Principy a využit. ití qpcr. KBC/BAM Pokročil. rní biologie

Transkript

1 Principy a využit ití qpcr KBC/BAM Pokročil ilé biochemické a biotechnologické metody Mgr. Mária M Šmehilová, Ph.D. UP PŘF CRH Oddělen lení molekulárn rní biologie

2 Úvod do PCR PCR Kary Mullis (Nobelova cena za chemii, 1993)

3 Úvod do PCR PCR jednotlivé fáze: Exponenciální Jestliže je efektivita reakce 100% produkt se přesně zdvojnásobí Specifická a precizní Lineární Vysoká variabilita Jsou spotřebovávány reakční komponenty a PCR produkty začínají degradovat Plateau End-point analýzy - reakce je ukončena, PCR produkty degradují

4 Úvod do PCR PCR phases in linear view Oblast detekce konvenční PCR Plateau Linear [DNA] Exponential Oblast detekce Real-time qpcr Cycle #

5 Konvenční PCR Izolace DNA/RNA (přepis) PCR - Amplifikace Elektroforéza DNA-polymeráza standardní termocyklér detekce na gelu

6 Konvenční PCR Výhody Efektivní metoda Rychlá analýzy (od 30 min do 2 h) Vysoká specifita a citlivost Relativně levná Nevýhody Nemožnost automatizace Nízkápřesnost Obtížná kvantifikace Rozlišení pouze na základě velikosti produktu Výsledky těžko interpretovatelné v číslech Stejný end-point u různého počátečního množství templátu Různý end-point u stejného počátečního množství templátu Malé dynamické rozmezí

7 Real-Time PCR Real-time PCR monitoruje fluorescenci emitovanou v průběhu reakce jako indikátor tvořeného amplikonu v každém cyklu PCR (v reálném čase) Speciální real-time PCR termocykléry s detektory umožňují kvantifikaci v reálném čase a díky sběru dat i automatizaci AB StepOnePlus Real-time PCR thermal cycler

8 Princip metody Kvantifikace: detekce fluorescence, která se uvolňuje v přímé úměře na množství amplifikované DNA při použití fluorescenčního substrátu v PCR reakci Fluorescence: - barvivo interkalující s dvouřetězcovou DNA (např. SYBR Green) - hydrolýza specifické fluorescenční sondy komplementární k amplikonu (např. TaqMan) - hybridizace specifické fluorescenční sondy (FRET)

9 SYBR Green: Fluorescence TaqMan:

10 SYBR Green barvivo, které po vazbě na dsdna emituje silný fluorescenční signál nevýhodou je nespecifita vazby nutná optimalizace nutná analýza křivky tání neúměra signálu u různě dlouhých produktů omezené použití pro multiplex

11 TaqMan próby sekvence o velikosti primeru komplementární k specifickému místu templátu kovalentně vázaný fluorofor na 5 konci próby kovalentně vázaný zhášeč (quencher) na 3 konci póby princip založen na využití 5-3 exonukleasové aktivity Taq DNA polymerázy množství detekované fluorescence je přímo úměrné množství fluoroforu uvolněného z DNA přítomné v PCR reakci vysoká specifita detekce

12 5' exonukleasová aktivita Taq DNA polymerasy Mocellin et al. Trends Mol Med 2003

13 TaqMan používané fluorofory a zhášeče NFQ non fluorescent quencher (TaqMan MGB próby) Nutné ověřit kompatibilitu páru fluorofor-zhášeč! Při multiplexu je nutné vybrat páry s minimálním překryvem spekter!

