lyzi červených krvinek pomocí lyzačního roztoku. Je doporučeno používat komerční lyzační činidlo, které obsahuje formaldehyd fixující buňky. Postupujte podle návodu výrobce lyzačního činidla. 5. Centrifugujte zkumavky 5 minut při 300 g. 6. Odstraňte supernatant a resuspendujte sediment pomocí 3-4 ml PBS. 7. Centrifugujte zkumavky 5 minut při 300 g. 8. Odstraňte supernatant a resuspendujte sediment pomocí 0,1-0,5 ml PBS. 9. Analyzujte vzorek ihned po obarvení pomocí průtokového cytometru. V případě že, byl vzorek fixován formaldehydem, je možné vzorek uskladnit v temnu při 2-8 C a analyzovat do 24 hodin. optimální ohraničení populace lymfocytů (region C). Toto ohraničení je platné pouze pro data naměřená se stejným vzorkem krve a za stejných experimentálních podmínek. 12. Analytické parametry Specificita Monoklonální protilátka MEM-28 reaguje se všemi izoformami molekuly CD45. Fosfotyrosinfosfatasa CD45 (Leucocyte Common Antigen) je jednořetězcový transmembránový protein o molekulové hmotnosti kda, exprimovaný ve velkém množství u všech buněk hemotopoetického původu kromě erytrocytů a krevních destiček. Specificita monoklonální protilátky MEM-28 byla ověřena v rámci mezinárodního pracovního semináře o lidských leukocytárních diferenciačních antigenech (HLDA3 WS Code: NL 833a). Monoklonální protilátka MEM-15 reaguje s molekulou CD14, membránovým glykoproteinem o molekulové hmotnosti kda zakotveným pomocí glycosylfosfatidylinositolu, exprimovanou monocyty, makrofágy a slabě i granulocyty. Protilátka MEM-15 reaguje také s rozpustnou formou CD14, která se nalézá v séru a moči některých nefrotických pacientů. Specificita monoklonální protilátky MEM-15 byla ověřena v rámci mezinárodního pracovního semináře o lidských leukocytárních diferenciačních antigenech (HLDA3 WS Code: M 252). 13. Omezení metody Průtokový cytometr může poskytovat špatné hodnoty, pokud není dobře seřízen a udržován. Data mohou být špatně interpretována, pokud jsou fluorescenční signály špatně kompenzované, případně pokud jsou regiony buněk špatně umístěné. Krevní vzorky od abnormálních pacientů mohou vykazovat abnormální hodnoty procent pozitivních buněk. V případě krevního vzorku s abnormálně vysokým počtem leukocytů je třeba vzorek naředit pomocí PBS na hodnotu kolem leukocytů na ml. 10. Cytometrické měření Analyzujte obarvený vzorek pomocí průtokového cytometru vybaveného excitačním laserem 488 nm a vhodnými filtry. Proveďte kompenzaci fluorescenčních signálů naměřených dat. 11. Analýza dat Následující postup nastavení optimálního ohraničení lymfocytů (lymphocyte gate) je doporučený, avšak je možné postupovat i jiným způsobem. Na obrázku 1 je znázorněno umístění populací leukocytů v zobrazení CD45 FITC vs. CD14 PE. 1. Data poté zobrazte v grafu side-scatter (SSC) versus forward-scatter (FSC). Ohraničte populaci lymfocytů, jak je znázorněno na obrázku 2. Region A by měl být dostatečně velký, aby zahrnoval všechny lymfocyty. 2. Zobrazte události z regionu A v grafu CD45 FITC vs. CD14 PE. Vytvořte region B ohraničující lymfocyty, jak je znázorněno na obrázku 3. Při tomto zobrazení dat je oddělena populace lymfocytů od debrisu a monocytů, které v předchozím zobrazení (Obr. 2) nešly spolehlivě oddělit. 3. Zobrazte události z regionu B v grafu side-scatter (SSC) versus forward-scatter (FSC). Nastavte 3/7

