Možnosti diagnostiky chorob u kanců a v inseminačních dávkách MVDr. Petr Václavek, Ph.D. Státní veterinární ústav Jihlava



Podobné dokumenty
Praktické využití serologických metod

Sérologická diagnostika chřipky možnosti a diagnostická úskalí

KORONAVIROVÉ INFEKCE PRASAT

Aplikace molekulárně biologických postupů v časné detekci sepse

Zkušenosti s laboratorní diagnostikou infekcí virem Zika. Hana Zelená NRL pro arboviry Zdravotní ústav se sídlem v Ostravě

MVDr. Zbyněk Semerád

Podíl VÚVeL Brno na řešení aktuálních zdravotních problémů v chovu prasat

Diagnostika ostatních střevních patogenů. V. IBD pracovní dny, Hořovice 2019 Jana Matějková

REPRODUKČNÍ ONEMOCNĚNÍ PRASAT

Laboratorní di agnostik HBV HCV a Vratislav Němeček Státní zdravotní stav ústav

Výskyt a význam infekce Borna disease virem u pacientů léčených

Sliny prasat jako vhodný diagnostický materiál MVDr. Petr Václavek, Ph.D. Státní veterinární ústav Jihlava

Paratuberkulóza u masného skotu

Přínos metody ELISPOT v diagnostice lymeské boreliózy

VÝZNAM NĚKTERÝCH FAKTORŮ PREANALYTICKÉ FÁZE V MOLEKULÁRNÍ BIOLOGII

prezentace OKMP 1

Odběr a transport biologického materiálu do mikrobiologické laboratoře. Jana Juránková OKM FN Brno

VÝSKYT PROTILÁTEK TŘÍDY IgM PO VAKCINACI PROTI VIROVÉ HEPATITIDĚ A

Laboratorní diagnostika spalniček. A. Vinciková, E. Jílková Zdravotní ústav se sídlem v Ústí nad Labem

Zkušenost s onemocněním PRRS v chovu prasat. MVDr. Josef Kukla Šušnová Jana

PAROTITIDA VRACEJÍCÍ SE ONEMOCNĚNÍ. Vlasta Štěpánová 1, Miroslav Fajfr 1,2, Lenka Plíšková 3

ÚSTAV VETERINÁRNÍHO LÉKAŘSTVÍ,

Sliny prasat jako vhodný diagnostický materiál MVDr. Petr Václavek, Ph.D. Státní veterinární ústav Jihlava

Suchá krevní skvrna (Suchá krevní kapka, Dried Blood Spot)

Diagnostika infekce Chlamydia trachomatis pomocí molekulárně genetické metody real time PCR nejen u pacientek z gynekologických zařízení

Ústřední veterinární správa Státní veterinární správy. Nákazová situace u volně žijících zvířat v České republice a ve střední Evropě


Komplexní pohled na laboratorní diagnostiku Chlamydia pneumoniae

Diagnostické metody v lékařské mikrobiologii

RESPIRAČNÍ ONEMOCNĚNÍ SKOTU

IMUNOENZYMATICKÉ SOUPRAVY K DIAGNOSTICE CYTOMEGALOVIROVÉ INFEKCE

Virus klíšťové encefalitidy (TBEV)

Lékařská mikrobiologie současné možnosti oboru v AČR

Odběry biologického materiálu. Markéta Vojtová VOŠZ a SZŠ Hradec Králové

Interpretace sérologických nálezů v diagnostice herpetických virů. K.Roubalová

Lékařská mikrobiologie II

Toxikologická vyšetření - požadavky a možnosti. Válka I., Zedníková K. Ústav soudního lékařství FN Olomouc

Diagnostika a epidemiologie HIV. Vratislav Němeček, Marek Malý NRL pro HIV/AIDS, Státní zdravotní ústav, Praha

PERTUSE diagnostika a klinické projevy. Vilma Marešová I.infekční klinika UK 2.LF a IPVZ FN Na Bulovce, Praha

