Možnosti využití elektromigračních technik při studiu vlastností mikroorganismů. Anna Kubesová

Podobné dokumenty
laktoferin BSA α S2 -CN α S1 -CN Popis: BSA bovinní sérový albumin, CN kasein, LG- laktoglobulin, LA- laktalbumin

Evropský sociální fond Praha & EU: Investujeme do vaší budoucnosti ELEKTROMIGRAČNÍ METODY

APLIKOVANÉ ELEKTROMIGRAČNÍ METODY

Pražské analytické centrum inovací Projekt CZ / /0002 spolufinancovaný ESF a Státním rozpočtem ČR

L. acidophilus_(psmm _ TIDE):

Vizualizace DNA ETHIDIUM BROMID. fluorescenční barva interkalační činidlo. do gelu do pufru barvení po elfu SYBR GREEN

Elektromigrační metody

SDS-PAGE elektroforéza

Separační metody používané v proteomice

Polyfázová identifikace kmenů Aeromonas encheleia

THE USING OF CARRIER AMPHOLYTE-FREE ISOELECTRIC FOCUSING (CAF-IEF) FOR ANALYSIS OF STRESS PROTEINS

PROTOKOL WESTERN BLOT

Klinická a farmaceutická analýza. Petr Kozlík Katedra analytické chemie

Využití analýzy celkových buněčných proteinů pomocí SDS-PAGE při charakterizaci fluorescentních pseudomonád izolovaných ze speleotém

ODŮVODNĚNÍ VEŘEJNÉ ZAKÁZKY

Dvoudimenzionální elektroforéza

HMOTNOSTNÍ SPEKTROMETRIE

IZOLACE, SEPARACE A DETEKCE PROTEINŮ I. Vlasta Němcová, Michael Jelínek, Jan Šrámek

SDS polyakrylamidová gelová elektroforéza (SDS PAGE)

Zajištění správnosti výsledků analýzy kotininu a kreatininu

Obr. 1. Schematické znázornění 2D-PAGE (převzato z Lodish, H. a kol.: Molecular Cell Biology, 3. vyd., Freeman 1996)

Obsah Protein Gel Electrophoresis Kitu a jeho skladování

Western blotting. 10% APS 20,28 µl 40,56 µl 81,12 µl 20,28 µl 40,56 µl 81,12 µl

PROTEOMICKÝ EXPERIMENT

OPVK CZ.1.07/2.2.00/

PROTEINOVÁ DENATURUJÍCÍ ELEKTROFORÉZA (SDS PAGE)

L. acidophilus_(psmm _ TIDE):

PREKONCENTRAČNÍ TECHNIKY V KAPILÁRNÍ ELEKTROFORÉZE

Stanovení koncentrace (kvantifikace) proteinů

1. Metodika. Protokol č. F1-4 Metodika: Srovnávací analýza efektivity přípravy rekombinantního proteinu ve fermentoru

Izolace nukleových kyselin

asné proteomiky Pavel Bouchal Laboratoř proteomiky Ústav biochemie PřF MU

Inovace bakalářského studijního oboru Aplikovaná chemie CZ.1.07/2.2.00/

Hmotnostní detekce biologicky významných sloučenin pro biotechnologie část 3 - Provedení štěpení proteinů a následné analýzy,

Izolace proteinů ze savčích buněk

Metody používané v MB. analýza proteinů, nukleových kyselin

Sbohem, paní Bradfordová

Metody používané v MB. analýza proteinů, nukleových kyselin

Chemické výpočty II. Vladimíra Kvasnicová

Protokol 04. pšeničná bílkovina. masné výrobky. zkrácená verze

IMUNOANALÝZA elektroforetické separační metody. 3. ročník Klinická biologie a chemie

Látky obsahují aminoskupinu

167 ml Folinova činidla doplníme do 500 ml destilovanou vodou. Toto činidlo je nestabilní, je nutné připravit vždy čerstvé a uložit při 4 C.

Pracoviště (1) Oddělení mikrobiologie, Přírodovědecká fakulta Masarykovy, Brno, Česká republika (2)Oddělení funkční genomiky a proteomiky, Přírodověde

Kurz 1 Úvod k biochemickému praktiku

Úvod k biochemickému. mu praktiku. Vladimíra Kvasnicová

Výzkumný ústav rostlinné výroby Praha Ruzyně. Metodika byla vypracována jako výstup výzkumného záměru MZe č Autor: Ing.