4 1. Špecifikácia produktu Obsah SLOVENSKY 50 testov, 1 ml Použitie 20 l na test (100 l krvi) Špecifičnosť CD45 CD14 Klon MEM-28 MEM-15 Izotyp (myšie) IgG1 IgG1 Fluorochróm FITC PE excitácia 488 nm 488 nm Emisné maximum 525 nm 575 nm 2. Použitie je In vitro diagnostický zdravotnícky prostriedok, ktorý je určený pre nastavenie optimálneho ohraničenia lymfocytov (lymphocyte gate) pri imunofenotypizácii lymfocytov v ľudskej periférnej krvi pomocou prietokovej cytometrie. 3. Princíp Tento test je založený na špecifickej väzbe monoklonových protilátok na antigény, ktoré sú exprimované na povrchu leukocytov. Monoklonové protilátky sú označené odlišnými fluorescenčnými značkami, ktoré sú excitovateľné zdrojom žiarenia. V priebehu analýzy vzorky prietokovým cytometrom sa zaznamená fluorescencia jednotlivých buniek. Rozdiely v emisii žiarenia fluorochrómov umožňujú separovať skupiny leukocytov na základe rozdielnej expresie analyzovaných antigénov. Špecifické značenie leukocytov prebieha v periférnej krvi. Po inkubácii vzorky s označenou protilátkou sú červené krvinky odstránené pomocou lýzy a leukocyty sú analyzované prietokovým cytometrom. 4. Popis reagencie Reagencia obsahuje zmes dvoch myších monoklonových protilátok: protilátka proti ľudskému antigénu CD45 (klon MEM- 28) je označená fluorescein izotiokyanátom (FITC) a protilátka proti ľudskému antigénu CD14 (klon MEM-15) je označená R-phycoerythrinom (PE). Označené protilátky boli nariedené na optimálnu koncentráciu do stabilizačného roztoku, ktorý obsahuje PBS a 15mM azid sodný. Obsah fľaštičky (1 ml reagencie) odpovedá uskutočneniu 50 testov. 5. Skladovanie Fľaštičku s reagenciou uschovávajte v temne pri teplote 2-8 C. Doba použiteľnosti reagencie je vyznačená na štítku fľaštičky. 6. Upozornenie Reagencia je určená pre In vitro diagnostiku a vyhovuje požiadavkám európskej smernice pre In vitro diagnostické zdravotnícke prostriedky 98/79/EC. Nepoužívajte reagenciu po uplynutí doby použiteľnosti. Reagenciu nevystavujte dlhodobému pôsobeniu svetla. Obsah fľaštičky nesmie zmrznúť. Chráňte obsah fľaštičky pred kontamináciou. Prietokový cytometer pravidelne kalibrujte pomocou fluorescenčných guličiek, pre zaistenie stabilnej citlivosti detektorov. Nedodržanie postupu merania môže ovplyvniť výsledky testu. Reagencia obsahuje azid sodný (NaN3), ktorý je v čistom stave vysoko toxický, avšak koncentrácia prítomná v tejto reagencii (15 mm) už nie je považovaná za nebezpečnú. Pri likvidácii reagencie obsahujúcej azid splachujte umývadlo veľkým množstvom vody. Krvné vzorky sú považované za potenciálne infekčný materiál a preto sa s nimi musí zaobchádzať opatrne. Vyvarujte sa kontaktu vzoriek s pokožkou, očami a sliznicami. 7. Potrebné vybavenie a materiál, ktorý sa nedodáva Vhodné skúmavky pre značenie buniek (napr mm), sada pipiet s jednorázovými špičkami, centrifúga, vortex, lyzačný roztok, PBS tlmivý roztok, prietokový cytometer. 8. Vzorky krvi Vzorku periférnej krvi odobratú do sterilnej skúmavky s antikoagulantom (heparín alebo EDTA) skladujte pred značením pri laboratórnej teplote na kývačke. Krv musí byť značená do 48 hod od odberu. 