Serologické vyšetřovací metody

Automatizace v klinické mikrobiologii

Cíle: Obecné zásady při odběru vzorků pro bakteriologické vyšetření

Eradikace BVD v Německu naše zkušenosti

PCV2 A SOUVISEJÍCÍ ONEMOCNĚNÍ. MVDr. Tomáš Jirásek MEVET spol. s r.o. (výhradní distribuce MERIAL pro ČR a SR)

OR (odds ratio, poměr šancí) nebo též relativní riziko RR. Validita vyšetření nádorových markerů. Validita (určuje kvalitu testu)v % = SP/ SP+FP+FN+SN

Syfilis přehledně. MUDr.Hana Zákoucká Odd. STI, NRL pro syfilis, Státní zdravotní ústav ROCHE

Verifikace sérologických testů v imunologických laboratořích ISO Postupy vyšetření

Suchá krevní skvrna (Suchá krevní kapka, Dried Blood Spot)

Speciální odběrové soupravy krácená verze pro tisk. Odběrové soupravy pro odběr žilní krve

NEJNOVĚJŠÍ POZNATKY V LABORATORNÍ DIAGNOSTICE PAROTITIDY

Nové technologie v mikrobiologické laboratoři, aneb jak ovlivnit čas k získání klinicky relevantního výsledku

Příloha č.5 Seznam PCR vyšetření

Molekulárně biologické metody v mikrobiologii. Mgr. Martina Sittová Jaro 2014

VLIV APLIKACE PŘÍPRAVKU SUPERGESTRAN inj. NA VÝSKYT A SPEKTRUM PATOLOGICKY ZMĚNĚNÝCH SPERMIÍ V EJAKULÁTU KANCŮ

HIV / AIDS MUDr. Miroslava Zavřelová Ústav preventivního lékařství LF MU

Titrace autoprotilátek detekovaných metodami nepřímé imunofluorescence. Jan Martinek Ivo Lochman

Laboratorní diagnostika bakteriálních infekcí GIT prasat

ProGastrin-Releasing Peptide (ProGRP) u nemocných s malobuněčným karcinomem plic

KRAJSKÁ VETERINÁRNÍ SPRÁVA pro Jihomoravský kraj

Interpretace výsledků bakteriologických vyšetření

MIKROBIOLOGICKÁ LABORATOŘ NEMOCNICE ŠUMPERK

Epidemiologie, 4. seminář. SCREENING SCREENINGOVÉ TESTY v epidemiologii

Implementace laboratorní medicíny do systému vzdělávání na Univerzitě Palackého v Olomouci. reg. č.: CZ.1.07/2.2.00/

Laboratorní diagnostika příušnic v Nemocnici České Budějovice a.s.

(Text s významem pro EHP)

IMUNOENZYMATICKÉ SOUPRAVY K DIAGNOSTICE INFEKČNÍ MONONUKLEÓZY

ŠKOLENÍ KKCTN dle čl. 12 pohotovostního plánu SVS

METODIKA KONTROLY ZDRAVÍ ZVÍŘAT A NAŘÍZENÉ VAKCINACE NA ROK 2012

Plíšková L. Ústav klinické biochemie a diagnostiky LF a FN Hradec Králové

Mikrobiologické vyšetření jako podklad pro racionální cílenou antibiotickou terapii. Význam správné indikace vyšetření a dodržování

Tekuté biopsie u mnohočetného myelomu

Bakteriologická analýza potravin

MERIAL - MEVET ODBORNÝ BULLETIN

Adiktologická ambulance v sociálně vyloučené lokalitě v Brně I.

Odběr a transport biologického materiálu do mikrobiologické laboratoře. Jana Juránková OKM FN Brno

Elecsys anti HCV II ROCHE. 8. střešovický transfuzní den Praha 26. listopadu 2014

Ověřování účinku vakcinace při i ozdravování chovů prasat od PRRS. MVDr. Ivan Pšikal, CSc.