Výzkumný ústav rostlinné výroby Praha Ruzyně

PŘÍPRAVA PROTEINOVÉHO VZORKU PRO MS ANALÝZU. Hana Konečná

Tématické okruhy pro státní závěrečné zkoušky

Elektroforéza v přítomnosti SDS SDS PAGE

PEPTIDY A BÍLKOVINY. Kapalinová chromatografie peptidů a bílkovin

Název: Vypracovala: Datum: Zuzana Lacková

Metody používané v MB. analýza proteinů, nukleových kyselin

Zkušenosti s diagnostikou sepse pomocí testu SeptiFast Test M GRADE. Zdeňka Doubková Klinická mikrobiologie a ATB centrum VFN Praha

No. 1- určete MW, vysvětlení izotopů

První testový úkol aminokyseliny a jejich vlastnosti

Diagnostika moru včelího plodu a epizootologická situace v ČR

Identifikace bakterií pomocí MALDI MS

Příprava vzorků pro proteomickou analýzu

SeptiFast. rychlá detekce sepse. Olga Bálková Roche s.r.o., Diagnostics Division

Využití antibakteriálních testů v textilním průmyslu Mgr. Irena Šlamborová, Ph.D.

Afinitní kapilární elektroforéza

Hmotnostní spektrometrie

Elektroforéza - I (v klasickém provedení)

TECHNICKÁ SPECIFIKACE Vybavení genetické laboratoře pro projekt EXTEMIT-K část B

Speciální hybridní vrstvy připravené metodou sol-gel a jejich biomedicínské aplikace

RNA Blue REAGENS PRO RYCHLOU PŘÍPRAVU ČISTÉ A NEDEGRADOVANÉ RNA (katalogové číslo R011, R012, R013)


CLP ANALYSIS OF MOLECULAR MARKERS GEL ELECTROPHORESIS OF ISOZYMES AND PROTEINS CZECH VERSION

TESTOVÁNÍ GMO Praktikum fyziologie rostlin

Izolace genomové DNA ze savčích buněk, stanovení koncentrace DNA pomocí absorpční spektrofotometrie

Charakterizace proteomu piva

Kapilární zónová elektroforéza (CZE)

Analýza aniontových tenzidů v čisticích prostředcích kapilární elektroforézou

Aplikace elektromigračních technik Laboratorní úlohy

Hmotn mot o n s o t s n t í n sp sp kt k r t ometr t ie

STANOVENÍ ANTIOXIDAČNÍ KAPACITY METODOU FOTOCHEMILUMINISCENCE NA PŘÍSTROJI PHOTOCHEM

Elektromigrační metody

Protilátky proti Helicobacter pylori (IgG) Návod na použití ELISA testu

fokusaci v Úvod objemů vzorku. separaci nachází ve stavu nazývá Amfolyty jsou tedy Obrázek

PROTEOMICKÝ EXPERIMENT

Metody práce s proteinovými komplexy

Studium p ítomnosti protein v bu kách (analýza proteomu)

Jaterní homogenát, preparativní nanáška 2 mg, barvení koloidní Coomassie Blue 1025 spotů. ph 4 ph 7

Seminář izolačních technologií

Vysoká škola chemicko-technologická v Praze. Ing. Iva Pacovská Ústav biochemie a mikrobiologie, VŠCHT Praha

Diagnostické metody v analýze potravin. Matej Pospiech, FVHE Brno

Základy analýzy potravin Přednáška 8. Důvody pro analýzu bílkovin v potravinách. určování původu suroviny, autenticita výrobku

Zkušební okruhy k přijímací zkoušce do magisterského studijního oboru:

K AUTORSKÉMU OSVĚDČENÍ. Přihlášeno 28. VI (PV )

Elektrochemické Detektory, spol. s r.o. Ohrazenice 226 CZ Turnov

Aspartátaminotransferáza (AST)

Praktické cvičení: Izolace a purifikace rekombinantního proteinu

ELEKTROFORETICKÉ METODY

UŽITNÝ VZOR CZ U1

Transkript:

Možnosti využití elektromigračních technik při studiu vlastností mikroorganismů Anna Kubesová

Osnova Candida Kapilární elektromigrační techniky Výsledky Závěr Planární elektromigrační techniky Výsledky Závěr Pseudomonas syringae Výsledky Závěr

Candida Psilosis Candida psilosis fenotypově nerozlišitelné: C. orthopsilosis C. metapsilosis C. parapsilosis Candida parapsilosis patogen pro pacienty se sníženým imunitním systémem. Candida psilosis - Kapilární elektromigrační techniky - Planární elektromigrační techniky

Candida Psilosis biofilm

A ph gradient 3,6-4,0 Kapilární izoelektrická fokusace Katolyt: 4 x 10-2 moll -1 Na OH 0,3% (w/v) PEG 4000 1% EtOH Anolyt: 0,1 moll -1 H 3 PO 4 Vzorek: 8 x 10 7 buněk v 1 ml 15 x 10-3 moll -1 NaCl 1% (w/v) PEG 10 000 B ph gradient 3,6-4,0 Katolyt: 0,6% (w/v) PEG 4000