14

15 Reference dye Pro normalizaci PCR-nezávislých kolísání fluorescence Pomáhátvořit stabilní baseline pro kvantifikaci Používáním referenčních barviv se eliminuje re-kalibrace cykléru a jeho nastavení ROX konjugát glycinu s 5-carboxy-X-rhodaminem, sukcinimidyl esterem

16 bez přirozené autofluorescence nižší fluorescence pozadí zvyšuje se poměr signál:šum zvyšuje se citlivost maximalizuje se překryv spekter zvyšuje se efektivita zhášení umožňuje širší výběr reportérových barviv pro multiplexing

17 TaqMan Primery Tm ( C) délka bp obsah G+C 30-80% ideálně žádné opakování G nad 4 ne víc než 2 G+C na 3 konci žádný G na 5' konci velikost amplikonu bp pokrytí přechodu exon-exon v cdna

18 Další typy prób používané v qpcr Wong & Medrano (2005) BioTechniques 39:75-85

19 Terminologie Real-time qpcr Matematické vyjádření amplifikace PCR Amplifikační křivka - baseline, mez detekce, C T, Rn Kinetika Real-time qpcr - kvantifikace, efektivita, dynamické rozpětí

20 Amplifikační křivka Log fluorescence (Rn) Baseline fáze obsahující amplifikaci pod mezí detekce přístroje Threshold práh detekce vznikající fluorescence (v místě protnutí amplifikační křivkou je definováno C T ) C T (cycle threshold) počet cyklů, který vznikající fluorescence potřebuje k překročení prahu detekce Rn podíl intenzit emisí fluorescence reportérového barviva a pasivního barviva R n (R n -baseline), je počítáno jako rozdíl Rn hodnot vzorků a negativní kontroly nebo pozadí, čímž vyjadřuje množství signálu generovaného v PCR reakci

21 C T Hodnota C T udává cyklus, ve kterém dojde poprvé k významnému vzestupu Rn, což koreluje s počátečním množstvím templátu v reakci Základní parametr používaný v kvantifikaci Hodnota C T nad 40 znamená žádnou amplifikaci a nemůže být použita k výpočtům pro kvantifikaci Teoreticky jediná kopie cílové molekuly by měla vytvořit C T hodnotu 40 za předpokladu 100% efektivity reakce

22 Rn Rn + je hodnota Rn reakce obsahující všechny komponenty, hodnota Rn - je hodnota Rn slepé (negativní, bez templátu, NTC) reakce (hodnoty baseline) Rn hodnota představuje rozdíl mezi Rn + a Rn -, zároveň je tedy indikátorem velikosti síly signálu tvořeného během PCR Rn je vynášeno proti počtu cyklů PCR, čímž jsou tvořeny amplifikační křivky a stanoveny hodnoty C T

23 Matematické vyjádření PCR X n A X n = X 0 (1 + E) n X 0 Počet cyklů X n = množství PCR produktu po n cyklech X 0 =počáteční počet kopií E = efektivita amplifikace n = počet cyklů

24 Efektivita qpcr (%) Je dána směrnicí lineárního vynesení C T vůči logaritmu počtu kopií E=10 (-1/směrnice) -1 (x100 pro %) Exponenciální amplifikace: E = 10 (-1/směrnice) Efektivita reakce: - 100% (2 kopie v každém cyklu) dělá směrnici -3, ideálně v rozmezí % Efektivitu reakce snižuje: - délka amplikonu - sekundární struktura - vlastnosti primerů,

25 Stanovení efektivity Real-time PCR Příklad: stanovení efektivity PCR pro referenční gen (Gst), analyzovaný gen 1 (TyrA) a 2 (TyrB). Směrnice přímek vypočítány z C T (v průsečících s regresní přímkou) vůči počátečnímu množství DNA (průměr ze tří měření) Pfaffl MW. A new mathematical model for relative quantification in real-time RT PCR. Nucleic Acids Res 2001

26 Matematické vyjádření PCR A X 0 Počet cyklů X n X n = X 0 (1 + E) n X n = PCR produkt po n cyklech X 0 =počáteční počet kopií E = efektivita amplifikace n = počet cyklů Rozdíl 0.1 v efektivitě amplifikace představuje pětinásobný rozdíl ve finálním množství PCR produktů po 30 cyklech. X n = X 0 (1+E) n Situace 1: E = 0.9 Situace 2: E = 0.8 X n = 100 (1+0.9) 30 X n = 100 (1+0.8) 30 X n = 2.3 x X n = 4.6 x 10 9