V lednici (2 8 C) Do 24 hod dní BK - 50 dnů. Uricult Při pokojové teplotě Do hod dní. Při pokojové teplotě

Vakcinace efektivní pomoc pro zlepšení užitkovosti

PŘÍPRAVA PACIENTA : Speciální příprava pacienta ani dieta není nutná, pro obvyklé vyšetřování je vhodný odběr ráno, nalačno.

DYNEX nabízí komplexní řešení v oblasti zpracování a analýzy biologických materiálů pomocí molekulárně biologických metod.

SARS - Severe Acute Respiratory Syndrome (těžký akutní respirační syndrom).

Podaří se zkvalitněním diagnostiky a očkováním adolescentů a dospělých snížit pertusi u dětí?

Nákazová situace u zvířat v Ústeckém kraji

EUC Laboratoře s.r.o. EUC Laboratoře Praha Palackého 720/5, Nové Město, Praha 1

IMUNOENZYMATICKÉ SOUPRAVY K DIAGNOSTICE INFEKCE HELICOBACTER PYLORI

Příušnice. strategie laboratorní diagnostiky u vysoce proočkované populace

Prodej živých zvířat z vlastního chovu

Imunochemické metody. na principu vazby antigenu a protilátky

Základní pokyny pro odběry biologických vzorků na mikrobiologické vyšetření

Pavel Čermák. Thomayerova nemocnice Praha - Krč výroční zasedání SLM

Varicella v těhotenství. K.Roubalová Vidia s.r.o.

Skrytá tvář laboratorních metod? J. Havlasová, Interimun s.r.o.

Srovnání citlivosti kvantitativní PCR repetitivních oblastí AF a B1 pro detekci Toxoplasma gondii

C 16 Zásady odběrů biologického materiálu

PŘÍUŠNICE AKTUÁLNĚ KONZULTAČNÍ DEN PROBLEMATIKA RESPIRAČNÍCH, STŘEVNÍCH A EXANTEMATICKÝCH NÁKAZ, SZÚ

Využití molekulárně-biologických postupů a multimarkerových strategií v intenzívní péči. Marek Protuš

Využití molekulárně-biologických postupů a multimarkerových strategií v intenzívní péči. Marek Protuš

α herpesviry Diagnostika, epidemiologie a klinický význam. kroubalova@vidia.cz

synlab czech s.r.o. U Vojenské nemocnice 1200, Praha 6

Transkript:

Možnosti diagnostiky chorob u kanců a v inseminačních dávkách MVDr. Petr Václavek, Ph.D. Státní veterinární ústav Jihlava MEVET / Topigs Norsvinseminář, Michalovice, 10. března 2015

Možnosti diagnostiky chorob u kanců a v inseminačních dávkách OBSAH: 1) Laboratorní diagnostika u kanců obecně 2) Diagnostické metody chorob prasat/kanců a interpretace výsledků 3) Standardní a alternativní postupy odběrů vzorků pro lab. diagnostiku 4) Porcinní epidemická diarhoea (PED)

Laboratorní diagnostika u kanců obecně povinné vyšetřování SZ viz Metodika kontroly zdraví povinné úkony hrazené ze státního rozpočtu brucelóza, KMP, ACH, VCHP dobrovolné vyšetřování monitoring PRRS apod. cílené diagnostické testy kontrola semene bakteriologická/virologická

Laboratorní diagnostika u plemenných kanců obecně povinné vyšetřování Metodika kontroly zdraví - povinné úkony hrazené ze státního rozpočtu EpB130BRUCELÓZA VyLa- sérologické vyšetření (RBT+ RVK) Plemenní kanci vhospodářství původu před přijetím do izolační stáje vsouladu s přílohou č. 5 kvyhlášce č. 380/2003 Sb. EpB131BRUCELÓZA VyLa- sérologické vyšetření (RBT + RVK) Plemenní kanci vestřediscích pro odběr spermatu 1x ročně - vsouladu spřílohou č. 5 kvyhlášce č. 380/2003 Sb. EpB132BRUCELÓZA VyLa- sérologické vyšetření (RBT + RVK) Plemenní kanci vizolační stáji před přijetím do střediska pro odběr spermatu nejdříve za 15 dnů po zahájení izolace - vsouladu spřílohou č. 5 k vyhlášce č. 380/2003 Sb.