A ph gradient 3,8-4,0 Kapilární izoelektrická fokusace Katolyt: 2 x 10-2 moll -1 Na OH 0,1% (w/v) PEG 10 000 1% EtOH Anolyt: 0,1 moll -1 H 3 PO 4 Vzorek: krevní sérum B ph gradient 3,8-4,0 Katolyt a anolyt stejný jako u A Vzorek: 3x 10 7 buněk v 1 ml krevního sera 3% EtOH 2% (w/v) PEG 10 000

A: fosfátových pufr 1 10 2 moll 1 (ph 8,4) 0.6% (w/v) PEG 4000 3% (v/v) EtOH Kapilární zónová elektroforéza Vzorek: 8 10 7 buněk ml 1 PSS B: fosfátový pufr 1 10 2 moll 1 (ph 8,4) 0.3% (w/v) PEG 10,000 3% (v/v) EtOH Vzorek: 8 10 7 buněk ml 1 PSS s 1% (w/v) PEG 10,000

Závěr V této studii byly pomocí cief a CZE analyzovány vždy tři zástupci každého ze studovaných biofilm-pozitivních a biofilm-negativních druhů C. psilosis Navrhované kapilární elektromigrační metody dokáží rychle, spolehlivě separovat a identifikovat jednotlivé druhy C. psilosis včetně jejich biofilmových forem.

Vzorky: Vysráženo vždy 100 μg proteinu a rozpuštěno v 100 μl pufru. Dávkováno 15 μl vzorku na gel. Gel: Separační gel 4-20% T. Barvení: Coomassie Brilliant Blue G-250. SDS-PAGE C. orthopsilosis (FS 72, PH 94 biofilm-negativní), C. metapsilosis (PH 86, FS 58 biofilm-positivní; PH 87, PH 88 biofilm-negativní) and C. parapsilosis (BC 16, BC 11 biofilm-positivní; BC 8, BK 75 biofilm-negativní)

Vzorky: Dávkováno 15 μl vzorku lyzátu na gel. ph gradient: 3-10 Separační gel 5% T. Barvení: Coomassie Brilliant Blue G-250. IEF C. orthopsilosis (FS 72, PH 94 biofilm-negativní), C. metapsilosis (PH 86, FS 58 biofilm-positivní; PH 87, PH 88 biofilm-negativní) and C. parapsilosis (BC 16, BC 11 biofilm-positivní; BC 8, BK 75 biofilm-negativní)

Vzorky: Vysráženo vždy 100 μg proteinu a rozpuštěno v 200 μl rehydratačním pufru. Dávkováno 125 μl vzorku na IEF strip. Výsledky C. orthopsilosis C. metapsilosis (-) IEF: ReadyStrip IPG Strip, lineární ph gradient 3 10, délka 7 cm od firmy Bio-Rad. Napětí:150 V (50 V h, li near),600 V (600 V h, linear), 1500 V (1500 V h, linear) and 4000 V (15000 V h, rapid) SDS-PAGE Gel: Separační gel 4-20% T. Napětí 180V C. metapsilosis (+) C. parapsilosis (-) C. parapsilosis (+) Barvení: Coomassie Brilliant Blue G-250.

MALDI TOF MS C. orthopsilosis (FS 72 biofilm-negativní), C. metapsilosis (FS 58 biofilm-positivní; PH 88 biofilm-negativní) and C. parapsilosis (BC 16 biofilm-positivní; BK 75 biofilm-negativní)

Závěr Pomocí planárních elektromigračních technik a MALDI TOF MS vybrané kmeny studovaných biofilmpozitivních a biofilm-negativních kmenů C. "psilosis". Naše výsledky ukazují, že všechny použité techniky jsou schopny identifikovat jednotlivé druhy C. "psilosis" a především 2-DE a MALDI TOF MS dokáží identifikovat i jejich biofilmové formy.

Patovary Pseudomonas syringae Patovary Pseudomonas syringae rostlinné patogeny Plynová chromatografie nedostatečná databáze CZE, cief, IEF a MALDI TOF MS.