27 Dynamické rozpětí Slouží k stanovení efektivity qpcr demonstruje možnou matematickou variabilitu směrnice (efektivity), přesný výpočet efektivity PCR závisí na rozmezí množství templátu použitého pro série ředění Analýza dynamického rozpětí se provádí ve 3 opakováních s minimálně 5 stupni ředění koncentrace templátu Směrnice = -3,3±10% znamená efektivitu 100% ±10%, PCR s nižší efektivitou mají nižší citlivost www3.appliedbiosystems.com

28 Kvantifikace absolutní vs. relativní Absolutní Přímo determinuje výchozí počet kopií cílových molekul Založena na existenci lineárního vztahu mezi logaritmem startovního počtu templátových kopií a C T příslušné amplifikační křivky Amplifikuje se vzorek o neznámé koncentraci společně s diluční sérií standardů o známé koncentraci, vzniká kalibační přímka (standard curve), ze které lze odečíst výchozí koncentraci neznámého vzorku Využití v detekci specifických mikroorganismů

29 Kvantifikace absolutní vs. relativní Relativní Porovnává se relativní změna genové exprese (relativní expresní poměr) v testovaném vzorku oproti kontrolnímu vzorku C T amplifikační křivky daného genu se vždy normalizuje oproti C T housekeeping genu Použití referenčního vzorku (endogenní, interní kontroly) Ideální pro stanovení míry genové exprese, zpravidla nevyžaduje sestrojení kalibrační přímky Srovnávací Matematické stanovení Kalibrační vzorek použit jako 1 standard Ideální v případech, kdy stačí vyjádření v podobě poměrů, k ověřování trendů

30 Endogenní kontrola (Normalizace) Pečlivý výběr genů pro endogenní kontrolu Sabek et al. Transplantation 2002 Obvykle provozní geny (housekeeping, vysoce abundantní s konstantní expresí) Ideální použití kombinace endogenních kontrol Nutná validace vybraných endogenních kontrol

31 Relativní kvantifikace s použitím endogenní kontroly C T hodnoty endogenních kontrol by měly být nižší než 22

32 Ct je nepřímo korelováno s počátečním počtem kopií, v každém cyklu se zvojnásobuje množství amplikonů (při 100% E), rozdíl v 1 cyklu je tedy dvojnásobek kopií Metody pro stanovení relativní kvantity exprese genů - Založeno na porovnání Ct hodnot mezi sledovanými geny a geny kontrolními (provozními) Metoda Ct - Model bez korekce efektivity Liší-li se CT: C T = 3,31 Množství kopí je tedy 2 3,31 = 9,9 x Relativní kvantifikace RQ = 2 - Ct Ct = Ct vzorek - Ct kontrola Ct = Ct sledovaný gen - Ct gen provozní

33 Relativní kvantifikace Ct je nepřímo korelováno s počátečním počtem kopií, v každém cyklu se zvojnásobuje množství amplikonů (při 100% E), rozdíl v 1 cyklu je tedy dvojnásobek kopií Metody pro stanovení relativní kvantity exprese genů - Založeno na porovnání Ct hodnot mezi sledovanými geny a geny kontrolními (provozními) Pfafflova metoda - Bere se v úvahu možný rozdíl mezi rychlostí-efektivitou amplifikace u jednotlivých genů, pro každý gen se stanovuje E = 10 (-1/směrnice) - Výpočet poměru množství cílového ku referenčnímu genu: RQ = E target Cttarget(kontrola-vzorek) / E housekeeping Cttarget(kontrola-vzorek) - Na rozdíl od metody Ct se Ct počítá pro geny (stanovované a kontrolní) rozdíl (od kontrolních) u jednotlivých experimentálních vzorků

34 Příprava experimentu qpcr Příprava vzorků: - správný odběr vzorků - izolace nukleových kyselin (DNA, RNA reverzní transkripce) Kvantitativní Real-time PCR: -příprava reakcí pro SYBR Green nebo TaqMan - kvantitativní PCR v Real-time termocykléru - analýza a vyhodnocení dat

35 Správný odběr vzorků DNA: - DNAsy! RNA: - RNAsy! - flash freeze -80 C! - kontaminující materiál (jiná pletiva, tkáně, látky inhibující následný proces izolace NK)