Laboratorní diagnostika u plemenných kanců obecně povinné vyšetřování Metodika kontroly zdraví - povinné úkony hrazené ze státního rozpočtu EpB303 KLASICKÝ MOR PRASAT VyLa - sérologické vyšetření (ELISA) Plemenní kanci vhospodářství původu před přijetím do střediska pro odběr spermatu vsouladu spřílohou č. 5 kvyhlášce č. 380/2003 Sb. EpB304 KLASICKÝ MOR PRASAT VyLa- sérologické vyšetření (ELISA) Plemenní kanci ve střediscích pro odběr spermatu 1x ročně -vsouladu spřílohou č. 5 kvyhlášce č. 380/2003 Sb. EpB403 AUJESZKYHOCHOROBA VyLa- sérologické vyšetření (ELISA) Plemenní kanci vhospodářství původu před přijetím do izolační stáje vsouladu spřílohou č. 5 kvyhlášce č. 380/2003 Sb. EpB404 AUJESZKYHO CHOROBA VyLa-sérologické vyšetření (ELISA) Plemenní kanci ve střediscích pro odběr spermatu 1x ročně -vsouladu spřílohou č. 5 kvyhlášce č. 380/2003 Sb. EpB405 AUJESZKYHO CHOROBA VyLa-sérologické vyšetření (ELISA) Plemenní kanci v izolační stáji před přijetím dostřediska pro odběr spermatu nejdříve za 15 dnů od zahájení izolace -vsouladu s přílohou č. 5 kvyhlášce č. 380/2003 Sb.

Státní veterinární ústav Jihlava Komplexní diagnostika chorob prasat ODDĚLENÍ bakteriologie virologie patologie chemie parazitologie krmiva bakteriologická vyšetření virologická a sérologická vyšetření molekulárně-biologická vyšetření histologická a imunohist. vyšetření patologicko anatomická vyšetření biochemická, toxikologická a hematologická vyšetření parazitologická vyšetření mikrobiologická, mykologická a chemická vyšetření Výsledek vyšetření + interpretace, konzultace a návrh řešení.

Diagnostické metody A) Nepřímý průkaz = sérologický průkaz specifických protilátek MATERIÁL: sérum, plasma, sliny B) Přímý průkaz = průkaz patogena/antigenu / nukleové kyseliny MATERIÁL: krev, sliny, sperma, výtěry, trus, sekční materiál, seškraby 7

Diagnostické metody - nepřímý průkaz = sérologický průkaz specifických protilátek MATERIÁL: sérum, plasma, sliny ELISA APP, PRRS, M. hyop, PCV2, H. parasuis, P. multocida, SIV, VGP, KMP, AMP, VCHP, ACH, Salmonella sp., brucelóza, chlam., PED, Lawsoniaintracellularis, atd. hemaglutinačně-inhibiční test (HIT) PPV rychlá a pomalá aglutinace (RA) brucelóza reakce vazby komplementu (RVK) brucelóza, chlamydióza MAT Leptospira sp. VNT, NPLA, IPMA KMP, AMP, ACH, apod. 8

Diagnostické metody - přímý průkaz = průkaz patogena /antigenu / nukleové kyseliny MATERIÁL: krev, sliny, sperma, výtěry, trus, sekční mat. (realtime) RT PCR PRRS, SIV, KMP VGP, PRCoV, PED (realtime) PCR PCV2, AMP, PPV, PMT, HP, APP, M. hyop., B. hyodysenteriae, L. intracellularis, Mycoplasmasuis imunochromatografickýtest rotaviry, VGP, PED imunohistochemie PCV2 izolace virologická / bakteriologická 9