Kapilární izoelektrická fokusace A ph gradient 2,0-4,7 Katolyt: 4 x 10-2 moll -1 Na OH 0,1% (w/v) PEG 4000 1% EtOH Anolyt: 0,1 moll -1 H 3 PO 4 0,1% (w/v) PEG 4000 1% EtOH Vzorek: 1x 10 7 buněk v 1 ml 15 x 10-3 moll -1 NaCl 3% EtOH 2% (w/v) PEG 10 000

Identifikace plynovou chromatografií methyl esterů mastných kyselin. strain source percentage of probability by GC identification pi Pseudomonas IVIA 614.5.3 44 P. syringae 86.3 % 2.4 corrugata CFBP 5324 P. putida 82.0 % 2.4 CFBP 4901 44 P. putida 78.0 %, P. corrugata 40.3 % 2.4 CFBP 5465 44 P. corrugata 66.4 % 2.4 CFBP 6663 44 P. corrugata 63.1 %, 61.8 % 2.4 pi = 2.4, RSD = 1.1 % Pseudomonas syringae CCM 2870 P. s. syringae 71.7 % 3.1 pv. Syringae 43 CCM 2114 P. s. 94,5 % 3.1 CCM 2868 P. s. syringae 73.0 %, 73.7 % 3.1 Isol. PPBOL 1048 P. s. syringae 84.0 % 4.8 Isol. PPBOL 1049 no results 3.1 Isol. PPBOL 1050 P. s. syringae 84.0 % 3.1 Isol. PPBOL 1054 not identified 3.1 Isol. PPBOL 1055 not identified 3.1 Isol. B, PPBOL 31/08 P. viridiflava 90.7 %. P. s. syringae 84.9 % 3.1 Isol. B, PPBOL 32/08 P. s. syringae 92.0 % 3.1 pi = 3.1, RSD = 0.9 % Pseudomonas syringae LMG 5184 P. viridiflava 93.1 %, P. syringae 90.3 % 3.4 pv. persicae LMG 5078 P. syringae 35.9 % 3.4 LMG 5566 P. syringae 34.2 % 3.4 LMG 5568 P. syringae 41.0 % 3.4 LMG 5569 P. syringae 37.0 % 3.4 pi = 3.4, RSD = 0.7 % Pseudomonas syringae LMG 5071 P. s. maculicola 63.9 % 3.7 pv. maculicola pi = 3.7, RSD = 1.4 % Pseudomonas syringae IVIA 1733.3 44 P. s. tomato 74.7 % 4.0 pv. tomato CFBP 1326 P. s. syringae 92.9 %, P. viridiflava 84.3 % 4.0 CFBP 2212 44 P. viridiflava 91.2 %, P. syringae 91.1 % 4.0 CFBP 5422 44 P. viridiflava 93.6 %, P. syringae 92.5 % 4.0 CFBP 2546 P. s. tomato 86.1 % 4.0 CCM 7018 P. syringe 93.2 % 4.0 CCM 7019 P. syringae 90.1 %, P. s. tomato 66,2 % 4.0 Isol. B, PPBOL 106/08 P. syringae 92.9 %, P. s. syringae 92.9 % 4.0 pi = 4.0, RSD = 1.2 % Pseudomonas syringae CCM 2859 P. s. mori 94.6 % 4.1 pv. morsprunorum CCM 2534 P. s. morsprunorum 96.3 %, 96.9% 4.1 CCM 2860 P. syringae 95.7 %, P. s. mori 95.7 % 4.1 pi = 4.1, RSD = 1.5 % Pseudomonas syringae IVIA 1003.1a P. viridiflava 80.3 %, P. s. syringae 74.6 % 4.5 pv. mori CFBP 1642 P. viridiflava 94.1 %, P. s. syringae 88.7 % 4.5 Isol. B, PPBOL 141/08 P. viridiflava 92.8 %, P. s. syringae 92.7 % 4.5 Isol. B, PPBOL 104/08 P. syringae 95.5 %, P. s. morsprunorum 95.5 % 4.5 Isol. B, PPBOL 46/04 P. s. syringae 92.9 % 4.5 pi = 4.5, RSD = 0.8 % Pseudomonas syringae CFBP 1644 P. syringae 94.2 % 4.8 pv. lachrymans CFBP 6465 P. s. syringae 75.0 % 4.8 CFBP 6462 P. s. syringae 93.9 % 4.8 CCM 2857 no results 4.8 Isol. VURV 6017 43 no results 4.8 pi = 4.8, RSD = 1.0 %

Kapilární zónová elektroforéza Taurine-Tris pufr 1,5 10 3 moll 1 (ph 8,4) 0.1% (w/v) PEG 4000 1% (v/v) EtOH Vzorek: 8 10 7 buněk ml 1 PSS 1% (w/v) PEG 10 000

Vzorky ph gradient 3-10Barvení: Dávkovány 4 μl vzorku Separační gel 5% T Coomassie Brilliant Blue G-250 lyzátu na gel

MALDI-TOF MS spektra MALDI-TOF MS spektra proteinů Pseudomonas siringae. Jako matrice byla použita kyselina sinapová.

Závěr Všechny použité techniky jsou schopny identifikovat jednotlivé patovary Pseudomonas syringae. Zvláště doplnění výsledků plynové chromatografie o výsledky kapilární isoelektrické fokusace, může být pro analýzu patovarů bakterií velice přínosné.

Děkuji za pozornost a přeji krásné vánoční svátky.