9. Postup značenia 1. Pipetujte 20 l reagencie KOMBITEST CD45 FITC / CD14 PE. 2. Pridajte 100 l premiešanej periférnej krvi a zmes premiešajte pomocou vortexu. 3. Skúmavku inkubujte minút v temne pri laboratórnej teplote. 4. Zlyzujte červené krvinky pomocou lyzačného roztoku. Odporúča sa používať komerčné lyzačné činidlo, ktoré obsahuje formaldehyd a fixuje bunky. Postupujte podľa návodu od výrobcu lyzačného činidla. 5. Centrifugujte skúmavky 5 minút pri 300 g. 6. Odstráňte supernatant a resuspendujte sediment pomocou 3-4 ml PBS. 7. Centrifugujte skúmavky 5 minút pri 300 g. 8. Odstráňte supernatant a resuspendujte sediment pomocou 0,1-0,5 ml PBS. 9. Vzorky analyzujte na prietokovom cytometri ihneď po označení. V prípade, že vzorky boli fixované formaldehydom, je možné tieto vzorky uskladniť v temne pri 2-8 C a analyzovať do 24 hodín. 10. Cytometrické meranie Analyzujte značenú vzorku krvi pomocou prietokového cytometru vybaveného laserom 488 nm a vhodnými filtrami. Kompenzujte namerané dáta fluorescenčných signálov. 11. Postup ohraničenia lymfocytov Odporúčame použiť nasledujúci postup nastavenia optimálneho ohraničenia lymfocytov (lymphocyte gate), je však možné postupovať aj iným spôsobom. Na obrázku 1 je znázornené umiestnenie populácie leukocytov v zobrazení CD45 FITC vs. CD14 PE. 1. Dáta zobrazte v grafe side-scatter (SSC) proti forwardscatter (FSC). Ohraničte populáciu lymfocytov, ako je to znázornené na obrázku 2. Región A by mal byť dostatočne veľký na to, aby zahŕňal všetky lymfocyty. 2. Udalosti z regiónu A zobrazte v grafe CD45 FITC vs. CD14 PE. Vytvorte región B ohraničujúci lymfocyty, ako je to znázornené na obrázku 3. Pri tomto zobrazení dát je oddelená populácia lymfocytov od debrisu a monocytov, ktoré v predchádzajúcom zobrazení (Obr. 2) nemohli byť spoľahlivo oddelené. 4/7

5 3. Udalosti z regiónu B zobrazte v grafe side-scatter (SSC) proti forward-scatter (FSC). Nastavte optimálne ohraničenie populácie lymfocytov (región C). Toto ohraničenie je platné iba pre dáta namerané z rovnakej vzorky krvi a pri rovnakých experimentálnych podmienkach. 12. Analytické parametre Špecifičnosť Monoklonová protilátka MEM-28 reaguje so všetkými izoformami molekuly CD45. Fosfotyrozínfosfatáza CD45 (Leucocyte Common Antigen) je jednoreťazcový transmembránový proteín s molekulovou hmotnosťou kda, exprimovaný vo veľkom množstve u všetkých buniek hematopoetického pôvodu, okrem erytrocytov a krvných doštičiek. Špecifičnosť monoklonovej protilátky MEM-28 bola overená v rámci medzinárodného pracovného seminára o ľudských leukocytárnych diferenciačných antigénoch (HLDA3 WS Code: NL 833a). Monoklonová protilátka MEM-15 reaguje s molekulou CD14, membránovým glykoproteínom s molekulovou hmotnosťou kda zakotveným pomocou glykosylfosfatidylinositolu, exprimovanou monocytmi, makrofágmi a v malej miere i granulocytmi. Protilátka MEM-15 reaguje aj s rozpustnou formou CD14, ktorá sa nachádza v sére a v moči niektorých nefrotických pacientov. Špecifičnosť monoklonovej protilátky MEM-15 bola v rámci medzinárodného pracovného seminára o ľudských leukocytárnych diferenciačných antigénoch (HLDA3 WS Code: M 252). 