Interpretace výsledků není pouze problém diagnostických metod limity diagnostické metody -specifita, sensitivita, robustnost, atd. reprezentativní počet vzorků /frekvence vzorkování stádium onemocnění -virémie/bakteriémie/ sérokonverze prevalence onemocnění klinické symptomy - při klinice je nejpravděpodobnější záchyt patogena (ale virus může být vylučován i před klinickými příznaky i po odeznění) materiál/vzorek - vylučování viru do spermatu apod., správný odběr, uchování a transport vzorků

Interpretace výsledků není pouze problém diagnostických metod Příklad - PRRSV aneb co vše ovlivňuje výsledek diagnostiky a jeho následnou interpretaci PCR diagnostika viru PRRS: RT PCR and nested PCR (diferenciace EU a AM kmene) Real-time RT PCR PCR detekuje NK (nemusí být infekční) k infekci je třeba určité dávky mírná klinika u kanců s infekcí PRRS virus kanci vylučují již 1-2 týdny před sérokonverzí (2.-9. den pravidelně, 10.-23. den variabilně) v krvi je virus detekován dříve a ve větší kvantitě než v semeni (rozdíl cca 2 dny) striktní používání pouze ELISA testů bez PCR není doporučováno v momentě potvrzení sérologické pozitivity už může být viru sířen spermatem dále dlouhodobé/intermitentní vylučování viru PRRS u kanců virus perzistuje v tonsilách a m.u. (132-157 dnů) RNA PRRS virus je citlivý k degradaci transport vzorků, uchování,!!

Příklad PRRSV aneb co vše ovlivňuje výsledek diagnostiky a následnou interpretaci IDEXX PRRS X3 Ab Test ELISA Oral Fluid IDEXX AniGen PRRS Ab ELISA 4.0 (Bionote) INGEZIM PRRS 2.0 (Ingenasa) imunoperoxidázovýtest -IPMA (AM/EU kmeny) specifita ELISA testů = téměř 100%, ALE falešně pozitivní výsledky mohou být - nutnost konfirmačních testů či nutný opakovaný odběr k potvrzení diagnostiky SVÚ Jihlava -nové ceny ELISA testů (od 1.4.2015): IDEXX ELISA = 230,- Kč / 1 vzorek (zvýšeno pravděpodobně pouze dočasně) ostatní ELISA = 150,- Kč / 1 vzorek ELISA vmezinárodních kruhových testech ověřena kvalita a srovnatelné výsledky testů AniGen a Ingezim

Interpretace výsledků není pouze problém diagnostických metod Příklad PRRSV aneb co vše ovlivňuje výsledek diagnostiky a následnou interpretaci IDEXX PRRS X3 Ab Test

PRRS ELISA akvalitativní/kvantitativní výsledek IDEXX PRRS ELISA nám dává jednoduchý kvalitativní výsledek = pozitivní/negativní. Pozitivní kontrola je standardizována a reprezentuje signifikantní hladinu specifických protilátek proti viru PRRS. Relativní hladina protilátek je pak determinována kalkulací tzv. S/P hodnoty. Hodnota S/P (vzorek/pozitivní kontrola) je porovnáním výsledku OD vzorku svýsledkem OD známého standardu. Hraniční hodnota(cut-off) mezi poz.aneg. jestanovena na S/P =0,4. S/P poměr je rekalkulovánna titer-like value = ne pravý titr protilátek! 14