36 Příprava reakcí pro analýzu SYBR vs. TaqMan chemismus SYBR Green kdy ANO a kdy NE Detekce nízkých hladin patogenů Analýzy nevyžadující specifické rozlišení Diskriminace alel Screening transkriptů před analýzou s próbami Multiplex analýzy Při plně optimalizovaném PCR systému (žádná diverizace primerů, nespecifické amplikony) Amplifikace neobvyklých amplikonů Navržení primerů, prób: - validované vs. vlastní design

37 Příprava reakcí pro analýzu Reakční komponenta Finální koncentrace SYBR Green x TaqMan premix 1x Primery 300 (50-900) nm Próby 250 (50-500) nm Templát 100 ng/10µl -počet cyklů, teploty Nastavení cyklování Step Temp. Time Cycles Initial denaturation 95 C 7 min 1 Denaturation Annealing/extension 95 C 60 C 5 s 30 s 40 cycles - analýza křivky tání (60-95 C)

38

39

40

41 Kontrola lineárního průběhu exponenciální fáze Linear view log view

42

43 Analýza disociační křivky Fluorescence se snižuje se vzrůstající teplotou DNA vlákna se začínají oddělovat SYBR green se uvolňuje z DNA Fluorescence se snižuje Jednoduchá detekce teploty tání amplikonu Kontaminující DNA, dimery primerů nebo nesprávné vazby primerů jsou detekovány jako další peak Detekce disociační křivky umožňuje detekci nespecifických produktů

44

45

46 Vyhodnocení - výsledky Průběh amplifikace (křivky Ct) Srovnání koncentrací vzorků (podle endogenní kontroly) cdna Míra exprese analyzovaných genů RNA (neg. kontr.) Kontrola denaturačních křivek Logaritmické zobrazení amplifikace (stanovení společné meze detekce)

47 Aplikce Real-time qpcr - I Kvantifikace exprese genů Ověřování a validace metod Quality control Testování genetické stability a bezpečnosti pro životní prostředí Stanovování účinnosti léčiv různých terapií / monitoring léčiv Kvantifikace virů Detekce patogenů

48 Aplikace Real-time PCR - II Stanovení míry poškození DNA (nestabilita mikrosatelitů) Hodnocení stupně ozáření In vivo zobrazováníbuněčných procesů Studie mitochondrialní DNA Detekce metylací DNA Detekce inaktivací na chromozomu X LATE-PCR (linear-after-the-exponential): nová metoda pro analýzu počtu cílových molekul v extra malých vzorcích, což je použitelní pro rutinní analýzy ve velkých objemech (klinické diagnózy, DNA sekvenování, forenzní medicína)

49 Real-time PCR Applications - III Identifikace vysoce polymorfních úseků antigenů lidských leukocytů (HLA loci) Monitorování vývoje po transplantacích orgánů Monitorování chimerismu po transplantaci hematopoetických kmenových buněk (HSCT) Monitorování minimální residuální choroby po HSCT Genotypizace (alelická diskriminace) - Trizomie a stanovení variability v počtu kopií - Mikrodelece v genotypech -Haplotypizace - Kvantitativní analýza mikrosatelitů - Prenatální diagnostika z fetálních buněk krve matky -Preoperační diagnostika nádorových onemocnění

50 Real-time qpcr ve forenzní medicíně Wikimedia Commons/German National Archive DNA analýza úlomků kostí exhumovaných na Urale v roce 2007 potvrdila totožnost dvou dětí posledního Ruského cara Mikuláše II Alexandroviče popravených v r

51 Alelická diskriminace s TaqMan próbami

52 Stanovení počtu kopií stanovení počtu kopií na základě rozdílů v hybridizaci prób Barrois M et al. Clin Genet 2004

53 Real-time qpcr - nevýhody Neníúplně vhodá pro multiplexing (ale je možná) Nastavování analýz vyžaduje značné technické zkušenosti Relativně vysoká pořizovací cena zařízení Intra- a inter- variace mezi analýzami RNA labilita DNA kontaminace (u mrna analýz)