13. Obmedzenia metódy Prietokový cytometer môže poskytovať nepresné výsledky, ak nie je dobre nastavený a udržiavaný. Dáta môžu byť zle interpretované, ak sú fluorescenčné signály nedostatočne kompenzované alebo ak sú regióny buniek zle umiestnené. Krvné vzorky od abnormálnych pacientov môžu vykazovať abnormálne percentuálne hodnoty pozitívnych buniek. V prípade krvnej vzorky s abnormálne vysokým počtom leukocytov je potrebné vzorku nariediť pomocou PBS na hodnotu približne leukocytov na ml. 5/7

6 ENGLISH / ČESKY / SLOVENSKY 14. Example data / Vzorové vyhodnocení / Vzorové vyhodnotenie Fig. 1: Leukocytes stained with Obr. 1: Leukocyty obarvené reagencií Obr. 1: Leukocyty označené reagenciou Fig. 3: CD45 vs. CD14, gated on region A Obr. 3: Události z regionu A. Lymfocyty jsou ohraničeny regionem B. Obr. 3: Udalosti z regiónu A. Lymfocyty sú ohraničené regiónom B. Fig. 2: Delimination of all lymphocytes (gate A) Obr. 2: Ohraničení všech lymfocytů pomocí regionu A Obr. 2: Ohraničenie všetkých lymfocytov pomocou regiónu A Fig. 4: Optimal gate for lymphocytes (gate C) Obr. 4: Nastavení optimálního ohraničení lymfocytů. Zobrazeny jsou události z regionu B. Obr. 4: Nastavenie optimálneho ohraničenia lymfocytov. Na obrázku sú zobrazené udalosti z regiónu B. 6/7

7 15. References / Literatura / Literatúra Dawes R, Petrova S, Liu Z, Wraith D, Beverley PC, Tchilian EZ. Combinations of CD45 isoforms are crucial for immune function and disease. J Immunol Mar 15;176(6): Fernández-Real JM, Broch M, Richart C, Vendrell J, López- Bermejo A, Ricart W: CD14 monocyte receptor, involved in the inflammatory cascade, and insulin sensitivity. J Clin Endocrinol Metab Apr;88(4): Horejsi V, Angelisova P, Bazil V, Kristofova H, Stoyanov S, Stefanova I, Hausner P, Vosecky M, Hilgert I: Monoclonal antibodies against human leucocyte antigens. II. Antibodies against CD45 (T200), CD3 (T3), CD43, CD10 (CALLA), transferrin receptor (T9), a novel broadly expressed 18-kDa antigen (MEM-43) and a novel antigen of restricted expression (MEM-74). Folia Biol (Praha). 1988;34(1): Leukocyte Typing III., McMichael A. J. et al (Eds.), Oxford University Press (1987). Leukocyte Typing IV., Knapp W. et al. (Eds.), Oxford University Press (1989). Leukocyte Typing V., Schlossman S. et al. (Eds.), Oxford University Press (1995). Leukocyte Typing VI., Kishimoto T. et al. (Eds.), Garland Publishing Inc. (1997). 16. Explanation of symbols / Vysvětlení symbolů / Vysvetlenie symbolov h M i X 8 C 2 Cl g H In Vitro Diagnostic Medical Device In vitro diagnostický zdravotnický prostředek In vitro diagnostický zdravotnícky prostriedok Catalog number Katalogové číslo Katalógové číslo Manufacturer identification Výrobce Výrobca Consult the manual before use Viz návod k použití Viď návod na použitie Sufficient for N test Lze použít pro N testů Postačujúce na vykonanie N testov Store within temperature limits Rozmezí skladovacích teplot Rozmedzie skladovacích teplôt Batch code Číslo šarže Use by Použitelné do Použiteľné do 17. Manufacturer / Výrobce / Výrobca EXBIO Praha, a.s. Nad Safinou II Vestec, Czech Republic Tel: Fax: orders@exbio.cz 7/7