PRRS monitoring u plemenných kanců SPRÁVNÝ POČET VZORKŮ / FREKVENCE Obecná pravidla: doporučován sérologický monitoring v kombinaci s PCR testy ze stejných vzorků krve různá schémata pro monitoring PRRS: např. 1 x týdně test spermatu metodou PCR a měsíční sérologické testování séra četnost vyšetření a počet vzorků? STATISTIKA x EKOMOMIKA někdy povoleno směsování vzorků na PCR test (3-5 vz.) odůvodněné v negativních chovech, kde se testuje často ID by neměly být pouštěny bez negativního výsledku striktní používání pouze ELISA testů bez PCR není doporučováno v momentě potvrzení sérologické pozitivity už může být viru sířen spermatem dále

PRRS monitoring u plemenných kanců SPRÁVNÝ POČET VZORKŮ Počet vzorků k potvrzení nákazy Excel tabulka (včetně vlivu sensitivity použitého testu) Velikost populace (ks) 50 Požadovaná spolehlivost (95%) 95% Citlivost metody (%) 100% Předpokládaná prevalence (%) 5% Počet vzorků (ks) n 32 n = potřebný počet vzorků α = požadovaná jistota detekce infekce (většinou 0,95) D = počet infikovaných zvířat (odhad prevalence) N = velikost (četnost) populace

Počet vzorků pro 95% jistotu detekce infekce (1 nebo více) s testem se 100% senzitivitou Velikost populace SPRÁVNÝ POČET VZORKŮ Prevalence (%) 50 40 30 25 20 15 10 5 2 1 0.5 0.1 20 4 6 7 9 10 12 16 19 20 20 20 20 30 4 6 8 9 11 14 19 26 30 30 30 30 40 5 6 8 10 12 15 21 31 40 40 40 40 50 5 6 8 10 12 16 22 35 46 50 50 50 60 5 6 8 10 12 16 23 38 55 60 60 60 70 5 6 8 10 13 17 24 40 62 70 70 70 80 5 6 8 10 13 17 24 42 68 79 80 80 90 5 6 8 10 13 17 25 43 73 87 90 90 100 5 6 9 10 13 17 25 45 78 96 100 100 150 5 6 9 11 13 18 27 49 95 130 148 150 200 5 6 9 11 13 18 27 51 105 155 190 200 500 5 6 9 11 14 19 28 56 129 225 349 500 1000 5 6 9 11 14 19 29 57 138 258 450 950 5000 5 6 9 11 14 19 29 59 147 290 564 2253 10000 5 6 9 11 14 19 29 59 148 294 581 2588 5 6 9 11 14 19 29 59 149 299 596 2995

Správný počet vzorků Používáme malé množství vzorků, abychomzískaliinformace o velkém množství zvířat. Výsledek má zajistit relevantní informaciaplikovatelnounaceloupopulaci(halu,farmu). statistika určuje ideální počet vzorků praxe bere v úvahu také ekonomickou stránku Chovatel/majitel tlačí počet vzorků a frekvenci vzorkování dolů.potom přichází klíčové otázky: Kolik informací ztrácím? Jaká rizika vznikají snížením počtu vzorků (popř. frekvence)?

Standardní a alternativní postupy odběru diagnostických vzorků u kanců Matrice: KREV VÝTĚRY SEKČNÍ MATERIÁL SLINY SEŠKRABY Z MANDLÍ SPERMA

SPERMA a jeho specifika jako diagnostického vzorku Možnostilaboratorníhovyšetření: konvenční bakteriologické vyšetření - ne vždy optimální výsledky (přerůstání, interpretace, apod.) konvenční virologické vyšetření ne vždy optimální výsledky z různých důvodů nízká sensitivita, délka analýzy/izolace, interpretace, kontaminace TK,cytotoxicita na TK biologický pokus na prasnicích byl používán, citlivější než izolace na TK nelze systematicky používat zwelfare důvodů izpraktického hlediska molekulární diagnostika -PCR vysoká sensitivita, rychlé, vysoká kapacita (poč. vz.),ale

SPERMA a jeho specifika jako dg. vzorku na PCR pozitivní výsledek molekulární diagnostiky (PCR) nemusí znamenat, že sperma obsahuje infekční patogen detekujeme genom (NK) ne infekční organismus kinfekci je navít třeba jistá infekční dávka množství virových partikulí např. test RT-nPCR na PRRSV detekuje 100 TCID 50 /ins. dávku =20x méně viru než jetřeba na exp. infekci 1z5prasniček (Benfieldetal. 2000) ALE byla zaznamenána vysoká korelace (94%) mezi PCR aexp. infekcí, tzn. je vysoká pravděpodobnost, že vzorek spozitivním výsledkem vpcr obsahuje infekční dávku (Christopher-Henningsetal. 1995) sperma je ideální spíše pro pozitivní chov, kde se snažím limitovat šíření viru směrem dolů u PRRS pozitivního kance totiž nemohu dle séra předpokládat vylučování viru ve spermatu směsování vz. spermatu se nedoporučuje (kvůli nižší sensitivitě) virus PRRS v semeni intermitentní vylučování, nemusí korelovat s protilátkami a virem v krvi

SPERMA a jeho specifika jako diagnostického vzorku na PCR NATIVNÍ SPERMA vysoká koncentrace balastní DNA oproti hledanému targetu řešení úprava metodiky zpracování vzorku INSEMINAČNÍ DÁVKA problém naředění = snížení citlivosti testu potencionální inhibiční vlivy protektiv/ředidel, která by mohla způsobovat inhibici při PCR testu množství spermatu optimum 2 ks pejet/kapilár /1 zvíře - potřeba min. 200 uldo testu na izolaci NK (+ případná rezerva)

SÉRUM a jeho specifika jako diagnostického vzorku ideální vzorek virus PRRS vylučován dříve než v krvi a ve větší kvantitě preferovaný vzorek pro negativní stáj (sperma je ideální spíše pro pozitivní chov, kde se snažím limitovat šíření viru směrem dolů) možno směsování pro PCR diagnostiku (3-5 vz.) zpracování na PCR (PRRS) rychleji než standard na sérologii chlazené do 24 hodin do lab. krev 24 h/pokojová t. 3 dny/2-8 C sérum 7-14 dní/2-8 C déle při -20

Standardní a alternativní postupy odběrů vzorků krve Odběr vzorků krve u kanců: standardní odběr do HEMOS zkumavek v. jugularis, v. cavaanterior alternativní odběry ušní žíly -v. auricularis ocasní žíla v. caudalis mediana, perineal tarzální žíla v. tarsalis (v. saphenalateralis ne vždy vidět) na /do: filtrační papír (TEGO) tampon + PBS plast. kapilára mikrozkumavka KDY? na fantomu při ejakuaci!

Standardní a alternativní postupy odběrů vzorků krve Bloodswabmetod : krevní stěr komprese ušní žíly narušení jehlou (20G) stěr tamponem tyčinka s polyesterovým tamponem umístit do zkumavky s PBS (0,5-1 ml) odběr během ejakulace flinch rate = 10% (ne všichni kanci reagují pozitivně) naředění (7-20x ředící efekt) = nižší sensitivita testu směsování vzorků se nedoporučuje

Standardní a alternativní postupy odběrů vzorků krve Blood-swabmetod shoda s ostatními vzorky citlivější než testování spermatu! Reickset al. 2006

Standardní a alternativní postupy odběrů vzorků krve Blood-swabmetod : V séru je mnohonásobně vyšší koncentrace viru než ve vzorku krevního stěru = rizika Reicks et al. 2006 NAVÍC brát v potaz: ideální podmínky experimentu krátká doba mezi odběrem a testováním neřeší se uchování a transport vzorku ELISA test na detekci protilátek použitelný jen při výrazném posunu cut off (Pattersonet al. 2007)

Standardní a alternativní postupy odběrů vzorků krve Plastiková kapilára s mikrocenrifugačnízkumavkou

Standardní a alternativní postupy odběrů vzorků krve Plastiková kapilára s mikrocenrifugačnízkumavkou : SAFE-T-FILL Serum Gel CapillaryCollection (RAM Scientific, USA) může obsahovat separační gel nebo antikoagulant výsledný vzorek je neředěné sérum cca 300 ulkrve může být málo pro dg zvíře musí být klidné jinak vznik bublin v kapiláře alternativa: Bio-Tubes, Biovetinc, Kanada 600 ulkrve Postup: narušení žíly jehlou často nestačí potřeba malého skalpelu ucho před zákrokem očistit alkoholem (ethanol nebo xylol) nebo lze kapiláru vsunout do jehly (18G)

Standardní a alternativní postupy odběrů vzorků krve Plastiková kapilární kapilárnízkumavka : Pattersonet etal. 2007

Standardní a alternativní postupy odběrů vzorků krve Mikrozkumavky : komprese ušní žíly narušení jehlou (20G) odběr do mikrozkumavky odběr během ejakulace na závěr opět komprese ušní žíly aby nevznikl hematom Deweyet al. 2006

Standardní a alternativní postupy odběrů vzorků krve TEGO swine blood collection kit

Standardní a alternativní postupy odběrů vzorků krve TEGO swine blood collection kit Detekce viru testem PCR porovnání: sérum x TEGO Detekce protilátek ELISA testem porovnání: sérum x TEGO

Standardní a alternativní postupy odběrů vzorků krve VÝHODY alternativních odběrů z periferních žil: jednodušší a méně invazivní odběry bez fixace = méně stresu = welfare bez rizik spojených s odběrem z v. jugularis potencionální poranění štítné žlázy, n. vagus, ductus thoracicus při pravidelném odběru méně nebezpečné pro kance i pro lékaře odběr do kapiláry a mikrozkumavkysrovnatelné se standardním odběrem z v. jugularis

Standardní a alternativní postupy odběrů vzorků krve NEVÝHODY alternativních odběrů z periferních žil: vněkterých případech nižší sensitivita naředění (stěry krve, filtrační papír) nevhodné na směsování (stěry, papír) v některých případech vyšší náklady? (TEGO, kapiláry) nutnost další validace postupů testování v praxi Copyright The Norwegian School of Veterinary Science

Porcinní epidemická diarhoea (PED) Epidemický průjem prasat AlphacoronavirusI. -VGP, PRCV AlphacoronavirusII. - PED Betcoronavirus-SARS Deltacoronavirus SwDCV HongKong, USA (Swine deltacoronavirus) Aktuální situace: USA 2013 -genetická variabilita, kmeny s různou patogenitou Německo 2014 výkrmny a dva chovy prasnic - kmen úzce příbuzný s kmeny INDEL v USA - nízká patogenita Rakousko 2014 výkrmna s běhouny importovanými z Německa Nizozemsko 2014 Ukrajina 2014 podobný virulentním kmenům z Číny a USA Slovensko 2015 (detekováno na SVÚ Jihlava) nízce patogenní (5-6 dní průjem, do 10 dní úmrtnost 20-30% selat + prasnice 3-4 dny nežraly a nedávaly selatům mléko)

Porcinní epidemická diarhoea (PED) DIAGNOSTIKA na SVÚ Jihlava Průkaz viru/nk RT PCR nebo Real-time PCR 1000,-Kč imunochromatografickýtest - AnigenRapid TGE/PED Ag Test 200,-Kč (resp. 400 Kč s TGE) ICH -pouze rychlý orientační (spíše stájový) test s nízkou sensitivitou nutnost odběru vyššího počtu vz. PCR o několik řádů vyšší sensitivita i specifita Sérologický screening ELISA Ab

Děkuji za pozornost!

STÁTNÍ VETERINÁRNÍ ÚSTAV JIHLAVA Oddělení virologie